Summary
细菌细胞成像是一种新兴的系统生物学方法，侧重于定义静态和动态过程，这些过程决定了大型大分子机器的功能。在这里，定量活细胞成像和低温电子断层扫描的集成用于研究军团菌肺瘤IV型分泌系统架构和功能。
Abstract
军团菌的点/Icm分泌系统是一种复杂的IV型分泌系统（T4SS）纳米机器，在细菌极处进行定位，并调解蛋白质和DNA基质向靶细胞的输送，这一过程通常需要细胞到细胞直接接触。我们最近通过低温电子断层扫描（cryo-ET）解决了Dot/Icm仪器的结构，并表明它形成了一个细胞包络跨度通道，连接到细胞质复合体。应用两种补充方法，保持标本的原生结构，荧光显微镜在活细胞和低温-ET中，允许蛋白质的原位可视化和同化每个机器部件相对于其他点/Icm子单位的生产时间。为了研究极性定位的要求，并描述与T4SS机器生物成因相关的动态特征，我们将编码超级文件夹绿色荧光蛋白的基因融合到Dot/Icm ATPase基因的原生位置。以下方法集成了活细胞和低温-ET的定量荧光显微镜，以量化这些蛋白质在完整细菌细胞中的极性定位、动力学和结构。应用这些方法研究军团菌肺炎T4SS有助于描述Dot/Icm系统的功能，并可用于研究利用T4SS或其他类型的细菌分泌复合物的各种细菌病原体。
Introduction
军团菌肺杆菌（L.肺炎杆菌），军团病的病因，栖息在淡水水库，细菌通过感染和复制水生自由游泳原生动物传播。L. 肺尘埃球菌在吸入饮用水源中的气溶胶细菌时，导致人类疾病爆发。在受感染的细胞中，宿主通路的颠覆使L.肺炎杆菌能够延缓其所在的真空细胞的内皮成熟，并促进支持细菌复制的细胞舱的生物生成。这个过程是由一个专门的细菌类型IVB分泌系统（T4BSS）称为Dot/Icm及其的300多个"效应器"蛋白质的品种，在感染期间被转移到宿主细胞群素，以促进细胞功能1，2，3，4，5的操纵。缺乏功能点/Icm仪器的突变体不能将效应器输送到宿主细胞索中，在细胞内复制方面存在缺陷，在疾病6、7的动物模型中具有avirule。
许多细菌物种已经开发出了感染过程所需的极其复杂和动态的多组分机。其他T4BSS，如Dot/Icm系统也是必不可少的细胞内复制细菌病原体，如科西拉布鲁内蒂和里基西拉格丽利。虽然T4BSS与原型型IVA系统具有进化关系，后者调解DNA转移，并能提供有限的有效蛋白，但Dot/Icm系统拥有几乎两倍的机器部件，并提供各种各样的效应器。据推测，这种组件数量的扩大使Dot/Icm设备能够轻松容纳和集成新的效应器8，9。
我们最近使用低温电子断层扫描（cryo-ET）就地解决了Dot/Icm仪器的结构，并表明它形成了一个细胞包络跨度通道，连接到细胞质复合体。进一步分析表明，通过与细胞体ATPase DotO的相互作用，圆细胞状ATPase DotB与L.肺尘埃球细胞极的点/Icm系统有关。我们发现，DotB在大多数细菌细胞中显示一个循环球状运动，这表明这种ATPase存在于动态的细胞群中，但也与极性点/Icm复合物有关联。此外，DotO 形成与内膜复合体相关的 DotO 二分器的 hexamic 组件，DotB hexamer 连接到此细胞质复合物的基座。DotB-DotO 能量复合体的组装创建了一个细胞质通道，通过 T4SS（图 1）10引导基材的易位。
尽管最近取得了这些进展，但关于Dot/Icm系统如何发挥作用以及每种蛋白质如何组装形成一个活性装置8知之甚少。发现Dot/Icm T4SS的调节回路对于理解宿主-病原体相互作用的分子机制至关重要。因此，我们讨论如何使用活细胞显微镜和低温-ET来检测和表征使用超级文件夹GFP（sfGFP）标记的基本L.肺活血杆菌/Icm系统组件。使用定量荧光显微镜，DotB 的极定位将在野生类型背景中定义，或者当 IV 型系统被删除时。延时显微镜将用于量化点/Icm细胞学的定位和动力学差异。
