Summary

In Vivo Formazione immagine di specie reattive dell'ossigeno in un murino ferita modello

Published: November 17, 2018
doi:

Summary

Descriviamo un non-invasiva in vivo imaging protocol che è semplice e conveniente, utilizzando L-012, un a chemiluminescenza luminol-analogico, per visualizzare e quantificare le specie reattive dell’ossigeno (ROS) generate in un modello murino di excisional ferita.

Abstract

La generazione di specie reattive dell’ossigeno (ROS) è una caratteristica dei processi infiammatori, ma in eccesso, lo sforzo ossidativo è ampiamente implicato in varie patologie come il cancro, aterosclerosi e diabete. Precedentemente abbiamo indicato che la disfunzione del fattore nucleare (derivato degli eritrociti 2)-come 2 (Nrf2) / degli eritrociti Kelch-come cellula-derivato proteina 1 (Keap1) segnalazione sentiero conduce ad estremo squilibrio ROS durante cutanea delle ferite in diabete. Poiché i livelli di ROS sono un importante indicatore di progressione della guarigione delle ferite, tecniche specifiche e accurata quantificazione sono preziosi. Sono stati descritti diversi saggi in vitro per misurare il ROS in cellule e tessuti; Tuttavia, essi forniscono solo una singola misurazione cumulativa per campione. Più recentemente, hanno consentito lo sviluppo di indicatori basati su proteine e modalità di imaging uniche analisi spazio-temporale. L-012 (C13H8ClN4NaO2) è un derivato di luminol che può essere utilizzato per sia in vivo che in vitro chemiluminescente rilevamento di ROS generati dall’ossidasi di NAPDH. L-012 emette un segnale più forte rispetto altre sonde fluorescenti e ha dimostrato di essere sensibile e affidabile per la rilevazione di ROS. L’applicabilità del lasso di tempo del L-012-facilitato imaging fornisce informazioni preziose sui processi infiammatori, riducendo la necessità del sacrificio e nel complesso riducendo il numero di animali di studio. Qui, descriviamo un protocollo che utilizza L-012-facilitato in vivo imaging per quantificare lo sforzo ossidativo in un modello di excisional cicatrizzazione utilizzando topi diabetici con localmente disfunzionale Nrf2/Keap1.

Introduction

I metaboliti dell’ossigeno generati attraverso processi infiammatori contribuiscono a diverse cascate di segnalazione così come alterazione distruttiva delle componenti cellulari1. Utilizzando tecniche sensibili e specifiche per misurare il ROS è fondamentale per lo studio dei processi infiammatori e caratterizzare gli effetti dello stress ossidativo. In vivo imaging è prezioso a causa della sua capacità di fornire dati dinamici spaziali e temporali nel tessuto vivente. L-012 è una sonda chemiluminescente sintetica che è altamente sensibile per gli anioni superossido e produce un’intensità luminosa rispetto altre sonde fluorescenti in cellule, tessuti e sangue intero1,2,3, 4. è stato impiegato con successo per l’imaging in vivo in modelli murini per lo studio di parecchie malattie infiammatorie, tra cui l’artrite e colite5,6. Deve ancora essere impiegato in un modello di cicatrizzazione cutanea stabilita. Misura del ROS generati sono altrettanto rilevante per valutare la progressione della guarigione della ferita in condizioni diverse. La sensibilità e la natura non invadente di questo metodo rende una tecnica promettente per lo studio della guarigione delle ferite attraverso modelli murini.

Nrf2 è delle principali cause della risposta antiossidante e un fattore trascrizionale con specificità per l’elemento di risposta antiossidante (ARE) comune per le regioni promotrici di diversi antiossidanti enzimi8. In assenza di stress ossidativo, Nrf2 è sequestrato nel citoplasma di Keap1, che successivamente causa sua ubiquitinazione e degradazione. Squilibrio del pathway Nrf2/Keap1 è stato implicato nella omeostasi redox inappropriati e ritardata guarigione delle ferite nella regolazione di sforzo ossidativo aumentato9. Precedentemente abbiamo indicato che la soppressione di Keap1 stimola l’attività aumentata di Nrf2 e promuove il salvataggio di guarigione arrotolata cutanea patologica nei diabetici ferite9.

Qui descriviamo un protocollo che utilizza L-012-assistita bioluminescenza imaging per misurare i livelli di ROS in un modello di guarigione della ferita cutanea escissionale, che è fondamentale per evidenziare l’associazione tra ROS e la guarigione della ferita. Questa tecnica viene illustrato le modifiche in tempo reale in carico ossidativo all’interno di ferite e immediata periferia. Inoltre, questo metodo consente rapida valutazione degli interventi e meccanismi che influenzano la gestione delle redox. Qui usiamo un modello di atterramento Keap1 per il ripristino dell’omeostasi redox per valutare l’applicabilità della nostra strategia. Perché la nostra tecnica è non invasiva e ferite sono indisturbate, lo stesso animale può essere utilizzato per ulteriori analisi di conferma sulla base di istologia o cella lisati.

