Caractérisation des Extensions de la Membrane cellulaire et d’étudier leur rôle dans le Cancer Cell Adhesion dynamique
Summary
Cette étude démontre l’utilité et la facilité de la mesure d’extension quantitative de membrane cellulaire et sa corrélation avec la capacité adhésive des cellules. Comme un exemple représentatif, nous montrons ici que Dickkopf-protéine 3 (DKK3) favorise la formation de lobopodia accrue et l’adhérence cellulaire dans le corticosurrénalome cellules in vitro.
Abstract
Répertoire d’extension de la membrane de la cellule module divers comportements malignes des cellules cancéreuses, y compris leurs potentiels d’adhésif et migrateurs. La capacité avec précision, classer et quantifier des extensions de la cellule et mesurer l’effet sur la capacité adhésive de la cellule est jugés essentielle pour déterminer comment signalisation cellulaire événements incidence du cancer cell comportement et agressivité. Nous décrivons ici la in vitro la conception et l’utilisation d’une cellule extension quantification méthode conjointement avec un test de capacité d’adhérence un modèle établi in vitro de corticosurrénalome (ACC). Plus précisément, nous testons les effets de DKK3, un suppresseur de tumeur présumée et un facteur de différenciation favorable, sur le phénotype d’extension de membrane d’une lignée cellulaire ACC, SW-13. Nous proposons ces dosages à fournir relativement simple, fiable et facilement interprétable métriques à mesure ces caractéristiques dans des conditions expérimentales différentes.
Introduction
Dysregulated WNT signaling joue un rôle essentiel dans la corticosurrénale malignités1. Les méthodes utilisées dans cette étude étudient si silencieux de DKK3, un régulateur négatif de signalisation WNT, représente un événement de dédifférenciation dans le cortex surrénal et favorise la formation de tumeurs dans le contexte des changements de répertoire de cellule-extension. DKK3 est un 38 kDa sécrétée glycoprotéine avec un peptide signal de N-terminal et études antérieures ont démontré que son expression forcée a abouti à l’arrêt du cycle cellulaire, inhibe le comportement agressif de malin et inversé épithéliale-mésenchymateuse transition2.
Le comportement malin de corticosurrénalome (ACC) et d’autres cancers est, en partie influencé par la capacité des cellules tumorales pour s’interfacer avec les surfaces environnantes, y compris la matrice extracellulaire, ce qui facilite à son tour l’invasion des cellules tumorales et 3de migration. Le rôle de membrane de cellules spécifiques figurant dans la progression du cancer est plus en plus démontré dans des contextes variés, principalement par le biais de la formation des filopodes. Par exemple, la surexpression des canaux calciques de type L s’est avérée d’induire la formation de filopodes et promouvoir la tumeur cellulaire invasion4. De même, Fascin, une protéine de liaison au minimum l’actine exprimée dans les tissus normaux, est également surexprimée dans les cellules cancéreuses en liaison avec les filopodes formation5. Lobopodia formation permet des fibroblastes non malignes migrer efficacement par le biais de la matrice extracellulaire, cependant, il a été démontré que les cellules de Fibrosarcome s’appuient sur métalloprotéinase activité remplace lobopodia pour faciliter la migration cellulaire et invasion,6. Nous avons montré que la tumeur suppresseurs, y compris les Ras association domaine familial 1 isoforme un (RASSF1A) et DKK3, peut fonctionner pour modifier les éléments du cytosquelette et favorisent la formation de lamellipodia et bloquer des propriétés invasives7,8.
Par conséquent, il est essentiel pour caractériser les effets des gènes impliqués dans la carcinogenèse et leur relation avec les altérations d’extension de membrane cellulaire, évaluant spécifiquement formation filopodes, lobopodia et lamellipodia dans des conditions de test. Les techniques actuelles de state-of-the art comprennent l’utilisation de méthodes de microscopie de plus en plus sophistiqués, le marquage fluorescent ou algorithmes informatiques complexes pour l’acquisition de données et l’interprétation. Bien que ces méthodes offrent de nouveaux et puissants outils d’analyse, leur complexité limite leur utilisation généralisée et l’adaptabilité dans des expériences de biologie cellulaire. En outre, la quantification précise et l’observation des changements dans la morphologie cellulaire extension n’est pas généralement mesurées9,10. En revanche, nous présentons ici une technique qui quantifie précisément les altérations d’extension de cellules à l’aide de techniques microscopiques standard et méthodes facilement adaptable en vitro . Ces méthodes également quantifier chaque type d’extension cellule simultanément pour chaque cellule analysée et déterminent les changements globaux dans le répertoire d’extension de membrane cellulaire. Nous montrons aussi comment ces changements peuvent se rapporter à des propriétés d’adhérence cellulaire.
À titre d’exemple expérimental, nous utiliserons une lignée de cellules préalablement créé de SW-13, désigné SW-DDK3, qui a été solidement transfectées avec des vecteurs de plasmide pCMV6-entrée/DKK3 et constitutivement risque DKK3, un facteur de différenciation dans la glande surrénale. Les cellules non transfectées de SW-13 et SW-13 cellules stablement transfectées avec un vecteur vide (entrée pCMV6), désigné SW-Neo, servira de contrôles expérimentaux.
Protocol
Representative Results
Discussion
Nous décrivons ici une méthode quantitative in vitro afin de caractériser les extensions de la cellule avec facilité, quelques pièges et reproductibilité fiable qui peut être appliquée pour différentes conditions de test. En outre, essais d’adhésion et/ou la motilité simples, quantifiables peuvent être effectuées simultanément pour mettre en corrélation pouvant avoir une importance fonctionnelle des altérations observées dans les extensions de la membrane cellulaire.
<p class="jove_content…Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
La Fondation de Grant Ohse financé ce travail.
Materials
| Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) | ThermoFisher | 11965-092 | Supplemented with fetal bovine serum and penicllin and streptomycin |
| Deulbeco's Phosphate Buffered Saline | Sigma-Aldrich | D8537 | 1X solution, used directly |
| 3.7% formaldehyde | Sigma-Aldrich | F8775 | Dilute stock solution |
| 0.05% crystal violet | Harleco | 192-12 | Dilute stock solution |
| De-ionized water | NA | NA | NA |
| Microscope with 400X magnification | NA | NA | NA |
| 6-well plates | Corning | 353046 | NA |
| Cell dissociation solution non-enzymatic 1X | Sigma-Aldrich | C5914 | 1X solution, used directly |
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