Summary

감염 중 한천 및 조직에서 자란 박테리아 집락의 이미징 질량 분석 분석을 통한 미생물 협력 조사

Published: November 18, 2022
doi:

Summary

매트릭스 보조 레이저 탈착/이온화 이미징 질량 분석법을 통해 한천 기반 박테리아 거대 콜로니 분석을 위한 새로운 샘플 준비 방법이 시연됩니다.

Abstract

감염 중에 발생하는 미생물 상호 작용의 대사 결과를 이해하는 것은 생물 의학 이미징 분야에 독특한 도전 과제를 제시합니다. MALDI(Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization) 이미징 질량분석법은 다양한 대사 산물에 대한 공간 맵을 생성할 수 있는 라벨이 없는 현장 이미징 방식을 나타냅니다. 얇게 절편된 조직 샘플은 이제 이 기술을 통해 일상적으로 분석되지만, 미생물학 연구에서 한천에서 일반적으로 자라는 박테리아 콜로니와 같은 비전통적인 기질의 이미징 질량 분석 분석은 이러한 샘플의 높은 수분 함량과 고르지 않은 지형으로 인해 여전히 어려운 과제입니다. 이 백서는 이러한 샘플 유형의 이미징 질량 분석 분석을 허용하는 샘플 준비 워크플로우를 보여줍니다. 이 과정은 두 가지 위장 병원체인 Clostridioides difficile Enterococcus faecalis의 박테리아 공동 배양 거대 콜로니를 사용하여 예시됩니다. 이 잘 정의된 한천 환경에서 미생물 상호 작용을 연구하는 것은 또한 감염 마우스 모델에서 이 두 병원성 유기체 간의 미생물 대사 협력을 이해하기 위한 조직 연구를 보완하는 것으로 나타났습니다. 아미노산 대사산물인 아르기닌과 오르니틴의 이미징 질량분석 분석이 대표적인 데이터로 제시됩니다. 이 방법은 다른 분석물, 미생물 병원체 또는 질병, 세포 또는 조직 생화학의 공간적 측정이 필요한 조직 유형에 광범위하게 적용할 수 있습니다.

Introduction

인간 마이크로바이옴은 박테리아, 바이러스, 고세균 및 기타 미생물 진핵생물의 분자 상호 작용을 포함하는 매우 역동적인 생태계입니다. 최근 몇 년 동안 미생물 관계가 집중적으로 연구되었지만 화학적 수준 1,2에서 미생물 과정에 대해 이해해야 할 것이 많이 남아 있습니다. 이는 부분적으로 복잡한 미생물 환경을 정확하게 측정할 수 있는 도구를 사용할 수 없기 때문입니다. 지난 10년 동안 이미징 질량분석법(IMS) 분야의 발전으로 생물학적 기질3,4에서 많은 대사 산물, 지질 및 단백질의 현장 및 표지 없는 공간 매핑이 가능해졌습니다. MALDI(Matrix-assisted laser desorption/ionization)는 질량분석법으로 측정하기 위해 UV 레이저를 사용하여 얇은 조직 절편의 표면에서 물질을 제거하는 것과 관련된 이미징 질량분석법에 사용되는 가장 일반적인 이온화 기법으로 부상했습니다4. 이 공정은 시료 표면에 균일하게 적용된 화학 매트릭스를 적용하여 용이하게 되며, 시료 표면 전체에 걸쳐 래스터 패턴으로 순차적 측정을 수행할 수 있습니다. 그런 다음 분석물 이온 강도의 히트 맵이 데이터 수집 후에 생성됩니다. 이온화 소스 및 샘플링 기술의 최근 발전으로 영양소 한천에서 자란 박테리아5 및 포유류 6,7,8 세포 표본과 같은 비전통적인 기질의 분석이 가능해졌습니다. IMS에 의해 제공되는 분자 공간 정보는 감염동안 미생물-미생물 및 숙주-미생물 상호작용의 생화학적 통신에 대한 독특한 통찰력을 제공할 수 있다 9,10,11,12,13,14.