与其他体外系统相比，实时成像和低温ET等两种互补方法的组合应用提供了优势。这两种方法均以完整的细胞执行，并保护T4BSS的自然环境，从而最大限度地减少样品制备过程中原生结构的干扰。由于蛋白质的过度表达可能会损害分泌器的分泌器的分泌器，sfGFP融合通过异位交换返回到军团菌染色体，以便每个融合在单拷贝中编码，并且表达由内源促进者驱动。色谱编码聚变的可视化能够量化在规定的时间点表达的蛋白质的确切水平。Cryo-ET 在确定分泌系统结构方面也有许多优点。最显著的优点是低温-ET样品由冷冻完整细胞组成，在细菌细胞结构中保留原生复合物。因此，低温-ET可能比生化纯化方法更可取，后者提取膜复合物，并可能从核心设备中去除外周蛋白或修改整体结构。此外，用笨重的蛋白质（如 sfGFP）标记感兴趣的蛋白质，可添加低温-ET 可检测的质量，并有助于将 Dot/Icm 仪器的不同子复合物映射到低温-ET 获得的结构上。
这种方法是一个强大的工具，用于发现在细菌细胞膜中组装的多分子复合物的结构信息。解释使用这些技术阐明的结构将有助于现场了解 T4BSS 组件的工作原理、为什么函数需要这么多组件、组件如何在更复杂范围内交互以及这些组件的功能子组件执行。
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Protocol
注：所有涉及肺尘埃球菌生长、操作和成像的程序都应按照当地准则在生物安全2级实验室进行。
1. 使用全位交换和双选择策略将sfGFP插入L.肺炎嗜血杆菌染色体（图2，图3）
- 克隆成基因置换载体pSR47S11以下序列：1000bp上游感兴趣的站点，然后是sfGFP序列，然后是1000bp下游感兴趣的站点（图2）。sfGFP 序列应放置在 N 端或 C 端的框架中，其链接器包含四到八个氨基酸。将生成的病媒转换为大肠杆菌DH5_pir。后来，单菌菌提取物（CYE）agar12的单菌体L.肺炎杆菌（受体）含有100μg/mL链霉素，在37°C下生长5天（图3）。
- CYE-agar-链霉素上的条纹L.肺炎杆菌，在37°C（重斑）10下生长2天。带 25 μg/mL 氯霉素的 LB Agar 上用 pRK600 助种质粒（帮助器）13转化了大肠杆菌 DH5+。在含有50微克/mL卡那霉素的LBAgar上，将大肠杆菌DH5_pir（供体）划破。
- 进行三亲交配：在未选择的情况下，将三个菌株的斑块覆盖在CYE加盘上，在37°C下孵育4~8小时，从而孵育一个帮手、捐赠者的蚁群和受体。当负对照在相同时间段内孵育帮助者-受体菌株组合和捐赠者-受体菌株组合时。
- 在含有100微克/mL链球菌霉素的CYE加上反应500μL中重新悬浮交配反应，并在37°C下生长5天。在含有100微克/mL链霉素的CYEAgar上产生的克隆的条纹四，在37°C下生长5天。
- 在CYE Agar上克隆16个，含有5%蔗糖和100微克/mL链霉素，在37°C下生长5天。然后，这些克隆的条纹32在CYE Agar上含有100μg/mL链球菌霉素，在含有100微克/mL链球菌霉素和10μg/mL假霉素的CYE加上，在37°C下生长5天。
2. 将sfGFP集成到L.肺炎染色体中的克隆人分离
- 对CYE-agar-链霉素板上的卡那霉素敏感的条纹克隆，确认sfGFP插入具有菌落PCR的染色体中。使用与 sfGFP 基因和感兴趣的染色体区域互补的底漆来放大插入结。
- 将 10 μM 底漆溶液中的每个溶液和一个聚位混合 0.5 μL，最终体积为 12.5 μL，在 95 °C 下变性 10 分钟。在冰上冷却 10 分钟，加入 12.5 μL 的 2x PCR 主混合溶液，并执行 PCR 分析。
- 在37°C下，在CYE-agar-链霉素板上生长2天的孤立菌落的重斑块。通过抗GFP抗体的免疫膨胀，检查sfGFP融合的表达水平和稳定性。
3. L. 肺杆菌的活细胞成像与荧光标记点/Icm成分
- 准备琼脂糖垫
- 在水中生产约 30 mL 的 1% 低熔脂糖溶液。微波炉在玻璃瓶中约90s，偶尔旋转，直到琼脂完全溶解。
- 将两张 22 x 22 x 0.15 mm3玻璃幻灯片放在 25 x 75 x 1.1 mm3玻璃幻灯片的边缘，一张放在另一个玻璃幻灯片的顶部。将两个 22 x 22 x 0.15 mm3玻璃幻灯片堆叠在另一个边缘。
- 约1 mL的熔融琼脂放入两个上部玻璃幻灯片之间的中心滑移，然后将另一张 25 x 75 x 1.1 mm3滑道放在熔融阿加罗斯的顶部。尽量避免形成气泡。在 4 °C 下冷却幻灯片 15 分钟。
