Summary

Forberedelse og karakterisering af grafenbaseret 3D biohybrid hydrogel bioink til perifer neuroengineering

Published: May 16, 2022
doi:

Summary

I dette manuskript demonstrerer vi fremstillingen af en biohybrid hydrogel bioink indeholdende grafen til brug i perifert vævsteknik. Ved hjælp af dette 3D-biohybridmateriale udføres stamcellernes neurale differentieringsprotokol. Dette kan være et vigtigt skridt i at bringe lignende biomaterialer til klinikken.

Abstract

Perifere neuropatier kan forekomme som følge af aksonal skade og lejlighedsvis på grund af demyeliniserende sygdomme. Perifere nerveskader er et globalt problem, der forekommer hos 1,5% -5% af akutte patienter og kan føre til betydelige tab af arbejdspladser. I dag er vævsteknologibaserede tilgange, der består af stilladser, passende cellelinjer og biosignaler, blevet mere anvendelige med udviklingen af tredimensionelle (3D) bioprintteknologier. Kombinationen af forskellige hydrogelbiomaterialer med stamceller, exosomer eller biosignalmolekyler undersøges ofte for at overvinde de eksisterende problemer i perifer nerveregenerering. Følgelig har produktionen af injicerbare systemer, såsom hydrogeler eller implanterbare rørstrukturer dannet ved forskellige bioprintmetoder, fået betydning inden for perifer neuroteknik. Under normale forhold er stamceller kroppens regenerative celler, og deres antal og funktioner falder ikke med tiden for at beskytte deres befolkninger; Disse er ikke specialiserede celler, men kan differentiere ved passende stimulering som reaktion på skade. Stamcellesystemet er under påvirkning af dets mikromiljø, kaldet stamcelleniche. Ved perifere nerveskader, især i neurotmesis, kan dette mikromiljø ikke reddes fuldt ud, selv efter kirurgisk binding af afskårne nerveender sammen. Den sammensatte biomaterialer og kombinerede cellulære terapier tilgang øger funktionaliteten og anvendeligheden af materialer med hensyn til forskellige egenskaber såsom bionedbrydelighed, biokompatibilitet og bearbejdelighed. Derfor har denne undersøgelse til formål at demonstrere forberedelsen og anvendelsen af grafenbaseret biohybrid hydrogelmønster og at undersøge differentieringseffektiviteten af stamceller i nerveceller, som kan være en effektiv løsning i nerveregenerering.

Introduction

Nervesystemet, som er den mekanisme, der bygger bro over organismens og miljøets indre struktur, er opdelt i to dele: det centrale og perifere nervesystem. Perifere nerveskader er et globalt problem, der udgør 1,5% -5% af de patienter, der præsenterer for akutafdelingen og udvikler sig på grund af forskellige traumer, hvilket fører til betydeligt tab af job 1,2,3.

I dag er cellulære tilgange til perifer neuroteknik af stor interesse. Stamceller kommer først blandt de celler, der anvendes i disse tilgange. Under normale forhold er stamceller kroppens regenerative celler, og deres antal og funktioner falder ikke med tiden for at beskytte deres befolkninger; Disse celler er specialiserede, men kan differentiere sig ved passende stimulering som reaktion på skade 4,5. Ifølge stamcellehypotesen er stamcellesystemet under påvirkning af dets mikromiljø, kaldet stamcelleniche. Konservering og differentiering af stamceller er umulig uden tilstedeværelsen af deres mikromiljø6, som kan rekonstitueres via vævsteknik ved hjælp af celler og stilladser7. Vævsteknik er et tværfagligt felt, der omfatter både tekniske og biologiske principper. Vævsteknik giver værktøjer til oprettelse af kunstigt væv, der kan erstatte levende væv og kan bruges til regenerering af disse væv ved at fjerne det beskadigede væv og tilvejebringe funktionelle væv8. Vævsstilladser, en af de tre hjørnesten i vævsteknik, fremstilles ved hjælp af forskellige metoder fra naturlige og syntetiske materialer9. Tredimensionel (3D) udskrivning er en ny additiv fremstillingsteknologi, der i vid udstrækning bruges til at erstatte eller genoprette defekte væv via sin enkle, men alsidige produktion af komplekse former ved hjælp af forskellige metoder. Bioprinting er en additiv fremstillingsmetode, der muliggør sameksistens mellem celler og biomaterialer, kaldet bioinks10. I betragtning af interaktionen mellem nerveceller med hinanden er undersøgelser skiftet til ledende biomaterialekandidater såsom grafen. Grafennanoplader, der har egenskaber som fleksibel elektronik, superkondensatorer, batterier, optik, elektrokemiske sensorer og energilagring, er et foretrukket biomateriale inden for vævsteknik11. Grafen er blevet anvendt i undersøgelser, hvor spredning og regenerering af beskadigede væv og organer blev udført12,13.