클로스트리디오이데스 디피실 감염(Clostridioides difficile infection, CDI)이 발생하면, C. 디피실(C. difficile)은 위장관에서 빠르게 변화하는 미생물 환경에 노출되며, 여기서 다미생물 상호작용은 감염 결과에 영향을 미칠 수 있다15,16. 놀랍게도, 감염 동안 C. difficile과 상주 미생물 사이의 상호 작용의 분자 메커니즘에 대해서는 알려진 바가 거의 없습니다. 예를 들어, 장내구균은 장내 미생물군집에 있는 기회주의적 공생 병원체의 한 종류이며 CDI17,18,19,20에 대한 감수성 및 중증도 증가와 관련이 있습니다. 그러나 이러한 병원체 간의 상호 작용에 대한 분자 메커니즘에 대해서는 알려진 바가 거의 없습니다. 장내 마이크로바이옴의 이러한 구성원 간의 소분자 통신을 시각화하기 위해, 박테리아 거대 콜로니를 여기에서 한천에서 성장시켜 통제된 환경에서 미생물-미생물 상호 작용 및 박테리아 생물막 형성을 시뮬레이션했습니다. 그러나 박테리아 배양 표본의 MALDI 이미징 질량 분석 분석에서 대표적인 대사 분포를 얻는 것은 이러한 샘플의 높은 수분 함량과 고르지 않은 표면 지형으로 인해 어렵습니다. 이것은 주로 한천의 높은 친수성 특성과 수분 제거 중 불균일한 한천 표면 반응에 기인합니다.

한천의 높은 수분 함량은 또한 균질한 MALDI 매트릭스 코팅을 달성하는 것을 어렵게 만들 수 있으며 진공21에서 수행되는 후속 MALDI 분석을 방해할 수 있습니다. 예를 들어, 많은 MALDI 소스는 0.1-10 Torr의 압력에서 작동하며, 이는 한천에서 수분을 제거하기에 충분한 진공이며 샘플의 변형을 일으킬 수 있습니다. 진공 환경에 의해 유도된 한천의 이러한 형태학적 변화는 건조된 한천 물질에서 기포 발생 및 균열을 유발합니다. 이러한 아티팩트는 슬라이드에 대한 한천의 부착을 감소시키고 샘플이 기기 진공 시스템으로 분리되거나 박리되는 원인이 될 수 있습니다. 한천 샘플의 두께는 슬라이드에서 최대 5mm까지 떨어져 있을 수 있으며, 이로 인해 기기 내부의 이온 광학 장치에서 불충분한 클리어런스가 생성되어 기기 이온 광학 장치가 오염 및/또는 손상될 수 있습니다. 이러한 누적 효과는 기본 미생물 생화학적 상호 작용보다는 표면 지형을 반사하는 이온 신호의 감소를 초래할 수 있습니다. 한천 샘플은 진공 분석 전에 균일하게 건조되고 현미경 슬라이드에 강하게 부착되어야 합니다.

이 논문은 한천 배지에서 성장한 박테리아 배양 거대 콜로니의 제어된 건조를 위한 샘플 준비 워크플로우를 보여줍니다. 이 다단계의 느린 건조 공정(이전에 보고된 것과 비교)은 현미경 슬라이드에 장착된 한천 샘플의 버블링 또는 균열 영향을 최소화하면서 한천이 균일하게 탈수되도록 합니다. 이 점진적인 건조 방법을 사용하여 샘플을 현미경 슬라이드에 강력하게 부착하고 후속 매트릭스 적용 및 MALDI 분석에 사용할 수 있습니다. 이것은 공생 및 기회 병원체인 Enterococcus faecalis의 존재 여부에 관계없이 CDI를 보유하는 한천 및 쥐 조직 모델에서 성장한 C. difficile의 모델 박테리아 콜로니를 사용하여 예시됩니다. 박테리아 및 조직 모델에 대한 MALDI 이미징 질량 분석 분석을 통해 아미노산 대사 산물 프로파일의 공간 매핑이 가능하여 생체 에너지 미생물 대사 및 통신에 대한 새로운 통찰력을 제공합니다.