- 使用手术刀或剃刀刀片，轻轻地将垫子切成小方块，±5 x 5 mm2。在 25 x 75 x 1.1 mm3玻璃滑轨上固定双面胶粘剂 17 x 28 x 0.25 mm3框架，并在滑轨上放置多个垫。
- 图像采集
注：以下步骤用于由 SlideBook 6.0 控制并配备固态照明器、CCD 单色摄像机和 100 倍客观透镜（1.4 个数值光圈）的显微镜。如果需要，请使用具有适当硬件和软件配置的替代显微镜设备，这些配置可根据协议设置进行自定义。- 将一块重片的L.肺炎杆菌溶解在1 mL的ddH2O，涡流和移液2+3μL的稀释到垫上。将 50 x 24 x 0.15 mm3盖玻片轻轻放在粘合框架上。
- 在捕获窗口中将 ND 调整为 180。将分箱调整到2⁄2，并使用488 nm通道在500~1000 ms之间暴露样品。
4. 极性定位和点/Icm成分动力学的定量
注： 以下步骤设计用于使用 2 x 2 分箱获得/像素为 0.129 μm 的图像。
- sfGFP融合蛋白极性量化 （图 5）
- 调整图像对比度，使细菌清晰可见。使用区域工具放置一个 0.25 x 1.3 μm2矩形，从极点开始并延伸到细胞质。矩形必须精确地保持在细菌边界内。
- 标记至少 200 种细菌，并使用"区域"遮罩按钮向感兴趣的区域创建蒙版。在蒙版统计和蒙版范围下，选择对象。然后，在"特征和强度"下，标记平均强度和方差。
- 导出数据并计算每个细菌的极性分数，作为方差与平均强度之间的比率。
- 对于高通量应用，使用相位目标和适当的冷凝器设置来获取具有相位和 488 nm 通道的图像。确保选择细菌完全分离的视场。
- 调整图像的相通道对比度，使细菌清晰可见。打开双通道图像，启动"创建分段蒙版"窗口并将通道更改为相位。
- 使用"定义对象"按钮调整适当的阈值并删除小对象。在"优化蒙版"下，选择"删除边缘对象"，然后分离彼此相邻的细菌蒙版。
- 计算每个单元的 488 通道中信号的极性分数，如前所述步骤 4.1.2_4.1.3 中所述。
- sfGFP融合蛋白动力学的定量（图6）
注：按照第 3 节中的说明准备图像采集示例。动态定义为强度随时间的变化，以下步骤设计用于短成像周期（即几分钟）。如果需要更长的成像周期，添加到垫上适当的补充剂。- 在"图像捕获"窗口中，在间隔框中标记"延时"，在间隔框中输入间隔时间，并在"时间点"框中输入2。获得连续两张L.肺炎嗜血杆菌的图像，表达感兴趣的荧光蛋白。
- 调整图像对比度，直到单元格清晰可见。请按照图 6A和下面的说明放置三个不同的蒙版。使用区域工具将 0.25 x 0.25 μm 正方形放置在至少 400 个单元格的中间。
- 使用"区域"遮罩按钮创建感兴趣方块的蒙版（蒙版 1）。创建新的空掩码（掩码 2），并使用像素工具或多边形工具标记至少 25 个随机单元格的整个单元格区域，用于计算荧光漂白。创建新的空掩码（蒙版 3），并使用大型画笔工具标记单元格之间的区域，这些区域将用于背景减法。
- 在蒙版统计和蒙版范围下，选择蒙版 1的对象和蒙版 2。然后，在"特征和强度"下，选择"平均强度"并导出两个蒙版的数据。对于蒙版 3，导出整个蒙版的平均强度。
- 使用以下公式计算掩码 1 中每个对象的荧光强度变化：
其中掩码1是放置在细胞中心的0.25 μm × 0.25 μm平方，掩码2覆盖整个细胞，掩码3是细胞之间的背景，t1是第一时间点的平均强度，t2是第二时间点的平均强度。
5. 使用冷冻-ET 检测 sfGFP 质量密度
- 样品制备、数据收集和重建
- 在37°C下，在CYE-agar-链霉素板上生长48小时，在CYE-agar-链霉素板上生长一个重片L.肺炎杆菌，表达荧光标记的点/Icm蛋白。重新挂起 ddH2O 到 OD600 ±0.7 的单元格。将5 μL胶体金颗粒（BSA 跟踪器，10 nm）添加到细胞悬浮液的20μL。
- 移液器5 μL的细胞混合物到新鲜发光释放的孔碳网格（R 2/1在Cu 200网格上），让站在1分钟，用滤纸和冻结在液体乙醚使用重力驱动的柱塞仪器，如前所述的14，15。
