Waiting
로그인 처리 중...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Medicine
Click here for the English version

Medicine

OP-IVM: Сочетание созревания in vitro после извлечения ооцитов с гинекологической хирургией

Published: May 9, 2021 doi: 10.3791/61647
Automatic Translation
*1,2,3,4,5, *1,2,3,4,5, *1,2,3,4,5, 1,2,3,4,5, 1,2,3,5, 1,2,3,4,5, 1,2,3,4,5, 1,2,3,4,5
1Center for Reproductive Medicine, Department of Obstetrics and Gynecology, Peking University Third Hospital, 2National Clinical Research Center for Obstetrics and Gynecology, 3Key Laboratory of Assisted Reproduction, Ministry of Education, 4Beijing Key Laboratory of Reproductive Endocrinology and Assisted Reproduction, 5Research Units of Comprehensive Diagnosis and Treatment of Oocyte Maturation Arrest, Chinese Academy of Medical Sciences
* These authors contributed equally

ERRATUM NOTICE

Summary

Созревание in vitro (IVM) перед гинекологической операцией (OP-IVM) сочетает в себе IVM после извлечения ооцитов с обычной гинекологической хирургией и служит расширением обычных применений IVM для сохранения фертильности.

Abstract

Использование созревания in vitro (IVM) перед гинекологической операцией (OP-IVM) является расширением обычного IVM, которое сочетает в себе IVM после извлечения ооцитов с обычной гинекологической хирургией. OP-IVM подходит для пациентов, перенесших доброкачественную гинекологическую хирургию, у которых есть потребность в сохранении фертильности (FP) или лечении бесплодия, таком как экстракорпоральное оплодотворение и перенос эмбрионов (IVF-ET). В операционной пациентки, перенесшие доброкачественную гинекологическую операцию, сначала обезболиваются и получают ультразвуковое лечение незрелой аспирации фолликула (IMFA). При проведении последующей гинекологической операции исследуют кучевые ооцитарные комплексы (КОК), а незрелые КОК переводят в среду IVM и культивируют в течение 28-32 часов в лаборатории ЭКО. После оценки зрелые ооциты на стадии MII будут отобраны и криоконсервированы в жидком азоте для FP или оплодотворены интрацитоплазматической инъекцией сперматозоидов (ICSI) для IVF-ET. Сочетая IVM с гинекологической хирургией, незрелые ооциты, которые были бы выброшены, могут быть сохранены и использованы для вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ). Процедура, значимость и критические аспекты ОП-IVM описаны в данной статье.

Introduction

IVM - это АРТ, в которой человеческие незрелые ооциты культивируются in vitro до созревания для IVF-ET или FP. В IVM не используются индукционные препараты для овуляции, что уменьшает боль, финансовую нагрузку и осложнения, такие как синдром гиперстимуляции яичников (СГЯ)1,2. Кроме того, IVM особенно подходит для ФП больных раком и лечения бесплодия гормонально-чувствительных пациентов, которые могут быть не в состоянии или не иметь времени для получения индукционной терапии овуляции3. Поэтому, хотя количество извлеченных ооцитов, клиническая беременность (СЛР) и коэффициент живорождений (ЛБР) ниже, чем у ЭКО4,5,КБМ имеет свои уникальные преимущества.

Бесплодные пациенты с поражениями эндометрия, гидросальпинксом или кистами яичников обычно проходят гинекологическую операцию перед лечением АРТ, и их ооциты обычно незрелые. OP-IVM использует управляемое трансвагинальное ультразвуковое исследование для извлечения незрелых ооцитов и выращивания их in vitro до созревания для IVF-ET или FP. OP-IVM сочетает IVM после извлечения ооцитов и гинекологической хирургии, тем самым уменьшая осложнения, которые распространены в контролируемых циклах гиперстимуляции яичников и экономя время и деньги. Для фертильных пациентов OP-IVM может служить «страхованием фертильности» при прохождении обычной гинекологической хирургии.

Кроме того, повреждения, вызванные гинекологическими операциями, такими как электрокоагрия6,7 и резекция опухоли яичника, могут быть уменьшены путем извлечения ооцитов перед гинекологической операцией. Поэтому, по сравнению с обычной гинекологической хирургией, ОП-IVM может уменьшить количество операций во время лечения бесплодия и предотвратить потерю функциональных ооцитов во время операции на яичниках.

