Summary

ミトコンドリアDNA合成と分布のハイスループット画像ベースの定量

Published: May 05, 2023
doi:

Summary

mtDNAの合成と分布を検出および定量するためのマルチウェルプレートフォーマットおよび自動免疫蛍光イメージングを使用して、細胞内のミトコンドリアDNA(mtDNA)代謝のダイナミクスを研究する手順について説明します。これはさらに、mtDNA代謝に対するさまざまな阻害剤、細胞ストレス、および遺伝子サイレンシングの影響を調べるために使用できます。

Abstract

細胞プロセスの大部分はエネルギーの継続的な供給を必要とし、その最も一般的なキャリアはATP分子です。真核細胞は、酸化的リン酸化によってミトコンドリアでATPの大部分を産生します。ミトコンドリアは、複製されて次世代の細胞に受け継がれる独自のゲノムを持っているため、ユニークな細胞小器官です。核ゲノムとは対照的に、細胞内にはミトコンドリアゲノムの複数のコピーがあります。ミトコンドリアゲノムの複製、修復、および維持に関与するメカニズムの詳細な研究は、正常状態と疾患状態の両方でミトコンドリアおよび細胞全体の適切な機能を理解するために不可欠です。ここでは、 インビトロで 培養したヒト細胞におけるミトコンドリアDNA(mtDNA)の合成および分布のハイスループット定量を可能にする方法が提示される。このアプローチは、5-ブロモ-2′-デオキシウリジン(BrdU)取り込みによって標識された活発に合成されたDNA分子の免疫蛍光検出と、抗DNA抗体によるすべてのmtDNA分子の同時検出に基づいています。さらに、ミトコンドリアは特定の色素または抗体で可視化されます。マルチウェル形式で細胞を培養し、自動蛍光顕微鏡を利用することで、mtDNAの動態やミトコンドリアの形態を様々な実験条件下で比較的短時間で研究することが容易になります。

Introduction

ほとんどの真核細胞にとって、ミトコンドリアは多くの細胞プロセスにおいて重要な役割を果たすため、不可欠な細胞小器官です。何よりもまず、ミトコンドリアは細胞の主要なエネルギー供給者です1。ミトコンドリアは、細胞の恒常性(例えば、細胞内酸化還元2およびカルシウムバランス3)、細胞シグナル伝達4,5、アポトーシス6、異なる生化学的化合物の合成7,8、および自然免疫応答9の調節にも関与しています。ミトコンドリア機能障害は、様々な病的状態およびヒト疾患に関連している10

ミトコンドリアの機能は、核ゲノムとミトコンドリアゲノムの2つの別々のゲノムにある遺伝情報に依存します。ミトコンドリアゲノムは核ゲノムに比べて少数の遺伝子をコードしていますが、mtDNAにコードされた遺伝子はすべて人間の生活に不可欠です。mtDNAを維持するために必要なミトコンドリアタンパク質機構は、nDNAによってコードされています。ミトコンドリアレプリソームの基本成分、およびいくつかのミトコンドリア生合成因子はすでに同定されています(以前の研究でレビュー11,12)。しかし、ミトコンドリアDNAの複製と維持のメカニズムはまだ理解されていません。nDNAとは対照的に、ミトコンドリアゲノムは複数のコピーで存在し、ミトコンドリア遺伝子発現を調節するための追加の層を提供します。オルガネラ内のmtDNAの分布と分離、これらのプロセスがどの程度調節されているか、もしそうなら、どのタンパク質が関与しているかについては、現在ほとんど知られていません13。分離パターンは、細胞に野生型と変異したmtDNAの混合集団が含まれている場合に重要です。それらの不均等な分布は、有害な量の変異mtDNAを有する細胞の生成をもたらし得る。

これまでのところ、mtDNAの維持に必要なタンパク質因子は、主に生化学的方法、バイオインフォマティクス分析、または疾患関連研究によって特定されてきました。この作業では、以前に識別を逃れた要因を特定する可能性が高いことを保証するために、別の戦略について説明します。この方法は、チミジンのヌクレオシド類似体である5-ブロモ-2′-デオキシウリジン(BrdU)による複製または修復中のmtDNAの標識に基づいています。BrdUは、DNA合成中に新生DNA鎖に容易に組み込まれ、一般に、核DNAの複製をモニタリングするために使用されます14。しかし、ここで開発された手順は、抗BrdU抗体の免疫蛍光を用いてmtDNAに取り込まれたBrdUを検出するために最適化されています。