- 使用配备场发射枪、能量过滤器、Volta 相位板和直接检测装置的 300 kV 透射电子显微镜对冷冻水合试样进行成像。以 26，000 倍和 42，000 倍的放大倍率收集单轴倾斜系列，从而在试样级别分别达到 5.4 ×/像素或 3.4 ×/像素的像素大小。
- 使用地形包 SerialEM 以 ±0 μm 散焦收集图像堆栈，倾斜角度范围介于 -60° 和 +60° 之间，增量为 3°，累积剂量为 +60 e-/+2，16。使用 MotionCor217将每个堆栈中的剂量分馏电影图像对齐。使用 TOMOAUTO14组装漂移校正的堆栈。
- 通过 IMOD 标记相关对齐18对齐漂移校正堆栈。使用SIRT方法19重建图，用于分割和直接图像分析和WBP方法20。
- sfGFP 融合样品的子光度图分析
- 使用地形包I3（0.9.9.3）进行子光度分析14、21、22。
注： 对齐过程是迭代的，每次迭代由生成引用和分类蒙版的三个部分组成，子光度图对齐和分类，类平均值相互对齐。 - 使用 4 x 4 x 4 装箱的子色调图进行初始对齐。合并属于类平均值的粒子，并显示与 sfGFP 对应的电子密度。使用 sfGFP 聚变对粒子进行排序后，使用 2 x 2 x 2 装箱的亚圆图对感兴趣区域（如 Dot/Icm 细胞质 ATPase 复合物）进行聚焦对齐，以获得高分辨率结构。
- 使用地形包I3（0.9.9.3）进行子光度分析14、21、22。
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Representative Results
在两个步骤中采用双选择进行同源重组，用于构造 sfGFP 的定义插入。在第一步中，进行了三亲交配，其中从大肠杆菌帮助器菌株MT616的pRK600偶联质质质体（IncP质粒）被调动到捐赠者大肠杆菌菌株与自杀载体pSR47S包含sfGFP基因的两个同源区域，转移奥里特的起源和杆菌子选择基因囊肿。接下来，从pRK600的合并系统协助将pSR47S衍生物动员到L.肺炎杆菌（Lp01，图2A）。由于抗生素耐药性基因 KanR，通过单个交叉事件成功集成了 pSR47S 的克隆，并传播允许第二次交叉。在第二次交叉过程中失去囊肿基因的克隆是通过电镀反选择性剂蔗糖上的细胞而选择的（图2，图3）。使用抗GFP抗体（α-GFP）进行免疫布洛分析，以确定sfGFP是否被裂解，并评估野生类型或完全点/厘米删除突变体中融合蛋白的稳定性和表达水平。此外，在进行显微镜检查之前，通过PCR确认了sfGFP基因正确融入染色体（图3）。一旦确认融合的稳定性和集成，进行活细胞荧光显微镜检查，并将荧光信号克隆的特异性与父母sfGFP阴性菌株进行比较。此外，使用明亮场或相显微镜进行双成像检查具有特定荧光信号的细胞的比例（图4）。
产生DotB-sfGFP的细胞中只有一小部分显示出融合蛋白的极性定位（图5A）。为了描述DotB荧光信号的分布，对这些细胞中沿纵轴的DotB-sfGFP强度进行了量化。极点的点B强度比细胞索尔高约2倍（图5B）。由于确定荧光标记聚变蛋白的定位是否与生物学相关非常重要，因此我们询问 DotB-sfGFP 极性定位是否依赖于完全组装的 T4BSS。因此，DotB-sfGFP的极性分数表示在极点测得的平均荧光与在细胞中间测得的荧光之比，为野生类型和T4BSS突变体中的单个细胞（图5C+E）确定。事实上，整个Dot/Icm系统的删除废除了DotB-sfGFP的极性定位，证实了极性双子星代表DotB与T4SS的联系，以及Dot/Icm机器对招募这种ATPase的重要性。在大多数L.肺尘埃球细胞中，DotB-sfGFP还显示了圆细胞运动，表明它存在于动态的细胞群中，但也能够与极点/Icm复合体关联。为了量化DotO和DotB ATPases之间的动态运动差异，获得了两个连续的图像，并确定了荧光强度的变化，并将其与sfGFP进行比较（图6A）。虽然sfGFP和DotO-sfGFP几乎没有显示动态模式，但细胞溶质中的DotB-sfGFP强度变化被转移，并且明显较高。这些观测表明， DotB ATPase 存在于动态的圆中，在后期装配反应中，空间动态的 DotB ATPase 被招募到极性局部点 / Icm T4SS （图 6B ）。