Предыдущее исследование показало, что дополнительная процедура извлечения ооцитов не увеличит хирургические осложнения и неблагоприятные исходы беременности, а также не продлит пребывание в больнице8. Некоторые пациентки давали живорождение через ОП-IVM8,что указывает на целесообразность применения данного метода. В этой статье описываются характеристики пациентов, которые могут извлечь выгоду из OP-IVM, а также процедуры и критические точки OP-IVM и обсуждается оценка зрелости ооцитов человека.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

ПРИМЕЧАНИЕ: Исследования, связанные с методом OP-IVM, были одобрены институциональным наблюдательным советом (IRB) Третьей больницы Пекинского университета и Комитетом по этике Пекинского университета (2014S2004). Сводка OP-IVM показана на рисунке 1. Пошаговая процедура будет представлена в следующем разделе.

1. Введение ОП-IVM соответствующим пациентам

  1. Выявление потенциальных пациентов, которые могут извлечь выгоду из ОП-IVM, таких как те, которые описаны в шагах 1.1.1-1.1.3:
    1. Пациенты с синдромом поликистозных яичников (СПКЯ) с резистентностью к кломифену, которым требуется лапароскопическая операция по сверлению яичников.
    2. Бесплодные пациенты, которые нуждаются в доброкачественных гинекологических операциях, таких как гистероскопическая миомэктомия, полипэктомия, трансцервикальная резекция перегородки и лапароскопическая трубная хирургия, а также оофороцистэктомия, перед лечением АРТ.
    3. Пациенты с онкологическими или гематологическими заболеваниями, которые получают химиолучевую или лучевую терапию.

2. Информированное согласие

  1. Предоставьте пациентам полную информацию, в том числе о том, почему OP-IVM может быть полезным, его процедура, использование ооцитов IVM (IVF-ET или криоконсервация), оценочные CR и LБР и возможные осложнения. Попросите пациентов дать информированное согласие, подписав форму согласия.

3. Подготовьте этикетки и IVM ооцитарную среду

  1. Печать идентификационных (ID) этикеток с именем пациента и датами для культуры посуды и тюбиков.
  2. Добавьте 0,5 мл среды IVM с добавлением 0,075 МЕ/мл фолликулостимулирующего гормона (ФСГ) и 0,075 МЕ/мл лютеинизирующего гормона (ЛГ) к каждой лунки 4-луночной пластины. Накройте среду маслом.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Выполняйте все эти процедуры в ламинарной потоке чистых скамеек.
  3. Предварительно прогреть 4-х скважинную пластину с IVM-средой ооцитов при 37 °C в увлажненном воздухе, содержащем 5% CO2 и 5% O2, не менее чем за 6 ч до применения.

4. Введение анестезии в операционной

  1. Проверьте имя пациента перед введением анестезии.
  2. Внутривенно обезболивают пациента анестезиологом.

