Summary

إعداد Lysate مجمع صفائح الدم البشرية (pHPL) باعتبارها الملحق لمصل فعال خالية من الإنسان الحيوان الثقافات الخلايا الجذعية

Published: October 30, 2009
doi:

Summary

lysate الصفيحات الإنسان هو مصدر غني من عوامل النمو وقوية في ملحق ثقافة الخلية. يعرض هذا البروتوكول عملية إعداد مجموعة كبيرة من الصفائح الدموية lysate الإنسان بدءا من البلازما الغنية الصفائح الدموية ، وأداء العديد من تجميد أذاب الدورات واستنزاف شظايا الصفائح الدموية.

Abstract

وقد تبين أن الصفيحات عوامل النمو المشتقة لتحفيز تكاثر الخلايا بكفاءة<em> في الجسم الحي</em<sup> 1،2</sup> و<em> في المختبر</em>. وقد أبلغ هذا التأثير لخلايا انسجة الوسيطة (MSCS) ، الليفية والخلايا البطانية التي تشكل مع مستعمرة الصفائح تفعيلها من خلال ثرومبين<sup> 3-5</sup> أو بواسطة lysed تجميد / الذوبان دورات<sup> 14/06</sup> قبل إضافة releasate الصفيحات إلى الخلية متوسطة الثقافة. وقد تم بالفعل تأثير التغذية من عوامل النمو المشتقة الصفيحات اختبارها في عدة محاكمات لهندسة الأنسجة والعلاج التجديدي.<sup> 1،15-17</supيعتبر> كفاءة متفاوتة على الأقل في جزء منه نتيجة لتركيزات مختلفة من عوامل نمو فردي<sup> 18،19</sup> والنقص الحالي في بروتوكولات موحدة لإعداد الصفائح الدموية.<sup> 15،16</sup> يعرض هذا البروتوكول إجراء العملية لتوليد مجموعة من الصفائح الدموية lysate الإنسان (pHPL) المستمدة من البلازما التي تنتج عادة غنية الصفيحات (PRP) من 40-50 التبرع بالدم واحد. بواسطة دورات تجميد / الذوبان عدة معطوبة الأغشية والصفائح الدموية يتم الافراج بكفاءة عوامل النمو في البلازما. أخيرا ، تتم إزالة أجزاء الصفائح الدموية عن طريق الطرد المركزي لتجنب تشكيل التجميعية واسعة وتستنزف مستضدات محتملة. تنفيذ pHPL في البروتوكولات القياسية الثقافة تمثل أداة واعدة لمزيد من تطوير علاجات الخلية نشر في البروتين الحيواني خالية من النظام.

Protocol

1. بدءا المواد تبدأ الصفيحات الغنية وحدات (PRP) البلازما التي أعدتها فصادة الكريات أو مشتقة من المعاطف الشهباء. 2. عقم الاختيار للعقم الاختيار أخذ عينة من 20 مل …

Discussion

ربما في بعض المناطق يمكن الحصول على الصفائح الدموية البلازما الغنية (PRP) من الشهباء ، المعاطف يجري خلاف ذلك مضيعة للمنتج معبأة انتاج خلايا الدم الحمراء من تبرعات الدم اختبار (الشكل 1). على النحو الأمثل ، يتم استخدام PRP على الفور لإعداد المزيد من pHPL ، كما في الصفائح الدمو…

Acknowledgements

وقد تم دعم هذا العمل من قبل مؤسسة الأبحاث النمساوية (FWF ، منح N211 – NAN إلى DS) وتعزيز البحوث النمساوية وكالة (FFG ، ومنحة لN200 DS). الكتاب نشكر كلوديا رابط للحصول على مساعدة فنية ممتازة وفاريل مونيكا لتحرير اللغوي.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Double bag (2 x 3.5L)   MacoPharma VDL 8000XQ originally for ascites puncture
50 mL Falcon tube   Falcon BD 2098  
50 mL Stripettes   Costar 4501  
Plasma bags (600mL)   Baxter R4R2021  
Sterile tubing welder   Terumo TSCD-II  
Welding equipment   Fresenius Kabi Compo Seal  
Water bath        
Sterile scissors        
Clamps        
Centrifuge        