Vævsteknik består af tre grundlæggende byggesten: stillads, celler og biosignalmolekyler. Der er mangler i undersøgelserne af perifere nerveskader med hensyn til at tilvejebringe disse tre strukturer fuldstændigt. Der er opstået forskellige problemer i de biomaterialer, der produceres og anvendes i undersøgelserne, såsom dem, der kun indeholder stamceller eller biosignalmolekyler, manglen på et bioaktivt molekyle, der muliggør stamcelledifferentiering, manglen på biokompatibilitet af det anvendte biomateriale og den lave effekt på spredning af celler i vævsnichen, og dermed nerveledning ikke fuldt ud realiseret 2,13,14,15,16. Dette kræver optimering af nerveregenerering, reduktion af muskelatrofi 17,18 og skabelse af nødvendig homing19 med vækstfaktorer mod sådanne problemer. På dette tidspunkt er karakteriseringen og analysen af neuroaktiviteten af en kirurgisk biomateriale prototype, der skal overføres til klinikken, meget vigtig.

Derfor undersøger denne metodeundersøgelse bioinkhydrogelmønsteret med grafennanoplader dannet af en 3D-bioprinter og dens effektivitet på den neurogene differentiering af stamcellerne, den indeholder. Også virkningerne af grafen på neurosfæredannelse og differentiering undersøges.

Protocol

1. Dyrkning af Whartons gelé mesenkymale stamceller Tag Whartons gelé mesenkymale stamceller (WJ-MSC’er, fra ATCC) ud af en -80 ° C fryser. Dyrkning af WJ-MSC’er i DMEM-F12-medium indeholdende 10% føtalt kalveserum (FBS), 1% Pen-Strep og 1% L-glutamin i et sterilt laminært flow ved stuetemperatur, som beskrevet i Yurie et al.20. Kryopræserver nogle af cellerne ved 1 x 106 celler/ml med frysemedium indeholdende 35 % FBS, 55 % DMEMF-12 og 10 % di…

Representative Results

Grafentoksicitet og 2D-billeddannelseStatistisk analyse af de opnåede MTT-resultater blev udført med en envejs ANOVA med Tukeys test i statistisk analysesoftware, og den opnåede graf er vist i figur 2. Grafenprocenten sammenlignet med kontrol viste kun et signifikant fald for grafenkoncentrationen på 0,001% (**p 0,05). Derfor blev den optimale grafenkoncentration bestemt til at v…

Discussion

Fordelene ved behandlinger anvendt med konstruerede 3D-stilladser i forhold til konventionelle 2D-metoder bliver mere og mere mærkbare hver dag. Stamceller, der anvendes alene i disse terapier eller sammen med stilladser fremstillet af forskellige biomaterialer med lav biokompatibilitet og bionedbrydelighed, er normalt utilstrækkelige til perifer nerveregenerering. Whartons gelé mesenkymale stamceller (WJ-MSC’er) synes at være en passende kandidatcellelinje, især i betragtning af optimeringen af protokollerne til er…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Den grafen, der anvendes i denne undersøgelse, blev udviklet på Kirklareli University, Institut for Maskinteknik. Det blev doneret af Dr. Karabeyoğlu. Grafentoksicitetstesten blev finansieret af projektet med titlen “Udskrivning og differentiering af mesenkymale stamceller på 3D-bioprintere med grafendoterede bioblæk” (ansøgningsnr.: 1139B411802273) afsluttet inden for rammerne af TÜBİTAK 2209-B-industriorienteret bachelorafhandlingsstøtteprogram. Den anden del af undersøgelsen blev støttet af forskningsfonden fra Yildiz Technical University Scientific Research Projects (TSA-2021-4713). Mesenkymale stamceller med GFP anvendt i time-lapse billeddannelsesfasen blev doneret af Virostem Biotechnology. Forfatterne takker Darıcı LAB og YTU The Cell Culture and Tissue Engineering LAB-teamet for produktive diskussioner.