为了定义 DotB 相对于 Dot/Icm 机器的空间位置，使用高通量低温-ET 在L. 肺球菌菌株中可视化完整的 T4BSS 设备，以表示 DotB-sfGFP。首先，对表达DotB-sfGFP的L.肺炎细胞进行了重建，并揭示了细胞包络中嵌着的典型多锥形复合物（图7A，B）。我们以前使用具有各种Dot/Icm突变体、荧光显微镜和低温-ET的表观实验证明，DotB位于ATPase DotO10的独特组装下方。表示 DotB-sfGFP 的应变的子光度图平均数决定了 DotB 相对于完好的 T4BSS 机器的总体定位。此分析显示，与 sfGFP 的额外质量相关的额外密度（图7C）。最后，整个 Dot/Icm T4SS 的三维表面渲染表明 sfGFP 位于 DotB hexamer 下方，该底作为圆盘组装在细胞质 ATPase 复合物（图 8）10。
图1：L.肺炎点/Icm T4SS的三维表面渲染。OM = 外膜，IM = 内膜，PG = 多狗。图像是从切特瑞特D.等人修改的10。请点击此处查看此图形的较大版本。
图2：用于将sfGFP插入L.肺炎染色体的同源重组和等位交换的原理图概述。（A） 大肠杆菌MT616助剂菌株之间进行了三亲交配，该菌株含有结合质质质pRK600（IncP质粒），一种与自杀病媒pSR47S转化的捐赠大肠杆菌菌株，以及作为受体的L.肺炎嗜血杆菌。（B） 图解模型描绘了将 sfGFP 插入L. 肺尘埃体染色体以生成 C 端 sfGFP 融合蛋白所需的步骤。使用卡那霉素和计数器可选择标记sacB分两步完成等位交换突变体的选择。请点击此处查看此图形的较大版本。
图 3：等位交换测定工作流。L. 肺尘埃皮病在适当的选择和生长时间上条纹（详情请参阅协议部分）。后来，使用与sfGFP基因互补的引底质和插入部位侧的染色体区域，用菌体PCR确认sfGFP插入染色体。使用抗GFP抗体的免疫布洛分析检查了融合蛋白的稳定性。左下角面板：车道 1 = 未标记的 Lp01，Lane2= 从dotB操作手表示的 sfGFP，通道 3 = DotB-sfGFP 以完整的点/icm删除突变体表示，通道 4 = DotB-sfGFP 以野生类型背景表示。WB = 西方斑点。在每个步骤中分析的克隆数在括号中指示。请点击此处查看此图形的较大版本。
图4：L.肺炎杆菌的活细胞成像，表达荧光标记的Dot/Icm子单位。（A） L. 肺炎杆菌从两天的重补丁被重新悬浮在ddH2O，并放置在1%的低融化阿根丝垫的顶部。（B） 色光编码 DotB-sfGFP 的应变的荧光信号的特异性与父型 GFP 阴性Lp01应变进行比较。刻度条 = 3 μm。请点击此处查看此图形的较大版本。
图5：点/Icm系统子单元极定位的定量。（A）在 Lp01中表示的 DotB-sfGFP 的实时可视化显示极性本地化。DotB-sfGFP显示一个漫反射模式时，表示在一个应变，其中整个点/icm基因簇被删除（*T4SS）。从点B操作器表示的未熔融 sfGFP 显示了漫反射的圆旋模式，并作为控件。刻度条 = 3 μm。（B） 沿具有极性或漫反射模式的细胞的纵向轴对 DotB-sfGFP 荧光强度进行量化。极性和非极性细胞的样本大小为 n = 20 个细胞。=p = 0.02， =p = 0.0001。该意义是通过双尾学生的t测试和与极点的强度进行比较计算的。（C） 用于量化极性的蒙版原理图模型。（D） DotB-sfGFP，如图5A所示，带有用于量化极性的蒙版。（E） 当在野生类型背景中表示或删除整个点/icm基因簇时，极点 B-sfGFP 的丰度显示为频率曲线。每个菌株的样本大小为 n = 200 细胞。• p < 0.0001.其意义是通过双尾曼惠特尼测试计算的，与从dotB操作手表达的sfGFP进行比较。请点击此处查看此图形的较大版本。
