Summary

Fremstilling og karakterisering av grafenbasert 3D biohybrid hydrogelbioblekk for perifer nevroteknologi

Published: May 16, 2022
doi:

Summary

I dette manuskriptet demonstrerer vi fremstillingen av et biohybrid hydrogelbioblekk som inneholder grafen til bruk i perifer vevsteknikk. Ved hjelp av dette 3D biohybridmaterialet utføres den nevrale differensieringsprotokollen for stamceller. Dette kan være et viktig skritt i å bringe lignende biomaterialer til klinikken.

Abstract

Perifere nevropatier kan oppstå som følge av aksonal skade, og noen ganger på grunn av demyeliniserende sykdommer. Perifer nerveskade er et globalt problem som oppstår hos 1,5% -5% av akuttpasienter og kan føre til betydelig tap av jobb. I dag har vevsteknikkbaserte tilnærminger, bestående av stillas, passende cellelinjer og biosignaler, blitt mer anvendelige med utviklingen av tredimensjonale (3D) bioprintingsteknologier. Kombinasjonen av forskjellige hydrogelbiomaterialer med stamceller, eksosomer eller biosignalmolekyler studeres ofte for å overvinne de eksisterende problemene i perifer nerveregenerering. Følgelig har produksjonen av injiserbare systemer, for eksempel hydrogeler, eller implanterbare ledningsstrukturer dannet ved ulike bioprintingsmetoder, fått betydning i perifer nevroteknikk. Under normale forhold er stamceller kroppens regenerative celler, og deres antall og funksjoner reduseres ikke med tiden for å beskytte deres populasjoner; Disse er ikke spesialiserte celler, men kan differensiere ved passende stimulering som respons på skade. Stamcellesystemet er under påvirkning av sitt mikromiljø, kalt stamcellenisjen. I perifere nerveskader, spesielt i neurotmesis, kan dette mikromiljøet ikke reddes fullt ut selv etter kirurgisk binding av avskårne nerveender sammen. Den sammensatte biomaterial- og kombinerte cellulære terapitilnærmingen øker funksjonaliteten og anvendeligheten til materialer når det gjelder forskjellige egenskaper som biologisk nedbrytbarhet, biokompatibilitet og bearbeidbarhet. Følgelig har denne studien som mål å demonstrere fremstilling og bruk av grafenbasert biohybrid hydrogelmønster og å undersøke differensieringseffektiviteten av stamceller i nerveceller, noe som kan være en effektiv løsning i nerveregenerering.

Introduction

Nervesystemet, som er mekanismen som broer den indre strukturen til organismen og miljøet, er delt inn i to deler: det sentrale og perifere nervesystemet. Perifer nerveskade er et globalt problem som utgjør 1,5% -5% av pasientene som kommer til beredskapsavdelingen og utvikler seg på grunn av ulike traumer, noe som fører til betydelig jobbtap 1,2,3.

I dag er cellulære tilnærminger til perifer nevroteknikk av stor interesse. Stamceller kommer først blant cellene som brukes i disse tilnærmingene. Under normale forhold er stamceller kroppens regenerative celler, og deres antall og funksjoner reduseres ikke med tiden for å beskytte deres populasjoner; Disse cellene er spesialiserte, men kan differensiere ved passende stimulering som respons på skade 4,5. Ifølge stamcellehypotesen er stamcellesystemet under påvirkning av sitt mikromiljø, kalt stamcellenisjen. Bevaring og differensiering av stamceller er umulig uten tilstedeværelse av deres mikromiljø6, som kan rekonstitueres via vevsteknikk ved hjelp av celler og stillaser7. Tissue engineering er et tverrfaglig felt som inkluderer både engineering og biologi prinsipper. Tissue engineering gir verktøy for å lage kunstige vev som kan erstatte levende vev og kan brukes i regenerering av disse vevene ved å fjerne det skadede vevet og gi funksjonelle vev8. Vevsstillas, en av de tre hjørnesteinene i vevsteknikk, produseres ved hjelp av forskjellige metoder fra naturlige og syntetiske materialer9. Tredimensjonal (3D) utskrift er en fremvoksende additiv produksjonsteknologi som er mye brukt til å erstatte eller gjenopprette defekte vev via sin enkle, men allsidige produksjon av komplekse former ved hjelp av ulike metoder. Bioprinting er en additiv produksjonsmetode som muliggjør sameksistens av celler og biomaterialer, kalt bioblekk10. Tatt i betraktning samspillet mellom nerveceller med hverandre, har studier skiftet til ledende biomaterialkandidater som grafen. Grafen nanoplater, som har egenskaper som fleksibel elektronikk, superkondensatorer, batterier, optikk, elektrokjemiske sensorer og energilagring, er et foretrukket biomateriale innen vevsteknikk11. Grafen har blitt brukt i studier hvor spredning og regenerering av skadede vev og organer ble utført12,13.