Materials


Centrifugal
Hitachi Used in cell culture and biomaterial step
0.1N CaCl2 HD Bioink Used for crosslinker
0.22 µm membrane filter Aιsιmo Used for sterilization
0.45 µm syringe filter Aιsιmo Used for sterilization
1.5mL conic tube Eppendorfa Used for bioink drop
15mL Falcon tube Nest Used in cell culture step
25 cm2 cell culture flasks (Falcon, TPP tissue culture flasks Nest Used for cell culture
3D Bioprinting Axolotl Biosystems Bio A2 (Turkey) Bioprinting Step
50 mL Falcon tube Nest Used in cell culture step
6/24/48/96 well plates (Falcon, TPP microplates) Merck Millipore Used in cell culture step
75 cm2 cell culture flasks (Falcon, TPP tissue culture flasks Nest Used for cell culture
Anti mouse IgG-FTIC-rabbit Santa Cruz Biotechnology J1514 Seconder antibody, used for dye
Anti mouse IgG-SC2781-goat Santa Cruz Biotechnology C3109 Seconder antibody, used for dye
Au coating device EM ACE600 Leica for gold plating of biomaterial section before SEM imaging
Autoclave NUVE-OT 90L Used for the sterilization process.
Autoclave NUVE-OT 90L Used for the sterilization process.
Cell Cultre Cabine Hera Safe KS Used for the cell culture process
Dulbecco's Modified Eagle's Medium/Nutrient Mixture-F12 Sigma RNBJ7249 Used as cell culture medium
FEI QUANTA 450 FEG ESEM SEM Quanta FEG 450 for SEM
Fetal Bovine Serum-FBS Capricorn FBS-16A It was used by adding to the cell culture medium.
Freezer -80°C Panasonic MDF-U5386S-PE We were used to store cells and the resulting exosomes
Gelatine-Alginate bioink powder HD Bioink Used for produced bioink step
GFP labelled-WJ-MSCs Virostem Used for imaging to cell-bioink interaction
Graphene nanoplatelets (Graphene-IGP2) Grafen Chemical Industries Co. Used for production 3D-G bioink
Immunofluorescence antibodies (N-CAD; β-III Tubulin) Cell Signalling and Santa Cruz Used for dye
JASCO 6600 Tetra for FTIR
MTT Assay Sigma Viability testing
Penicilin/Streptomycin Solution Capricorn PB-S It was added to the medium to prevent contamination in cell culture.
Thoma slide Isolab Used for counting the cell
Time-Lapse Imaging System Zeiss Axio.Observer.Z1 Imaging
Tripsin-EDTA Multicell The flask was used to remove the cells covering the surface.
Vorteks Biobase For produced bioink step
WJ-MSCs ATCC Used for the cell culture process