图6：点/Icm荧光聚变动力学的定量。（A） 一种示意图模型，用于量化动态或静态 sfGFP 融合蛋白的荧光强度变化。T1，2是第一个和第二个时间点的时间，m1，2，3是蒙版 1、蒙版 2 和掩码 3。（B） 从dotB操作器表示的 DotB-sfGFP、DotO-sfGFP 和 sfGFP 的动态显示为频率曲线。每个菌株的样本大小为 n = 400 细胞。[p = 3.4 × 10-12， =p = 1.0 × 10-147.与sfGFP相比，双尾学生t测试计算了该意义。请点击此处查看此图形的较大版本。
图 7：子光度平均用于确定 DotB-sfGFP 的 sfGFP 密度。（A） 从代表L. 肺尘埃球菌细胞中获取的26，000倍放大倍率的地形切片，用于表示 DotB-sfGFP，显示多个点/Icm 机器嵌入在细胞包络中。（B） A中所示的同一L. 肺尘埃球细胞极的 42，000 倍放大倍性获得的地形切片。OM = 外膜，IM = 内膜。（C） 来自表示 DotB-sfGFP 的应变的重建显示与 DotB 和 sfGFP（黄色箭头）对应的密度。请点击此处查看此图形的较大版本。
图 8：Dot/Icm 圆细胞复合体的三维表面渲染。整个Dot-Icm T4SS的三维表面渲染，来自 +点B （A），野生类型 （B）， 和点B-gfp （C） L. 肺杆菌菌株.（D） 圆体复合物的结构显示 DotB（紫色）和 sfGFP（绿色）的定位。DotB的X射线结构（PDB：6GEB23）与DotB贴图对接。IM = 内膜。请点击此处查看此图形的较大版本。
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Discussion
阐明细菌分泌系统的功能是全面了解宿主-病原体相互作用的关键。分泌系统是复杂的机器，可以将效应剂蛋白质注入宿主细胞，在某些情况下，它促进建立支持细菌复制的亚细胞利基。上述方法为研究呼吸系统病原体军团菌肺杆菌的Dot/Icm分泌系统提供了重要的新工具，为有效器易位机制提供了线索，对其致病性至关重要。这种方法可以通过利用活细菌细胞成像和结构研究来解剖其分子水平的活动，应用于其他分泌系统。这可以通过研究荧光标记分泌系统组件的时空动力学，使用延时视频显微镜来实现。
我们构建了干净且无标记的突变，其中一个基因被标记或替换为经过修饰的等位基因，这是了解分子水平上致病性以及定义结构-功能关系的基本方法，可能导致药物疗法的产生24，25。L.肺杆菌菌株已被基因改造，以消除单个点和Icm蛋白，可用于通过低温-ET确定Dot/Icm系统的结构。协议中的一个重要步骤是比较N-terminus和C-terminus标记蛋白的功能。因此，编码核聚变的菌株应测试在真核宿主细胞中复制，通过显微镜进行可视化，以确定细菌细胞中标记的蛋白质定位是否依赖于完全组装的分泌机，并评估来自上下游基因的蛋白质的稳定性。
该协议利用活细胞显微镜实验，广泛用于研究复杂的生物过程，如信号转导、自组装、主动贩运和基因调节。了解细胞中单个粒子的动态、轨迹和相互作用是细胞生物学中一种基本方法。然而，由于分子快速移动或信噪比低，跟踪单个粒子可能并不总是可能的，评估荧光强度的变化可能是量化动力学模式差异的一种简单方法。此外，由于分析只需要两个时间点，这种方法仅保证样品对荧光灯的暴露最小，从而防止 sfGFP 荧光强度的主要漂白。由于琼脂花垫不包含任何营养源，因此需要注意的是，在从CYE琼脂板取下细胞后应立即进行活体成像。如果需要较长的成像时间，则应在垫子中添加支持L.肺炎嗜血杆菌生存和生长的补充。确定荧光标记蛋白质的极性也可以修改为高通量应用。如果需要这些，应使用相位目标和适当的冷凝器设置来获取双通道图像（即相位和荧光通道）。选择细菌完全分离的领域至关重要。使用相位通道屏蔽整个细胞并量化上述强度比率。
低温电子显微镜（低温-EM）和低温-ET提供纳米粒子的强健可视化。这些技术涉及在冷冻水合状态下对样品进行成像，从而能够基本上可视化纳米粒子，因为它们存在于其细胞环境中27。由于分辨率受样品厚度的限制，低温ET获得的结构的分辨率低于低温-EM获得的结构。然而，由于在每个图像图中，IV型机械体存在多个副本，因此可以通过增加亚向图平均的样本大小来获得更高的分辨率。低温-ET的一个主要优点是，在完整的细菌细胞中可视化复杂的组件可以更好地保存其结构，当从自然环境中提取时，其结构会发生剧烈的变化。