Protocol

참고: 동물 실험은 필라델피아 아동 병원의 동물 관리 및 사용 위원회와 펜실베니아 대학교 페렐만 의과대학(프로토콜 IAC 18-001316 및 806279)의 승인을 받았습니다. 주의: 클로스트리디움 디피실리 (C. difficile) 및 엔테로코커스 패칼리 스(E. faecalis)는 BSLII 병원체이므로 각별히 주의하여 취급해야 합니다. 필요한 경우 적절한 오염 제거 프로토콜을 활용?…

Representative Results

우리는 미생물-미생물 상호 작용에서 아미노산의 역할을 연구하기 위해 E. faecalis 및 C. difficile 과 공동 집락화된 모델 박테리아 콜로니 및 마우스의 대사산물 MALDI 이미징 질량 분석법을 수행했습니다. 한천에서 자란 박테리아 거대 콜로니는 박테리아 생물막 형성의 뚜렷한 생화학적 변화를 분석하기 위한 잘 정의된 모델 역할을 합니다. 한천 배지에서 성장한 박테리아 배양 거대콜로…

Discussion

MALDI 이미징 질량 분석 중에는 시료 기판에 입사되는 MALDI 레이저의 일관된 초점 직경을 제공하기 위해 평평한 시료 표면을 갖는 것이 중요합니다. 샘플 높이의 편차로 인해 MALDI 레이저 빔이 초점에서 벗어나 빔 직경과 강도가 변경되어 MALDI 이온화 효율에 영향을 줄 수 있습니다. 이온화 효율의 이러한 변화는 기본 조직 생화학을 반영하지 않고 대신 표면 지형을 반사하는 조직 표면 전반에 걸쳐 ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 연구는 GM138660 상으로 NIH(National Institutes of Health) NIGMS(National Institute of General Medical Sciences)의 지원을 받았습니다. J.T.S.는 플로리다 대학교의 Charles and Monica Burkett Family Summer Fellowship의 지원을 받았습니다. JPZ는 NIH 보조금 K22AI7220(NIAID) 및 R35GM138369(NIGMS)의 지원을 받았습니다. ABS는 펜실베니아 대학의 세포 및 분자 생물학 교육 보조금(T32GM07229)의 지원을 받았습니다.

Materials

0.2 μm Titan3 nylon syringe filters Thermo Scientific 42225-NN
1,5-diaminonaphthalene MALDI matrix Sigma Aldrich 2243-62-1
20 mL Henke Ject luer lock syringes Henke Sass Wolf 4200.000V0 
275i series convection vacuum gauge Kurt J. Lesker company KJL275807LL
7T solariX FTICR mass spectrometer equipped with a Smartbeam II Nd:YAG MALDI laser system (2 kHz, 355 nm)  Bruker Daltonics
Acetic acid solution, suitable for HPLC Sigma Aldrich 64-19-7
Acetonitrile, suitable for HPLC, gradient grade, ≥99.9% Sigma Aldrich 75-05-8
Ammonium hydroxide solution, 28% NH3 in H2O, ≥99.99% trace metals basis Sigma Aldrich 1336-21-6
Autoclavable biohazard bags: 55 gal Grainger 45TV10
Biohazard specimen transport bags (8 x 8 in.) Fisher Scientific 01-800-07
Brain heart infusion broth BD Biosciences 90003-040
C57BL/6 male mice  Jackson Laboratories
CanoScan 9000F Mark II photo and document scanner Canon
CM 3050S research cryomicrotome Leica Biosystems
Desiccator cabinet Sigma Aldrich Z268135
Diamond tip scriber, Electron Microscopy Sciences  Fisher Scientific 50-254-51
Drierite desiccant pellets Drierite 21005
Ethanol, 200 Proof Decon Labs 2701
flexImaging software Bruker Daltonics
ftmsControl software Bruker Daltonics
Glass vacuum trap Sigma Aldrich Z549460
HTX M5 TM robotic sprayer HTX Technologies
Indium Tin Oxide (ITO)-coated microscope slides Delta Technologies CG-81IN-S115
In-line HEPA filter to vacuum pump LABCONCO 7386500
Methanol, HPLC Grade Fisher Chemical   67-56-1
MTP slide-adapter II Bruker Daltonics 235380
Optimal cutting temperature (OCT) compound Fischer Scientific 23-730-571
Peridox RTU Sporicide, Disinfectant and Cleaner CONTEC CR85335 
PTFE (Teflon) printed slides, Electron Microscopy Sciences VWR 100488-874
Rotary vane vacuum pump RV8 Edwards A65401903
Tissue-Tek Accu-Edge Disposable High Profile Microtome Blades Electron Microscopy Sciences 63068-HP
Transparent vacuum tubing Cole Palmer EW-06414-30
Ultragrade 19 vacuum pump oil Edwards H11025011
Variable voltage transformer Powerstat
Water, suitable for HPLC Sigma Aldrich 7732-18-5
Wide-mouth dewar flask Sigma Aldrich Z120790