5. Выполните извлечение ооцитов

  1. Пометьте этикетки именем, датой и идентификатором на посуде и тюбиках культуры.
  2. Поместите пациента в положение литотомии мочевого пузыря; постоянно дезинфицировать, драпировать и скрабировать влагалище теплым физиологическим раствором.
  3. Поместите ультразвуковой зонд внутрь влагалища; сканировать и записывать количество фолликулов в обоих яичниках. Найдите место, ближайшее к яичнику в качестве места пункции, и избегайте кишечника, мочевого пузыря и крупных кровеносных сосудов.
  4. Аспират фолликулярной жидкости.
    1. Промыть иглу с pH-стабильной средой перед проколом (см. Таблицу материалов).
    2. Вводят однопросветную аспирационную иглу 19 Г в яичники под руководством ультразвука.
    3. Пункция более крупных фолликулов с четкими границами, ближайшими к зонду. В низком положении быстро вводят раствор для полоскания, дополненный 25 Ед/мл гепарина. Аспирировать фолликулярную жидкость иглой под давлением 80-90 мм рт.ст., слегка вращая иглу, чтобы аспирировать как можно больше фолликулярной жидкости. Пункция других фолликулов с ближней на дальнюю сторону на этой плоскости.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Во время аспирации фолликулярная жидкость, содержащая ооциты, будет течь в стерильную пробирку 10 мл под отрицательным давлением. Гепарин может снижать вязкость фолликулярной жидкости, облегчая процесс аспирации.
    4. Удалите иглу из яичницы (держите иглу в стенке влагалища). Отрегулируйте направление ультразвукового зонда и проколйте оставшиеся фолликулы на других плоскостях. Попробуйте аспирировать все фолликулы диаметром ~5-9 мм.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Отрегулируйте положение зонда, чтобы он всегда был ближе всего к яичникам. Надавить на влагалищную форниксу с соответствующей силой, чтобы уменьшить травмы и кровотечения.
    5. Вытащите иглу после финиша в одном яичнике, промойте иглу с помощью погрузочной среды и проколите другую сторону тем же методом.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Полная аспирация фолликула в течение 25-30 мин.
  5. Перенесите фолликулярную жидкость из операционной в лабораторию ЭКО в течение нескольких минут после подтверждения имени и удостоверения личности пациента.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Перенесите аспирированную фолликулярную жидкость на лабораторный стенд ЭКО как можно скорее, чтобы предотвратить коагуляцию.
  6. Обнаружить активное кровоизлияние в полости малого таза с помощью УЗИ В-режима после прокола всех фолликулов. Вставьте зеркало и наведите кончик на заднюю форниксу, чтобы обнаружить активное кровотечение в месте прокола.
    ПРИМЕЧАНИЕ: В месте пункции влагалища не должно наблюдаться активного кровотечения, если положение яичников нормальное и извлечение ооцитов выполняется осторожно. При легком кровотечении, которое продолжается даже после компрессии, держите стерильный марлевый компресс во влагалище в течение 2-4 ч. Контролировать чрезмерное кровотечение из мелких артерий с помощью зажимов с сосудистыми щипцами в течение 2-4 ч. Кровотечение в полости малого таза или яичнике, которое случается редко, должно контролироваться электрокоагуляцией с помощью лапароскопической хирургии.

6. Гинекологическая хирургия

  1. Исходя из необходимости и состояния пациентки, проводят соответствующую гинекологическую операцию после извлечения ооцитов.
    1. Выполнение лапароскопической операции по сверлению яичников пациентам с синдромом поликистозных яичников (СПКЯ) с резистентностью к кломифену.
    2. Выполнять доброкачественные гинекологические операции для бесплодных пациенток перед лечением АРТ, такие как гистероскопическая миомэктомия, полипэктомия, трансцервикальная резекция перегородки и лапароскопическая трубная хирургия, а также овариоцистэктомия.
    3. Выполняют овариэктомию для криоконсервации фертильности пациентов с онкологическими или гематологическими заболеваниями, которым необходимо получить химиолучевую терапию.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Эти гинекологические операции являются основными и стандартизированными клиническими операциями. Руководство по эксплуатации в различных странах и больницах должно быть относительно похожим.

7. Выполните IVM

ПРИМЕЧАНИЕ: Выполните весь процесс IVM на гомотермической плоскости с 37 °C.