Vevsteknikk består av tre grunnleggende byggesteiner: stillas, celler og biosignalmolekyler. Det er mangler i studiene på perifer nerveskade når det gjelder å gi disse tre strukturene helt. Ulike problemer har oppstått i biomaterialene som er produsert og brukt i studiene, for eksempel at de bare inneholder stamceller eller biosignalmolekyler, mangelen på et bioaktivt molekyl som vil muliggjøre stamcelledifferensiering, mangelen på biokompatibilitet av det biomaterialet som brukes, og den lave effekten på spredning av celler i vevnisjen, og dermed nerveledning ikke fullt ut realisert 2,13,14,15,16. Dette krever optimalisering av nerveregenerering, reduksjon av muskelatrofi 17,18, og skape nødvendig homing19 med vekstfaktorer mot slike problemer. På dette tidspunktet er karakterisering og analyse av nevroaktiviteten til en kirurgisk biomaterialprototype, som skal overføres til klinikken, svært viktig.

Følgelig undersøker denne metodestudien bioblekkhydrogelmønsteret med grafennanoplater dannet av en 3D-bioprinter og dens effektivitet på den neurogene differensieringen av stamcellene den inneholder. Også effekten av grafen på nevrosfæredannelse og differensiering undersøkes.

Protocol

1. Dyrking av Whartons gelé mesenkymale stamceller Ta Whartons gelé mesenkymale stamceller (WJ-MSCs, fra ATCC) ut av en -80 ° C fryser. Kultur WJ-MSC i DMEM-F12 medium inneholdende 10% føtal kalv serum (FBS), 1% Pen-Strep, og 1% L-glutamin i en steril laminær strømning ved romtemperatur, som beskrevet i Yurie et al.20. Kryokonreservere noen av cellene ved 1 x 106 celler/ml med frysemedium inneholdende 35% FBS, 55% DMEMF-12 og 10% dimetylsulfoks…

Representative Results

Grafen toksisitet og 2D-bildebehandlingStatistisk analyse av de oppnådde MTT-resultatene ble utført med en enveis ANOVA med Tukeys test i statistisk analyseprogramvare, og grafen som er oppnådd er vist i figur 2. Grafenprosenten sammenlignet med kontrollen viste en signifikant reduksjon bare for 0,001% grafenkonsentrasjonen (**p 0,05). Derfor ble den optimale grafenkonsen…

Discussion

Fordelene med behandlinger påført med konstruerte 3D-stillaser i forhold til konvensjonelle 2D-metoder blir mer og mer merkbare hver dag. Stamceller som brukes alene i disse terapiene eller sammen med stillaser produsert fra forskjellige biomaterialer med lav biokompatibilitet og biologisk nedbrytbarhet, er vanligvis utilstrekkelige i perifer nerveregenerering. Whartons gelé mesenkymale stamceller (WJ-MSCs) ser ut til å være en egnet kandidatcellelinje, spesielt med tanke på optimalisering av protokollene for oppkj…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Grafénet som ble brukt i denne studien ble utviklet ved Kirklareli University, Institutt for maskinteknikk. Det ble donert av Dr. Karabeyoğlu. Grafentoksisitetstesten ble finansiert av prosjektet med tittelen “Utskrift og differensiering av mesenkymale stamceller på 3D-bioprintere med grafendopede bioblekk” (applikasjonsnr: 1139B411802273) fullført innenfor rammen av TÜBİTAK 2209-B-industriorientert bacheloroppgavestøtteprogram. Den andre delen av studien ble støttet av forskningsfondet fra Yildiz Technical University Scientific Research Projects (TSA-2021-4713). Mesenkymale stamceller med GFP brukt i time-lapse-bildestadiet ble donert av Virostem Biotechnology. Forfatterne takker Darıcı LAB og YTU The Cell Culture and Tissue Engineering LAB-teamet for produktive diskusjoner.