このアプローチにより、 in vitroで培養したヒト細胞におけるmtDNA合成と分布のハイスループット定量が可能になります。比較的短時間でさまざまな実験条件下でテストを実施するには、ハイスループット戦略が必要です。したがって、プロトコールでは、細胞培養のためのマルチウェルフォーマットおよびイメージングのための自動蛍光顕微鏡法を利用することが提案されている。このプロトコルには、siRNAライブラリによるヒトHeLa細胞のトランスフェクションと、その後のBrdUによる新しく合成されたDNAの代謝標識を使用したmtDNA複製または修復のモニタリングが含まれます。このアプローチは、抗DNA抗体の助けを借りてDNAの免疫染色と組み合わされます。両方のパラメータは、定量的蛍光顕微鏡を用いて分析される。さらに、ミトコンドリアは特定の色素で視覚化されます。プロトコルの特異性を実証するために、mtDNAを含まない細胞(rho0細胞)、よく知られているmtDNA維持因子のサイレンシング時のHeLa細胞、およびmtDNA複製阻害剤で処理した後のHeLa細胞でBrdU染色をテストしました。mtDNAレベルも独立した方法、すなわちqPCRによって測定された。

Protocol

1. siRNA混合物の調製 実験開始の1日前に、細胞(例えば、HeLa)を100mmディッシュ上に播種し、翌日に70%〜90%のコンフルエントに達するようにする。注意: すべての操作は、層流チャンバー内の無菌条件下で実行する必要があります。 Opti-MEM培地で140 nMの濃度に希釈したsiRNAを適量調製します( 材料表参照)。96ウェルプレートをリザーバーとして使用できま…

Representative Results

mtDNAの合成および分布のダイナミクスのハイスループット研究のための手順のスキームを 図1に示す。マルチウェルプレートフォーマットを使用することで、siRNAライブラリを使用した異なる遺伝子のサイレンシングなど、多くの異なる実験条件の同時解析が可能になります。BrdUで新たに合成されたDNA分子を標識するために使用される条件は、HeLa細胞のミトコンドリア?…

Discussion

歴史的に、BrdUの取り込みおよび抗体検出によるDNA標識は、核DNA複製および細胞周期研究において使用されてきた14,27,28。これまでのところ、BrdU標識DNAを検出するためのすべてのプロトコルには、エピトープの露出を可能にし、抗体の浸透を促進するためのDNA変性ステップ(酸性または熱)または酵素消化(DNaseまたはプロテイ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この研究は、ポーランド国立科学センターの支援を受けました(助成金/受賞番号:2018/31/D/NZ2/03901)。