  1. Фильтруйте аспирированную фолликулную жидкость с помощью ситечка нейлоновых клеток 70 мкм. Многократно промывайте культурную трубку и ситечко предварительно нагретой pH-стабильной средой для обработки. Убедитесь, что все незрелые КОК полностью перенесены в культурную посуду. Соберите отфильтрованную жидкость, промойте и культивируем в чашку Петри размером 100 х 15 мм.
  2. Исследуйте КОК(рисунок 2)под стереоскопом с 40-кратным увеличением. Быстро переносите незрелые в предварительно подогретую IVM-среду ооцитов.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Выберите подходящее увеличение в зависимости от привычки оператора.
  3. Запишите количество культивированных незрелых КОК.
  4. Сообщите пациенту о количестве культивируемых КОК. Обсудите сбор спермы с пациентами и их партнерами. Выполните извлечение спермы в соответствии с обычной процедурой.
  5. Культивировали незрелые КОК при 37 °С в увлажненный воздух, содержащий 5% CO2 и 5%O2 в течение 28-32 ч.
  6. Оцените зрелость ооцитов.
    1. Обнажение кучевых клеток путем повторного пипетирования с использованием стеклянной пипетки Пастера под стереоскопом с 40-кратным увеличением. Исследуют экструзию полярного тела (ПБ) для выявления стадии развития ооцитов. См. Рисунок 2 для репрезентативных изображений ооцитов в КОК, метафазе II (MII), метафазе I (MI) и зародышовых везикулах (GV) с четкими морфологическими характеристиками.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Используйте вертикальное пламя (например, горелки Бунзена), чтобы отрегулировать диаметр стеклянной пипетки Пастера до размера ооцита.
    2. Подсчитайте ооциты МИИ и запишите их количество.
    3. Выбирайте зрелые ооциты для ЭКО или витрификации.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Соберите сперму в день созревания ооцитов для ЭКО, но не для витрификации ооцитов.
    4. Культивирует незрелые ооциты в стадии ГВ и ИМ в исходной культуральная среда IVM с кучевыми клетками еще 10-14 ч. Повторите шаги 7.6.2-7.6.3.

8. Выполните ИКСИ или витрификацию ооцитов

  1. Следуйте стандартной процедуре репродуктивного центра8.

9. Культивирование эмбрионов и криоконсервация эмбрионов

  1. Следуйте стандартной процедуре репродуктивного центра8.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

До декабря 2019 года ОП-IVM использовался для сохранения фертильности 274 пациенток. Эмбриологические и репродуктивные результаты 158 пациентов в период с 2014 по 2016 год были опубликованы в предыдущей статье8. В следующем примере обсуждается процедура, соблюдаемая для пациента с СПКЯ, получающего OP-IVM в 2016 году. Пациентом является 28-летний пациент с диагнозом первичное бесплодие, киста левого придаткового придатка и СПКЯ. Она получила лапароскопическую цистэктомию и OP-IVM28сентября 2016 года; Получено 27 незрелых КОК. После 28-часовой культуры 7 ооцитов в стадии MII были отобраны и оплодотворены ИКСИ. Количество качественных 2 проядер (2PNs) на 1-й день и эмбрионов на 3-й день и 5-й день составило 6, 6 и 2 соответственно. Бластоцисты, полученные на 5-йдень (4 октября 2016 года), были заморожены. 14 февраля2017 года одна бластоциста была оттаяла. Эта размороженный бластула была жива и перенесенав матку 14 февраля 2017 года. Результаты анализа крови человека на хорионический гонадотропин (ХГЧ) были положительными, а УЗИ показало внутриутробную раннюю беременность. Пациентка родила здоровую девочку путем кесарева сечения на 40 неделе2ноября 2017 года.

Figure 1
Рисунок 1:Блок-схема OP-IVM. Перед гинекологической операцией под трансвагинальным ультразвуковым контролем фолликулная жидкость аспирируется через IMFA. Полученную фолликулную жидкость переносят в лабораторию ЭКО, фильтруют и промывают. Незрелые КОК переносят в предварительно распакованный раствор культуры IVM и культивируют в течение 28-32 ч. Зрелые ооциты с ПБ используются для криоконсервации или ЭКО-ЭТ. Сокращения: IMFA = аспирация незрелого фолликула; ЭКО = экстракорпоральное оплодотворение; ЭКО-ЭТ = ЭКО и перенос эмбрионов; КОК = кучевые-ооцитарные комплексы; IVM = созревание in vitro; ОП-ИВМ = ИВМ перед гинекологической операцией; GV = зародышевый жизикул; MI = метафаза I; ИКСИ = интрацитоплазматическая инъекция сперматозоидов; PB = полярное тело; PN = про-ядро; D1 = день 1. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Figure 2
Рисунок 2:Морфологические характеристики репрезентативных изображений ооцитов. (А) КОК, (В) МИИ, (В) ИМ, (D) ГВ стадии. Сокращения: КОК = кучевые-ооцитарные комплексы; GV = зародышевый жизикул; MI = метафаза I; MII = метафаза II. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Метод OP-IVM, описанный в этой статье, распространяется на обычные применения IVM и сочетает в себе IVM после извлечения ооцитов с обычной гинекологической хирургией. Ооциты, которые были бы потеряны в гинекологической хирургии, теперь могут быть использованы для ЭКО-ЭТ или ФП без дополнительных хирургических рисков. OP-IVM был впервые использован для извлечения ооцитов перед сверлением яичников у пациентов с СПКЯ. Его применение вскоре распространилось на бесплодных пациентов, которые нуждаются в доброкачественной гинекологической хирургии и больных раком или гематологическими заболеваниями, которые нуждаются в химиолучевой терапии. Из-за потенциального риска метастазирования OP-IVM не подходит или не рекомендуется пациентам со злокачественными опухолями. На основе OP-IVM в этом учреждении создан новый китайский режим банка яйцеклеток для ФП бесплодных и онкологических больных.