Materials


Centrifugal
Hitachi Used in cell culture and biomaterial step
0.1N CaCl2 HD Bioink Used for crosslinker
0.22 µm membrane filter Aιsιmo Used for sterilization
0.45 µm syringe filter Aιsιmo Used for sterilization
1.5mL conic tube Eppendorfa Used for bioink drop
15mL Falcon tube Nest Used in cell culture step
25 cm2 cell culture flasks (Falcon, TPP tissue culture flasks Nest Used for cell culture
3D Bioprinting Axolotl Biosystems Bio A2 (Turkey) Bioprinting Step
50 mL Falcon tube Nest Used in cell culture step
6/24/48/96 well plates (Falcon, TPP microplates) Merck Millipore Used in cell culture step
75 cm2 cell culture flasks (Falcon, TPP tissue culture flasks Nest Used for cell culture
Anti mouse IgG-FTIC-rabbit Santa Cruz Biotechnology J1514 Seconder antibody, used for dye
Anti mouse IgG-SC2781-goat Santa Cruz Biotechnology C3109 Seconder antibody, used for dye
Au coating device EM ACE600 Leica for gold plating of biomaterial section before SEM imaging
Autoclave NUVE-OT 90L Used for the sterilization process.
Autoclave NUVE-OT 90L Used for the sterilization process.
Cell Cultre Cabine Hera Safe KS Used for the cell culture process
Dulbecco's Modified Eagle's Medium/Nutrient Mixture-F12 Sigma RNBJ7249 Used as cell culture medium
FEI QUANTA 450 FEG ESEM SEM Quanta FEG 450 for SEM
Fetal Bovine Serum-FBS Capricorn FBS-16A It was used by adding to the cell culture medium.
Freezer -80°C Panasonic MDF-U5386S-PE We were used to store cells and the resulting exosomes
Gelatine-Alginate bioink powder HD Bioink Used for produced bioink step
GFP labelled-WJ-MSCs Virostem Used for imaging to cell-bioink interaction
Graphene nanoplatelets (Graphene-IGP2) Grafen Chemical Industries Co. Used for production 3D-G bioink
Immunofluorescence antibodies (N-CAD; β-III Tubulin) Cell Signalling and Santa Cruz Used for dye
JASCO 6600 Tetra for FTIR
MTT Assay Sigma Viability testing
Penicilin/Streptomycin Solution Capricorn PB-S It was added to the medium to prevent contamination in cell culture.
Thoma slide Isolab Used for counting the cell
Time-Lapse Imaging System Zeiss Axio.Observer.Z1 Imaging
Tripsin-EDTA Multicell The flask was used to remove the cells covering the surface.
Vorteks Biobase For produced bioink step
WJ-MSCs ATCC Used for the cell culture process