References

  1. Kamasak, B., et al. Peripheral Nerve Injuries and Physiotherapy. Clinical Physiotherapy. 19, (2019).
  2. Yegiyants, S., Dayicioglu, D., Kardashian, G., Panthaki, Z. J. Traumatic peripheral nerve injury: A wartime review. Journal of Craniofacial Surgery. 21 (4), 998-1001 (2010).
  3. Mushtaq, S., et al. Frequency of peripheral nerve injury in trauma in emergency settings. Cureus. 13 (3), 14195 (2021).
  4. Allahverdiyev, A. . Basic Principles of Somatic and Stem Cell Culture Systems, 1st Edition. , (2018).
  5. Allahverdiyev, A. M., et al. Adipose tissue-derived mesenchymal stem cells as a new host cell in latent leishmaniasis. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. 85 (3), 535-539 (2011).
  6. Schofield, R. The relationship between the spleen colony-forming cell and the hemopoietic stem cell. Blood Cells. 4 (1-2), 7-25 (1978).
  7. Goodman, S. R. Stem Cells and Regenerative Medicine (Chapter 13). Goodman’s Medical Cell Biology, Fourth Edition. , 361-380 (2021).
  8. Kaya, T. I. Tissue engineering. International Journal of Medical Sciences. 1 (48), 165-169 (2018).
  9. Sensharma, P., Madhumathi, R. G., Jayant, R. D., Jaiswal, A. K. Biomaterials and cells for neural tissue engineering: Current choices. Materials Science and Engineering: C. 7, 1302-1315 (2017).
  10. Hölzl, K., et al. Bioink properties before, during, and after 3D bioprinting. Biofabrication. 8 (3), 032002 (2016).
  11. Zheng, Y., et al. 2D nanomaterials for tissue engineering and regenerative nanomedicines: Recent advances and future challenges. Advanced Healthcare Materials. 10 (7), 2001743 (2021).
  12. Shin, S. R. Graphene-based materials for tissue engineering. Advanced Drug Delivery Reviews. 105, 255-274 (2016).
  13. Chen, M., Qin, X., Zeng, G. Biodegradation of carbon nanotubes, graphene, and their derivatives. Trends in Biotechnology. 35 (9), 836-846 (2017).
  14. Chen, S., et al. PAM/GO/Gel/SA composite hydrogel conduit with bioactivity for repairing peripheral nerve injury. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 107, 1273-1283 (2019).
  15. Chiriac, S., Facca, S., Diaconu, M., Gouzou, S., Liverneaux, P. Experience of using the bioresorbable copolyester poly(DL-lactide-ε-caprolactone) nerve conduit guide Neurolac™ for nerve repair in peripheral nerve defects: Report on a series of 28 lesions. Journal of Hand Surgery (European Volume). 37 (4), 342-349 (2011).
  16. Karaaltin, A. B., et al. Human olfactory stem cells for injured facial nerve reconstruction in a rat model). Head & Neck. 38, 2011-2020 (2016).
  17. Bingham, J. R., et al. Stem cell therapy to promote limb function recovery in peripheral nerve damage in a rat model. Annals of Medicine and Surgery. 41, 20-28 (2019).
  18. Zhuang, H., et al. Gelatin-methacrylamide gel loaded with microspheres to deliver GDNF in bilayer collagen conduit promoting sciatic nerve growth. International Journal of Nanomedicine. 11, 1383-1394 (2016).
  19. Scheib, J., Hoke, A. Advances in peripheral nerve regeneration. Nature Reviews: Neurology. 9 (12), 668-676 (2013).
  20. Yurie, H., et al. The efficacy of a scaffold-free bio 3D conduit developed from human fibroblasts on peripheral nerve regeneration in a rat sciatic nerve model. PLOS ONE. 12 (2), 0171448 (2017).
  21. Guo, Y., et al. Assessment of the green florescence protein labeling method for tracking implanted mesenchymal stem cells. Cytotechnology. 64 (4), 391-401 (2012).
  22. Kose, C., Kacar, R., Zorba, A. P., Bagirova, M., Allahverdiyev, A. The effect of CO2 laser beam welded AISI 316L austenitic stainless steel on the viability of fibroblast cells, in vitro. Materials Science and Engineering: C. 60, 211-218 (2016).
  23. Liu, Y., et al. Bio-adenine-bridged molecular design approach toward non-covalent functionalized graphene by liquid-phase exfoliation. Journal of Materials Science. 55, 140-150 (2020).
  24. Rehman, S. Reduced graphene oxide incorporated GelMA hydrogel promotes angiogenesis for wound healing applications. International Journal of Nanomedicine. 14, 9603-9617 (2019).
  25. Bei, H. P., et al. Graphene-based nanocomposites for neural tissue engineering. Molecules. 24 (4), 658 (2019).
  26. Othman, S. A., et al. Alginate-gelatin bioink for bioprinting of HeLa spheroids in alginate-gelatin hexagon-shaped scaffolds. Polymer Bulletin. 78, 6115-6135 (2021).
  27. Peng, X. L., Li, Y., Zhang, G., Zhang, F., Fan, X. Functionalization of graphene with nitrile groups by cycloaddition of tetracyanoethylene oxide. Journal of Nanomaterials. 2013, 841789 (2013).
  28. Zorba Yildiz, A. P., et al. 3D therapeutic approaches for peripheral nerve damage. 9th International Molecular Biology and Biotechnology Congress Abstract Book. , (2020).
  29. Liau, L. L., Ruszymah, B. H. I., Ng, M. H., Law, J. X. Characteristics and clinical applications of Wharton’s jelly-derived mesenchymal stromal cells. Current Research in Translational Medicine. 68 (1), 5-16 (2020).
  30. Yoo, J., et al. Augmented peripheral nerve regeneration through elastic nerve guidance conduits prepared using a porous PLCL membrane with a 3D printed collagen hydrogel. Biomaterials Science. 22, 1-12 (2020).
  31. Jansen, K., Meek, M. F., vander Werff, J. F. A., van Wachem, P. B., van Luyn, M. J. A. Long-term regeneration of the rat sciatic nerve through a biodegradable poly (DL-lactide-Ɛ-caprolactone) nerve guide: Tissue reactions with a focus on collagen III/IV reformation. Journal of Biomedical Materials Research. 69 (2), 334-341 (2016).
  32. Pathre, P., et al. PTP1B regulates neurite extension mediated by cell-cell and cell-matrix adhesion molecules. Journal of Neuroscience Research. 15, 143-150 (2001).
  33. Qing, L., Chen, H., Tang, J., Jia, X. Exosomes and their microRNA cargo: New players in peripheral nerve regeneration. Neurorehabilitation and Neural Repair. 32 (9), 765-776 (2018).
check_url/fr/63622?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Zorba Yildiz, A. P., Darici, H., Yavuz, B., Abamor, E. S., Ozdemir, C., Yasin, M. E., Bagirova, M., Allahverdiyev, A., Karaoz, E. Preparation and Characterization of Graphene-Based 3D Biohybrid Hydrogel Bioink for Peripheral Neuroengineering. J. Vis. Exp. (183), e63622, doi:10.3791/63622 (2022).

View Video