Materials

2′,3′-Dideoxycytidine (ddC) Sigma-Aldrich D5782
384  Well Cell Culture Microplates, black Greiner Bio-One #781946
5-Bromo-2′-deoxyuridine (BrdU) Sigma-Aldrich B5002-1G Dissolve BrdU powder in water to 20 mM stock solution and aliquot. Use 20 µM BrdU solution for labeling.
Adhesive sealing film Nerbe Plus 04-095-0060
Alexa Fluor 488 goat anti-mouse IgG1 secondary antibody Thermo Fisher Scientific A-21121
Alexa Fluor 555 goat anti-mouse IgM secondary antibody Thermo Fisher Scientific A-21426
BioTek 405 LS microplate washer Agilent
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma-Aldrich A4503
Cell counting chamber Thoma Heinz Herenz REF:1080339
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) Cytiva SH30243.01
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) Thermo Fisher Scientific 41965-062
Fetal Bovine Serum (FBS) Thermo Fisher Scientific 10270-106
Formaldehyde solution Sigma-Aldrich F1635 Formaldehyde is toxic; please read the safety data sheet carefully.
Hoechst 33342 Thermo Fisher Scientific H3570
IgG1 mouse monoclonal anti-BrdU (IIB5) primary antibody Santa Cruz Biotechnology sc-32323
IgM mouse monoclonal anti-DNA (AC-30-10) primary antibody Progen #61014
LightCycler 480 System Roche
Lipofectamine RNAiMAX Transfection Reagent Thermo Fisher Scientific #13778150
MitoTracker Deep Red FM Thermo Fisher Scientific M22426 Mitochondria tracking dye 
Multidrop Combi Reagent Dispenser Thermo Fisher Scientific
Opti-MEM Thermo Fisher Scientific 51985-042
Orca-R2 (C10600) CCD Camera Hamamatsu
Penicillin-Streptomycin  Sigma-Aldrich P0781-100ML
Phosphate buffered saline (PBS) Sigma-Aldrich P4417-100TAB
PowerUp SYBR Green Master Mix Thermo Fisher Scientific A25742
qPCR primer Fw B2M (reference) CAGGTACTCCAAAGATTCAGG 
qPCR primer Fw GPI (reference gene) GACCTTTACTACCCAGGAGA
qPCR primer Fw MT-ND1  TAGCAGAGACCAACCGAACC 
qPCR primer Fw POLG TGGAAGGCAGGCATGGTCAAACC
qPCR primer Fw TFAM GATGAGTTCTGCCTGCTTTAT
qPCR primer Fw TWNK GCCATGTGACACTGGTCATT
qPCR primer Rev B2M (reference) GTCAACTTCAATGTCGGATGG 
qPCR primer Rev GPI (reference gene) AGTAGACAGGGCAACAAAGT
qPCR primer Rev MT-ND1  ATGAAGAATAGGGCGAAGGG 
qPCR primer Rev POLG GGAGTCAGAACACCTGGCTTTGG
qPCR primer Rev TFAM GGACTTCTGCCAGCATAATA
qPCR primer Rev TWNK AACATTGTCTGCTTCCTGGC
ScanR microscope Olympus
siRNA Ctrl Dharmacon D-001810-10-5
siRNA POLG Invitrogen POLGHSS108223
siRNA TFAM Invitrogen TFAMHSS144252
siRNA TWNK Invitrogen C10orf2HSS125597
Suction device NeoLab 2-9335 Suction device for cell culture
Triton X-100 Sigma-Aldrich T9284-500ML
Trypsin Biowest L0931-500
UPlanSApo 20x 0.75 NA objective Olympus