总之，研究分子的动态过程和定位是理解生物系统功能的第一步。此处描述的方法的强度和重点是活细菌中 Dot/Icm 成分的直接可视化，这为发现控制 IVB 型机器或其他多蛋白组件功能的动态过程提供了可能性。此外，将活成像耦合到低温-ET是一种策略，它允许对Dot/Icm机器中的关键部件进行与军团菌皮虫分泌系统更大结构相关的特征，并了解它们如何组装和直接改变仪器。用于研究活细胞中蛋白质行为的荧光蛋白标签的一个局限性是其体积较大，这可能会影响标记蛋白的功能和特性。随后，需要评估稳定性和功能。这种方法的另一个限制是，由于样品厚度产生的分辨率有限，目前无法获得原子结构。建模和拟合是分析密度的有效方法，从而允许子单元的本地化或构象变化的评估。今后对这种方法的调查和进一步改进，将使人们更好地了解不同的子组件如何构成一个功能IV型装置。
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Disclosures
作者没有什么可透露的。
Acknowledgments
华盛顿特区和C.R.R.得到NIH的支持（R37AI041699和R21AI130671）。D.P.、B.H.和J.L得到国家卫生研究院（R01AI087946和R01GM107629）的支持。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 10 nm colloidal gold particles | Aurion | 25486 | |
| 100x Plan Apo objective (1.4 NA) | Nikon | ||
| ACES | Sigma-Aldrich | A9758 | |
| Activated charcoal | Sigma-Aldrich | C5510 | |
| Agaroze GPG/LMP, low melt | American bioanalytical | AB00981 | |
| Bacto dehydrated agar | BD | 214010 | |
| CoolSNAP EZ 20 MHz digital monochrome camera | Photometrics | ||
| Gene Frame, 1.7x2.8 cm, 125 µL | Fisher Scientific | AB-0578 | |
| Holey Carbon grid R 2/1 Cu 200 mesh | Quantifoil | Q225-CR1 | |
| Iron(III) nitrate nonahydrate | Sigma-Aldrich | 216828 | |
| K2 Summit camera for cryo-EM | GATAN | ||
| L-Cysteine | Sigma-Aldrich | C7352 | |
| Microscope cover slides 22x22 mm | Fisher Scientific | 12-542B | |
| Microscope cover slides 24x50 mm | Fisher Scientific | 12-545K | |
| Microscope slides 25x75x1 mm | Globe Scientific | 1380 | |
| SlideBook 6.0 | Intelligent Imaging Innovations | ||
| Spectra X light engine | Lumencor | ||
| Taq 2X Master Mix | New England BioLabs | M0270 | |
| Titan Krios | Thermo Fisher Scientific | ||
| Yeast Extract | BD | 212750 |
References
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