Protocol

Tutti i metodi descritti qui sono stati approvati dal istituzionale Animal Care e uso Comitato della New York University School of Medicine. Tutti i topi sono alloggiati dietro una barriera e tutto il personale indossano adeguati dispositivi di protezione personale. 1. giorno 0: Preparazione del modello murino di Excisional cicatrizzazione Anestetizzare topi diabetici (Leprdb/db), età compresa tra 8 – 12 settimane, con inhalational 2% isoflurane. Confermare che ogni mou…

Representative Results

Tre giorni dopo la creazione di ferite bilaterale secondo un modello stabilito ferita excisional (Figura 1A), topi diabetici sono posizionati nella camera di imaging. Una fotografia iniziale e una misura della bioluminescenza sono tenuti prima dell’iniezione di L-012 al segnale di fondo (Figura 1B). A seguito di iniezione intraperitoneale con la soluzione di L-012, i topi vengono riposizionati nella camera e bioluminescenza è vi…

Discussion

Tecniche comuni per la misurazione di ROS sono state limitate tramite protocolli complessi che richiedono l’estrazione di tessuto o allo stesso modo le tecniche invasive. Negli ultimi anni, le misure dello sforzo ossidativo sono state segnalate sulla base di modalità di imaging innovative, consentendo in tal modo per valutazioni spatiotemporal9,10,11. L-012 ha diversi vantaggi come una sonda chemiluminescente rispetto al lumino…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Siamo grati al nucleo Imaging preclinico presso la NYU School of Medicine, con un ringraziamento speciale Aristizabal Orlando e Youssef Zaim Wadghiri. Il nucleo è una risorsa condivisa parzialmente supportata da Laura e Isaac Perlmutter Cancer Center Support Grant NIH/NCI 5P30CA016087 e NIBIB Biomedical Technology Resource Center Grant NIH P41 EB017183. Questo lavoro è stato sostenuto dall’associazione americana del diabete “Pathway per fermare il diabete” D.C. [concessione numero 1-16-ACE-08] e al NYU applicato ricerca supporto fondo di P.R.

Materials

BKS.Cg-Dock7m+/+ Leprdb/J mice Jackson Laboratories 000642
13 cm x 18 cm Silicone sheet (0.6 mm) Sigma Aldrich  665581
3M Tegaderm Transparent Film Dressings 3M 88-1626W
Lipofectamine 2000 Transfection Reagent Life Technologies  11668027
Keap1 Stealth siRNA Thermofisher Scientific 1299001
Silencer negative control  Thermofisher Scientific  AM4635
Opti-MEM Reduced Serum ThermoFisher Scientific 11058021
DPBS ThermoFisher Scientific 14040133
Methyl-cellulose  Sigma Aldrich 9004-67-5
L-012 Wako Chemicals 120-04891
IVIS Lumina III XR In Vivo Imaging System  PerkinElmer

References

  1. Nishinaka, Y., et al. A new sensitive chemiluminescence probe, L-012, for measuring the production of superoxide anion by cells. Biochemical and Biophysical Research Communications. 193 (2), 554-559 (1993).
  2. Daiber, A., et al. Measurement of NAD(P)H oxidase-derived superoxide with the luminol analogue L-012. Free Radical Biology and Medicine. 36 (1), 101-111 (2004).
  3. Imada, I., et al. Analysis of reactive oxygen species generated by neutrophils using a chemiluminescence probe L-012. Analytical Biochemistry. 271 (1), 53-58 (1999).
  4. Sohn, H. Y., Gloe, T., Keller, M., Schoenafinger, K., Pohl, U. Sensitive superoxide detection in vascular cells by the new chemiluminescence dye L-012. Journal of Vascular Research. 36 (6), 456-464 (1999).
  5. Fuchs, K., et al. In vivo Hypoxia PET Imaging Quantifies the Severity of Arthritic Joint Inflammation in Line with Overexpression of Hypoxia-Inducible Factor and Enhanced Reactive Oxygen Species Generation. The Journal of Nuclear Medicine. 58 (5), 853-860 (2017).
  6. Asghar, M. N., et al. In vivo imaging of reactive oxygen and nitrogen species in murine colitis. Inflammatory Bowel Diseases. 20 (8), 1435-1447 (2014).
  7. Galiano, R. D., Michaels, J. t., Dobryansky, M., Levine, J. P., Gurtner, G. C. Quantitative and reproducible murine model of excisional wound healing. Wound Repair and Regeneration. 12 (4), 485-492 (2004).
  8. Soares, M. A., et al. Restoration of Nrf2 Signaling Normalizes the Regenerative Niche. Diabetes. 65 (3), 633-646 (2016).
  9. Wang, X., et al. Imaging ROS signaling in cells and animals. Journal of Molecular Medicine. 91 (8), 917-927 (2013).
  10. Kielland, A., et al. In vivo imaging of reactive oxygen and nitrogen species in inflammation using the luminescent probe L-012. Free Radical Biology and Medicine. 47 (6), 760-766 (2009).
  11. Balke, J., et al. Visualizing Oxidative Cellular Stress Induced by Nanoparticles in the Subcytotoxic Range Using Fluorescence Lifetime Imaging. Small. , (2018).
  12. Zielonka, J., Lambeth, J. D., Kalyanaraman, B. On the use of L-012, a luminol-based chemiluminescent probe, for detecting superoxide and identifying inhibitors of NADPH oxidase: a reevaluation. Free Radical Biology and Medicine. 65, 1310-1314 (2013).
  13. Dikalov, S. I., Harrison, D. G. Methods for detection of mitochondrial and cellular reactive oxygen species. Antioxidants & Redox Signalling. 20 (2), 372-382 (2014).
  14. Rabbani, P. S., et al. Targeted Nrf2 activation therapy with RTA 408 enhances regenerative capacity of diabetic wounds. Diabetes Research and Clinical Practice. 139, 11-23 (2018).
  15. Rabbani, P. S., et al. Novel lipoproteoplex delivers Keap1 siRNA based gene therapy to accelerate diabetic wound healing. Biomaterials. 132, 1-15 (2017).
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Citer Cet Article
Rabbani, P. S., Abdou, S. A., Sultan, D. L., Kwong, J., Duckworth, A., Ceradini, D. J. In Vivo Imaging of Reactive Oxygen Species in a Murine Wound Model. J. Vis. Exp. (141), e58450, doi:10.3791/58450 (2018).

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