References

  1. Brown, G. C. Control of respiration and ATP synthesis in mammalian mitochondria and cells. The Biochemical Journal. 284, 1-13 (1992).
  2. Zhang, L., et al. Biochemical basis and metabolic interplay of redox regulation). Redox Biology. 26, 101284 (2019).
  3. Pizzo, P., Drago, I., Filadi, R., Pozzan, T. Mitochondrial Ca2+ homeostasis: Mechanism, role, and tissue specificities. Pflugers Archiv: European Journal of Physiology. 464 (1), 3-17 (2012).
  4. Shadel, G. S., Horvath, T. L. Mitochondrial ROS signaling in organismal homeostasis. Cell. 163 (3), 560-569 (2015).
  5. Martínez-Reyes, I., Chandel, N. S. Mitochondrial TCA cycle metabolites control physiology and disease. Nature Communications. 11 (1), 102 (2020).
  6. Galluzzi, L., Kepp, O., Trojel-Hansen, C., Kroemer, G. Mitochondrial control of cellular life, stress, and death. Circulation Research. 111 (9), 1198-1207 (2012).
  7. Rone, M. B., Fan, J., Papadopoulos, V. Cholesterol transport in steroid biosynthesis: role of protein-protein interactions and implications in disease states. Biochimica Et Biophysica Acta. 1791 (7), 646-658 (2009).
  8. Swenson, S. A., et al. From synthesis to utilization: The ins and outs of mitochondrial heme. Cells. 9 (3), 579 (2020).
  9. West, A. P., Shadel, G. S., Ghosh, S. Mitochondria in innate immune responses. Nature Reviews. Immunology. 11 (6), 389-402 (2011).
  10. Nunnari, J., Suomalainen, A. Mitochondria: In sickness and in health. Cell. 148 (6), 1145-1159 (2012).
  11. Pohjoismäki, J. L. O., Goffart, S. Of circles, forks and humanity: Topological organisation and replication of mammalian mitochondrial DNA. BioEssays. 33 (4), 290-299 (2011).
  12. Gustafsson, C. M., Falkenberg, M., Larsson, N. -. G. Maintenance and expression of mammalian mitochondrial DNA. Annual Review of Biochemistry. 85, 133-160 (2016).
  13. Nicholls, T. J., Gustafsson, C. M. Separating and segregating the human mitochondrial genome. Trends in Biochemical Sciences. 43 (11), 869-881 (2018).
  14. Gratzner, H. G. Monoclonal antibody to 5-bromo- and 5-iododeoxyuridine: A new reagent for detection of DNA replication. Science. 218 (4571), 474-475 (1982).
  15. Stirling, D. R., et al. CellProfiler 4: Improvements in speed, utility and usability. BMC Bioinformatics. 22 (1), 433 (2021).
  16. R Core Team. R: A Language and Environment for Statistical Computing. R Foundation for Statistical Computing. , (2021).
  17. . dplyr: A Grammar of Data Manipulation Available from: https://CRAN.R-project.org/package=dplyr (2021)
  18. . data.table: Extension of `data.frame Available from: https://CRAN.R-project.org/package=data.table (2020)
  19. . ggplot2: Elegant graphics for data analysis Available from: https://ggplot2.tidyverse.org (2016)
  20. . ggpubr: "ggplot2" based publication ready plots Available from: https://CRAN.R-project.org/package=ggpubr (2020)
  21. Hashiguchi, K., Zhang-Akiyama, Q. -. M. Establishment of human cell lines lacking mitochondrial DNA. Methods in Molecular Biology. 554, 383-391 (2009).
  22. Piechota, J., Szczesny, R., Wolanin, K., Chlebowski, A., Bartnik, E. Nuclear and mitochondrial genome responses in HeLa cells treated with inhibitors of mitochondrial DNA expression. Acta Biochimica Polonica. 53 (3), 485-495 (2006).
  23. Spelbrink, J. N., et al. Human mitochondrial DNA deletions associated with mutations in the gene encoding Twinkle, a phage T7 gene 4-like protein localized in mitochondria. Nature Genetics. 28 (3), 223-231 (2001).
  24. Campbell, C. T., Kolesar, J. E., Kaufman, B. A. Mitochondrial transcription factor A regulates mitochondrial transcription initiation, DNA packaging, and genome copy number. Biochimica et Biophysica Acta. 1819 (9-10), 921-929 (2012).
  25. Krasich, R., Copeland, W. C. DNA polymerases in the mitochondria: A critical review of the evidence. Frontiers in Bioscience. 22 (4), 692-709 (2017).
  26. Kotrys, A. V., et al. Quantitative proteomics revealed C6orf203/MTRES1 as a factor preventing stress-induced transcription deficiency in human mitochondria. Nucleic Acids Research. 47 (14), 7502-7517 (2019).
  27. Gratzner, H. G., Pollack, A., Ingram, D. J., Leif, R. C. Deoxyribonucleic acid replication in single cells and chromosomes by immunologic techniques. Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 24 (1), 34-39 (1976).
  28. Leif, R. C., Stein, J. H., Zucker, R. M. A short history of the initial application of anti-5-BrdU to the detection and measurement of S phase. Cytometry. Part A: The Journal of the International Society for Analytical Cytology. 58 (1), 45-52 (2004).
  29. Lentz, S. I., et al. Mitochondrial DNA (mtDNA) biogenesis: visualization and duel incorporation of BrdU and EdU into newly synthesized mtDNA in vitro. The Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 58 (2), 207-218 (2010).
  30. Liu, Y., et al. Multi-omic measurements of heterogeneity in HeLa cells across laboratories. Nature Biotechnology. 37 (3), 314-322 (2019).
check_url/65236?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Borowski, L. S., Kasztelan, K., Czerwinska-Kostrzewska, J., Szczesny, R. J. High-Throughput Image-Based Quantification of Mitochondrial DNA Synthesis and Distribution. J. Vis. Exp. (195), e65236, doi:10.3791/65236 (2023).

View Video