References

  1. Biteen, J. S., et al. Tools for the microbiome: nano and beyond. ACS Nano. 10 (1), 6-37 (2016).
  2. Shreiner, A. B., Kao, J. Y., Young, V. B. The gut microbiome in health and in disease. Current Opinion in Gastroenterology. 31 (1), 69-75 (2015).
  3. Watrous, J. D., Alexandrov, T., Dorrestein, P. C. The evolving field of imaging mass spectrometry and its impact on future biological research. Journal of Mass Spectrometry. 46 (2), 209-222 (2011).
  4. Gessel, M. M., Norris, J. L., Caprioli, R. M. MALDI imaging mass spectrometry: spatial molecular analysis to enable a new age of discovery. Journal of Proteomics. 107, 71-82 (2014).
  5. Fang, J., Dorrestein, P. C. Emerging mass spectrometry techniques for the direct analysis of microbial colonies. Current Opinion in Microbiology. 19, 120-129 (2014).
  6. Wheatcraft, D. R. A., Liu, X., Hummon, A. B. Sample preparation strategies for mass spectrometry imaging of 3D cell culture models. Journal of Visualized Experiments. (94), e52313 (2014).
  7. Zink, K. E., Dean, M., Burdette, J. E., Sanchez, L. M. Capturing small molecule communication between tissues and cells using imaging mass spectrometry. Journal of Visualized Experiments. (146), e59490 (2019).
  8. Li, H., Hummon, A. B. Imaging mass spectrometry of three-dimensional cell culture systems. Analytical Chemistry. 83 (22), 8794-8801 (2011).
  9. Watrous, J. D., Dorrestein, P. C. Imaging mass spectrometry in microbiology. Nature Reviews Microbiology. 9 (9), 683-694 (2011).
  10. Dunham, S. J. B., Ellis, J. F., Li, B., Sweedler, J. V. Mass spectrometry imaging of complex microbial communities. Accounts of Chemical Research. 50 (1), 96-104 (2017).
  11. Frydenlund Michelsen, C., et al. Evolution of metabolic divergence in Pseudomonas aeruginosa during long-term infection facilitates a proto-cooperative interspecies interaction. Multidisciplinary Journal of Microbial Ecology. 10 (6), 1323-1336 (2016).
  12. Si, T., et al. Characterization of Bacillus subtilis colony biofilms via mass spectrometry and fluorescence imaging. Journal of Proteome Research. 15 (6), 1955-1962 (2016).
  13. Wakeman, C. A., et al. The innate immune protein calprotectin promotes Pseudomonas aeruginosa and Staphylococcus aureus interaction. Nature Communications. 7, 11951 (2016).
  14. Phelan, V. V., Fang, J., Dorrestein, P. C. Mass spectrometry analysis of Pseudomonas aeruginosa treated with azithromycin. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 26 (6), 873-877 (2015).
  15. Ferreyra, J. A., et al. Gut microbiota-produced succinate promotes C. difficile infection after antibiotic treatment or motility disturbance. Cell Host & Microbe. 16 (6), 770-777 (2014).
  16. Buffie, C. G., et al. Precision microbiome reconstitution restores bile acid mediated resistance to Clostridium difficile. Nature. 517 (7533), 205-208 (2015).
  17. Schubert, A. M., et al. Microbiome data distinguish patients with Clostridium difficile infection and non-C. difficile-associated diarrhea from healthy controls. mBio. 5 (3), 01021-01014 (2014).
  18. Auchtung, J. M., et al. Identification of simplified microbial communities that inhibit Clostridioides difficile infection through dilution/extinction. mSphere. 5 (4), 00387 (2020).