Riferimenti

  1. Nurden, A. T., Nurden, P., Sanchez, M., Andia, I., Anitua, E. Platelets and wound healing. Front Biosci. 13, 3532-3548 (2008).
  2. Barrientos, S., Stojadinovic, O., Golinko, M. S., Brem, H., Tomic-Canic, M. Growth factors and cytokines in wound healing. Wound Repair Regen. 16, 585-601 (2008).
  3. Giacco, F. Thrombin-activated platelets induce proliferation of human skin fibroblasts by stimulating autocrine production of insulin-like growth factor-1. FASEB J. 20, 2402-2404 (2006).
  4. Kocaoemer, A., Kern, S., Kluter, H., Bieback, K. Human AB serum and thrombin-activated platelet-rich plasma are suitable alternatives to fetal calf serum for the expansion of mesenchymal stem cells from adipose tissue. Stem Cells. 25, 1270-1278 (2007).
  5. Kakudo, N. Proliferation-promoting effect of platelet-rich plasma on human adipose-derived stem cells and human dermal fibroblasts. Plast Reconstr Surg. 122, 1352-1360 (2008).
  6. Doucet, C. Platelet lysates promote mesenchymal stem cell expansion: A safety substitute for animal serum in cell-based therapy applications. J Cell Physiol. 205, 228-236 (2005).
  7. Schallmoser, K. Human platelet lysate can replace fetal bovine serum for clinical-scale expansion of functional mesenchymal stromal cells. Transfusion. 47, 1436-1446 (2007).
  8. Reinisch, A. Humanized system to propagate cord blood-derived multipotent mesenchymal stromal cells for clinical application. Regen Med. 2, 371-382 (2007).
  9. Schallmoser, K. Rapid large-scale expansion of functional mesenchymal stem cells from unmanipulated bone marrow without animal serum Tissue Eng Part. C Methods. 14, 185-196 (2008).
  10. Lange, C. Accelerated and safe expansion of human mesenchymal stromal cells in animal serum-free medium for transplantation and regenerative medicine. J Cell Physiol. 213, 18-26 (2007).
  11. Reinisch, A. Humanized large-scale expanded endothelial colony-forming cells function in vitro and in vivo. Blood. 113, 6716-6725 (2009).
  12. Bernardo, M. E. Optimization of in vitro expansion of human multipotent mesenchymal stromal cells for cell-therapy approaches: further insights in the search for a fetal calf serum substitute. J Cell Physiol. 211, 121-130 (2007).
  13. Carrancio, S. Optimization of mesenchymal stem cell expansion procedures by cell separation and culture conditions modification. Exp Hematol. 36, 1014-1021 (2008).
  14. Muller, A. M. Platelet lysate as a serum substitute for 2D static and 3D perfusion culture of stromal vascular fraction cells from human adipose tissue. Tissue Eng Part A. 15, 869-875 (2009).
  15. Anitua, E., Sanchez, M., Orive, G., Andia, I. The potential impact of the preparation rich in growth factors (PRGF) in different medical fields. Biomaterials. 28, 4551-4560 (2007).
  16. Anitua, E. New insights into and novel applications for platelet-rich fibrin therapies. Trends Biotechnol. 24, 227-234 (2006).
  17. Martinez-Zapata, M. J. Efficacy and safety of the use of autologous plasma rich in platelets for tissue regeneration: a systematic review. Transfusion. 49, 44-56 (2009).
  18. Weibrich, G., Kleis, W. K., Hafner, G., Hitzler, W. E. Growth factor levels in platelet-rich plasma and correlations with donor age, sex, and platelet count. J Craniomaxillofac Surg. 30, 97-102 (2002).
  19. Frechette, J. P., Martineau, I. &. a. m. p. ;. a. m. p., Gagnon, G. Platelet-rich plasmas: growth factor content and roles in wound healing. J Dent Res. 84, 434-439 (2005).
  20. Seghatchian, J., Krailadsiri, P. The platelet storage lesion. Transfus Med Rev. 11, 130-144 (1997).
  21. Selvaggi, T. A., Walker, R. E., Fleisher, T. A. Development of antibodies to fetal calf serum with arthus-like reactions in human immunodeficiency virus-infected patients given syngeneic lymphocyte infusions. Blood. 89, 776-779 (1997).
  22. Tonti, G. A., Mannello, F. From bone marrow to therapeutic applications: different behaviour and genetic/epigenetic stability during mesenchymal stem cell expansion in autologous and foetal bovine sera. Int J Dev Biol. 52, 1023-1032 (2008).
  23. Bieback, K. Human Alternatives to Fetal Bovine Serum for the Expansion of Mesenchymal Stromal Cells from Bone Marrow. Stem Cells. , (2009).
  24. Rohde, E., Schallmoser, K., Bartmann, C., Reinisch, A., Gad, S. C. GMP-Compliant Propagation of Human Multipotent Mesenchymal Stromal Cells. Pharmaceutical Manufacturing Handbook: Regulations and Quality. , 97-115 (2008).
check_url/it/1523?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Schallmoser, K., Strunk, D. Preparation of Pooled Human Platelet Lysate (pHPL) as an Efficient Supplement for Animal Serum-Free Human Stem Cell Cultures. J. Vis. Exp. (32), e1523, doi:10.3791/1523 (2009).

View Video