References

  1. Kamasak, B., et al. Peripheral Nerve Injuries and Physiotherapy. Clinical Physiotherapy. 19, (2019).
  2. Yegiyants, S., Dayicioglu, D., Kardashian, G., Panthaki, Z. J. Traumatic peripheral nerve injury: A wartime review. Journal of Craniofacial Surgery. 21 (4), 998-1001 (2010).
  3. Mushtaq, S., et al. Frequency of peripheral nerve injury in trauma in emergency settings. Cureus. 13 (3), 14195 (2021).
  4. Allahverdiyev, A. . Basic Principles of Somatic and Stem Cell Culture Systems, 1st Edition. , (2018).
  5. Allahverdiyev, A. M., et al. Adipose tissue-derived mesenchymal stem cells as a new host cell in latent leishmaniasis. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. 85 (3), 535-539 (2011).
  6. Schofield, R. The relationship between the spleen colony-forming cell and the hemopoietic stem cell. Blood Cells. 4 (1-2), 7-25 (1978).
  7. Goodman, S. R. Stem Cells and Regenerative Medicine (Chapter 13). Goodman’s Medical Cell Biology, Fourth Edition. , 361-380 (2021).
  8. Kaya, T. I. Tissue engineering. International Journal of Medical Sciences. 1 (48), 165-169 (2018).
  9. Sensharma, P., Madhumathi, R. G., Jayant, R. D., Jaiswal, A. K. Biomaterials and cells for neural tissue engineering: Current choices. Materials Science and Engineering: C. 7, 1302-1315 (2017).
  10. Hölzl, K., et al. Bioink properties before, during, and after 3D bioprinting. Biofabrication. 8 (3), 032002 (2016).
  11. Zheng, Y., et al. 2D nanomaterials for tissue engineering and regenerative nanomedicines: Recent advances and future challenges. Advanced Healthcare Materials. 10 (7), 2001743 (2021).
  12. Shin, S. R. Graphene-based materials for tissue engineering. Advanced Drug Delivery Reviews. 105, 255-274 (2016).
  13. Chen, M., Qin, X., Zeng, G. Biodegradation of carbon nanotubes, graphene, and their derivatives. Trends in Biotechnology. 35 (9), 836-846 (2017).
  14. Chen, S., et al. PAM/GO/Gel/SA composite hydrogel conduit with bioactivity for repairing peripheral nerve injury. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 107, 1273-1283 (2019).
  15. Chiriac, S., Facca, S., Diaconu, M., Gouzou, S., Liverneaux, P. Experience of using the bioresorbable copolyester poly(DL-lactide-ε-caprolactone) nerve conduit guide Neurolac™ for nerve repair in peripheral nerve defects: Report on a series of 28 lesions. Journal of Hand Surgery (European Volume). 37 (4), 342-349 (2011).
  16. Karaaltin, A. B., et al. Human olfactory stem cells for injured facial nerve reconstruction in a rat model). Head & Neck. 38, 2011-2020 (2016).
  17. Bingham, J. R., et al. Stem cell therapy to promote limb function recovery in peripheral nerve damage in a rat model. Annals of Medicine and Surgery. 41, 20-28 (2019).
  18. Zhuang, H., et al. Gelatin-methacrylamide gel loaded with microspheres to deliver GDNF in bilayer collagen conduit promoting sciatic nerve growth. International Journal of Nanomedicine. 11, 1383-1394 (2016).
  19. Scheib, J., Hoke, A. Advances in peripheral nerve regeneration. Nature Reviews: Neurology. 9 (12), 668-676 (2013).
  20. Yurie, H., et al. The efficacy of a scaffold-free bio 3D conduit developed from human fibroblasts on peripheral nerve regeneration in a rat sciatic nerve model. PLOS ONE. 12 (2), 0171448 (2017).
  21. Guo, Y., et al. Assessment of the green florescence protein labeling method for tracking implanted mesenchymal stem cells. Cytotechnology. 64 (4), 391-401 (2012).
  22. Kose, C., Kacar, R., Zorba, A. P., Bagirova, M., Allahverdiyev, A. The effect of CO2 laser beam welded AISI 316L austenitic stainless steel on the viability of fibroblast cells, in vitro. Materials Science and Engineering: C. 60, 211-218 (2016).
  23. Liu, Y., et al. Bio-adenine-bridged molecular design approach toward non-covalent functionalized graphene by liquid-phase exfoliation. Journal of Materials Science. 55, 140-150 (2020).
  24. Rehman, S. Reduced graphene oxide incorporated GelMA hydrogel promotes angiogenesis for wound healing applications. International Journal of Nanomedicine. 14, 9603-9617 (2019).
  25. Bei, H. P., et al. Graphene-based nanocomposites for neural tissue engineering. Molecules. 24 (4), 658 (2019).
  26. Othman, S. A., et al. Alginate-gelatin bioink for bioprinting of HeLa spheroids in alginate-gelatin hexagon-shaped scaffolds. Polymer Bulletin. 78, 6115-6135 (2021).
  27. Peng, X. L., Li, Y., Zhang, G., Zhang, F., Fan, X. Functionalization of graphene with nitrile groups by cycloaddition of tetracyanoethylene oxide. Journal of Nanomaterials. 2013, 841789 (2013).
  28. Zorba Yildiz, A. P., et al. 3D therapeutic approaches for peripheral nerve damage. 9th International Molecular Biology and Biotechnology Congress Abstract Book. , (2020).
  29. Liau, L. L., Ruszymah, B. H. I., Ng, M. H., Law, J. X. Characteristics and clinical applications of Wharton’s jelly-derived mesenchymal stromal cells. Current Research in Translational Medicine. 68 (1), 5-16 (2020).
  30. Yoo, J., et al. Augmented peripheral nerve regeneration through elastic nerve guidance conduits prepared using a porous PLCL membrane with a 3D printed collagen hydrogel. Biomaterials Science. 22, 1-12 (2020).
  31. Jansen, K., Meek, M. F., vander Werff, J. F. A., van Wachem, P. B., van Luyn, M. J. A. Long-term regeneration of the rat sciatic nerve through a biodegradable poly (DL-lactide-Ɛ-caprolactone) nerve guide: Tissue reactions with a focus on collagen III/IV reformation. Journal of Biomedical Materials Research. 69 (2), 334-341 (2016).
  32. Pathre, P., et al. PTP1B regulates neurite extension mediated by cell-cell and cell-matrix adhesion molecules. Journal of Neuroscience Research. 15, 143-150 (2001).
  33. Qing, L., Chen, H., Tang, J., Jia, X. Exosomes and their microRNA cargo: New players in peripheral nerve regeneration. Neurorehabilitation and Neural Repair. 32 (9), 765-776 (2018).
check_url/fr/63622?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Zorba Yildiz, A. P., Darici, H., Yavuz, B., Abamor, E. S., Ozdemir, C., Yasin, M. E., Bagirova, M., Allahverdiyev, A., Karaoz, E. Preparation and Characterization of Graphene-Based 3D Biohybrid Hydrogel Bioink for Peripheral Neuroengineering. J. Vis. Exp. (183), e63622, doi:10.3791/63622 (2022).

View Video