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Article de méthode

Production rapide, abordable et simple de lysat sans cellules bactériennes

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DOI :

10.3791/62753

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29 octobre 2021

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* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Ce protocole décrit une méthode rapide et simple pour produire du lysat bactérien pour l’expression génique sans cellule, en utilisant une souche modifiée d’Escherichia coli et ne nécessitant que du matériel de laboratoire standard.

Résumé

L’expression génique sans cellules offre le pouvoir de la biologie sans les complications d’un organisme vivant. Bien qu’il existe de nombreux systèmes d’expression génique de ce type, la plupart sont assez coûteux à l’achat et / ou nécessitent un équipement spécial et une expertise finement affinée pour produire efficacement. Ce protocole décrit une méthode de production de lysat sans cellules bactériennes qui soutient des niveaux élevés d’expression génique, en utilisant uniquement de l’équipement de laboratoire standard et nécessitant un traitement minimal. La méthode utilise une souche d’Escherichia coli produisant une endolysine qui n’affecte pas la croissance, mais qui lyse efficacement une pastille cellulaire récoltée après un simple cycle de gel-dégel. Le seul traitement supplémentaire requis est une brève incubation suivie d’une centrifugation pour éliminer l’autolysat des débris cellulaires. Des circuits géniques dynamiques peuvent être obtenus grâce à l’expression hétérologue de la protéase ClpX dans les cellules avant le prélèvement. Une souche d’E. coli dépourvue du gène lacZ peut être utilisée pour des applications de biodétection haute sensibilité et sans cellules à l’aide d’une lecture colorimétrique ou fluorescente. L’ensemble du protocole nécessite aussi peu que 8-9 heures, avec seulement 1-2 heures de travail pratique de l’inoculation à l’achèvement. En réduisant le coût et le temps d’obtention du lysat sans cellule, cette méthode devrait augmenter l’abordabilité de l’expression génique sans cellule pour diverses applications.

Introduction

L’expression génique dans les lysats sans cellules présente plusieurs avantages par rapport à l’utilisation de cellules vivantes1,2,3,4. Les lysats peuvent être facilement modifiés biochimiquement et utilisés dans des conditions qui pourraient être préjudiciables ou impossibles à atteindre dans les cellules vivantes. Les circuits d’expression génique n’ont pas à rivaliser ou à rivaliser avec les processus biologiques de l’hôte, et tester de nouveaux circuits génétiques est aussi simple que d’ajouter de l’ADN. Pour ces raisons, l’expression g....

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Protocole

1. Préparez les supports et les tampons.

  1. Préparez 2xYTPG medium.
    1. Mélanger 62 g de poudre 2xYT, 5,99 g de phosphate de potassium monobasique, 13,93 g de phosphate de potassium dibasique et de l’eau désionisée à 2 L.
    2. Autoclave sur cycle liquide avec un temps d’exposition de 30 min14.
    3. À 400 mL de milieu 2xYTP du 1.1.2, ajouter 7,2 g de D-glucose (dextrose) et mélanger jusqu’à dissolution.
    4. Filtrer-stériliser à travers un filtre de 0,2 μm.
  2. Préparez la mémoire tampon S30A.
    1. Mélanger Tris-HCl (pH 7,7, concentration finale de 50 mM), glutamate de potassium (60 mM final) et....

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Résultats

Des résultats représentatifs peuvent être observés en utilisant l’autolysat pour exprimer la GFP à partir d’un plasmide exprimant de manière constitutive, ici pBEST-OR2-OR1-Pr-UTR1-deGFP-T500, et en enregistrant un cours temporel de fluorescence GFP dans un lecteur de plaques(Figure 1B). Une série de dilution d’ADN plasmidique a trouvé une forte expression même à 1 nM d’ADN. Par rapport à un lysat disponible dans le commerce, l’autolysat peut produire un rendement total plus élevé et atteind.......

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Discussion

Le protocole décrit ici produit un lysat bactérien hautement actif pour l’expression de gènes sans cellules. La clé est d’utiliser des cellules porteuses du plasmide pAD-LyseR, qui exprime l’endolysine du phage lambda de manière cytosolique. Ces cellules sont potentialisées pour se lyser lors de la perméabilisation de la membrane interne, permettant à l’endolysine d’accéder à la paroi cellulaire, ce que la méthode réalise grâce à un simple cycle de gel-dégel. Parce que les cellules se lysent efficacement, le produit est .......

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Déclarations de divulgation

J.H. est cofondateur de GenCirq Inc., qui se concentre sur les thérapies contre le cancer. Il siège au conseil d’administration et détient des participations dans GenCirq.

Remerciements

Les auteurs remercient Zachary Sun et Richard Murray (California Institute of Technology) d’avoir aimablement fourni le plasmide P_araBAD-gamS, et Kaeko Kamei (Kyoto Institute of Technology) d’avoir aimablement fourni une centrifugeuse de refroidissement à grande vitesse. Ce travail a été soutenu par des subventions des National Institutes of Health et du programme ARO MURI et a été en partie soutenu par la Leading Initiative for Excellent Young Researchers, MEXT, Japon.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
2xYT médiaEMD Millipore4.85008ou équivalent
3-PGASigma AldrichP8877ou
équivalent Unité de filtration centrifuge Amicon Ultra-15, coupure 3 kDaMillipore SigmaUFC900308en option, peut être utilisé pour concentrer le lysat, sélectionner la capacité du concentrateur appropriée pour le volume à concentrer
ampicillineSigma AldrichA0166-5Gou carbénicline, une variante plus stable
ATPSigma AldrichA8937ou équivalent
cAMPSigma AldrichA9501ou équivalent
CoASigma AldrichC4282ou équivalent
CTPUnited States Biosciences14121ou équivalent
D-glucose (dextrose)Fisher ScientificAAA1749603ou équivalent
dithiothréitol (DTT)Sigma AldrichD0632-1Gou équivalent
E. coli BL21-Gold (DE3) porteur de pAD-LyseRAddgene99244
E. coli BL21-Gold (DE3) et Delta ; lacZ porteur de pAD-LyseRAddgene99245
Acide foliniqueSigma AldrichF7878ou équivalent
GTPUnited States Biosciences16800ou équivalent
HEPESSigma AldrichH3375-25Gou
équivalent LB média FisherScientificDF0446075ou équivalent
glutamatede magnésiumSigma Aldrich49605-250Gou équivalent
NADSigma AldrichN6522ou
équivalent glutamate de potassiumSigma AldrichG1501-100Gou
hydroxyde de potassium équivalent (KOH)Sigma Aldrich221473-25Gpour ajuster le pH
phosphate de potassium dibasicFisher ScientificBP363-500ou équivalent
phosphate de potassium monobasiqueFisher ScientificBP362-500ou équivalent
SpermidineSigma Aldrich85558ou équivalent
Tris-HClFisher Scientific9310500GMou équivalent
mélange d’ARNtRoche10109541001ou équivalent
UTP United States Biosciences23160ou équivalent

Références

  1. Dudley, Q. M., Karim, A. S., Jewett, M. C. Cell-free metabolic engineering: biomanufacturing beyond the cell. Biotechnology Journal. 10 (1), 69-82 (2015).
  2. Smith, M. T., Wilding, K. M., Hunt, J. M., Bennett, A. M., Bundy, B. C. The emerging age of cell-free synthetic biology. FEBS Lette....

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