  19. Zackular, J. P., et al. Dietary zinc alters the microbiota and decreases resistance to Clostridium difficile infection. Nature Medicine. 22 (11), 1330-1334 (2016).
  20. Tomkovich, S., Stough, J. M., Bishop, L., Schloss, P. D. The initial gut microbiota and response to antibiotic perturbation influence Clostridioides difficile clearance in mice. mSphere. 5 (5), 00869 (2020).
  21. Hoffmann, T., Dorrestein, P. C. Homogeneous matrix deposition on dried agar for MALDI imaging mass spectrometry of microbial cultures. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 26 (11), 1959-1962 (2015).
  22. Yang, J. Y., et al. Primer on agar-based microbial imaging mass spectrometry. Journal of Bacteriology. 194 (22), 6023-6028 (2012).
  23. Prentice, B. M., et al. Dynamic range expansion by gas-phase ion fractionation and enrichment for imaging mass spectrometry. Analytical Chemistry. 92 (19), 13092-13100 (2020).
  24. Bemis, K. D., et al. Cardinal: an R package for statistical analysis of mass spectrometry-based imaging experiments. Bioinformatics. 31 (14), 2418-2420 (2015).
  25. Robichaud, G., Garrard, K. P., Barry, J. A., Muddiman, D. C. MSiReader: An open-source interface to view and analyze high resolving power MS imaging files on Matlab platform. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 24 (5), 718-721 (2013).
  26. Bokhart, M. T., Nazari, M., Garrard, K. P., Muddiman, D. C. MSiReader v1.0: Evolving open-source mass spectrometry imaging software for targeted and untargeted analyses. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 29 (1), 8-16 (2018).
  27. Smith, A. B., et al. Enterococci enhance Clostridioides difficile Pathogenesis. Nature. , (2022).
  28. Korte, A. R., Lee, Y. J. MALDI-MS analysis and imaging of small molecule metabolites with 1,5-diaminonaphthalene (DAN). Journal of Mass Spectrometry. 49 (8), 737-741 (2014).
  29. Hankin, J. A., Barkley, R. M., Murphy, R. C. Sublimation as a method of matrix application for mass spectrometric imaging. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 18 (9), 1646-1652 (2007).
  30. Thomas, A., Charbonneau, J. L., Fournaise, E., Chaurand, P. Sublimation of new matrix candidates for high spatial resolution imaging mass spectrometry of lipids: Enhanced information in both positive and negative polarities after 1,5-diaminonapthalene deposition. Analytical Chemistry. 84 (4), 2048-2054 (2012).
  31. Huizing, L. R., et al. Development and evaluation of matrix application techniques for high throughput mass spectrometry imaging of tissues in the clinic. Clinical Mass Spectrometry. 12, 7-15 (2019).
  32. Anderton, C. R., Chu, R. K., Tolić, N., Creissen, A., Paša-Tolić, L. Utilizing a robotic sprayer for high lateral and mass resolution MALDI FT-ICR MSI of microbial cultures. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 27 (3), 556-559 (2016).
  33. Gilmore, M. S., Clewell, D. B., Ike, Y., Shankar, N. Enterococci: From commensals to leading causes of drug resistant infection. Massachusetts Eye and Ear Infirmary. , (2014).
check_url/64200?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Specker, J. T., Smith, A. B., Keenan, O., Zackular, J. P., Prentice, B. M. Investigation of Microbial Cooperation via Imaging Mass Spectrometry Analysis of Bacterial Colonies Grown on Agar and in Tissue During Infection. J. Vis. Exp. (189), e64200, doi:10.3791/64200 (2022).

View Video