Для ОП-IVM следует учитывать как срочность гинекологической хирургии, так и потенциал получения большего количества ооцитов. В целом исход IVM положительно коррелирует с количеством незрелых ооцитов, полученных при извлечении ооцитов9. Доминантные фолликулы могут ингибировать рост окружающих более мелких фолликулов и вызывать атрезию10,что приводит к уменьшению количества извлеченных незрелых ооцитов. Поэтому, если гинекологическая операция не является срочной, лучшим окном для ОП-IVM является когда при УЗИ В-режима наблюдается большее количество мелких фолликулов с небольшим количеством доминантных фолликулов. Кроме того, антимюллеров гормон (АМГ) может быть использован в качестве параметра для прогнозирования овариального резерва, поскольку количество извлеченных ооцитов значительно положительно коррелирует с АМГ11,12. В тех случаях, когда гинекологическая операция была приоритетной, следует извлечь как можно больше незрелых ооцитов. При экстренных операциях извлечение ооцитов и IVM должны быть тщательно оценены на основе состояния и воли пациента.

IMFA под трансвагинальным ультразвуковым руководством является методом, используемым для извлечения ооцитов, который может уменьшить повреждение функции яичников13,14. Лапароскопическая пункция яичников аспиратных незрелых ооцитов также используется в некоторых исследованиях15. Однако, по сравнению с лапароскопией, ИМФА при трансвагинальном УЗИ занимает меньше времени, является менее инвазивным, легче выполняется16,17и может достигать более целенаправленной аспирации фолликула. Поэтому для минимизации влияния на овариальный резерв и повышения точности аспирации рекомендуется ИМФА под трансвагинальным ультразвуковым контролем в качестве лучшего метода извлечения ооцитов при ОП-IVM. Однако ИКСИ рекомендуется для оплодотворения. Предыдущие исследования показали, что зона пеллюцида затвердевает после культивирования in vitro в течение длительных периодов времени, что приводит к снижению скорости успешного оплодотворения18. Было показано, что ИКСИ эффективно улучшает скорость оплодотворения Ооцитов IVM в естественных циклах19,20. Хотя недавние исследования показали аналогичные показатели оплодотворения для ИКСИ и ЭКО21,22,ИКСИ имеет преимущество использования естественных циклов вместо стимуляции яичников. Собранные эмбрионы замораживаются из-за неподготовленного эндометрия, и перенос эмбрионов может быть выполнен позже в соответствии со стандартной процедурой в каждом центре.

Целью АРТ является лечение бесплодия и роды здоровых детей. Предыдущие исследования о репродуктивных результатах OP-IVM показали, что количество извлеченных ооцитов и скорость созревания ооцитов сопоставимы с теми, которые наблюдаются для обычных циклов IVM с использованием ФСГ и ХГЧ. Тем не менее, OP-IVM имеет более низкую СЛР и более низкий LBR, чем обычный IVM8,23,24,25. Это может быть объяснено ограниченным созреванием ооцитов из-за плохого потенциала развития незрелых ооцитов в естественных циклах. Тем не менее, гормональная стимуляция не является вариантом для некоторых пациентов, которые не могут или у которых нет времени на получение лечения. Кроме того, витрификация может повредить потенциал развития ооцитов, что приводит к низким CPR и LBR26,27.

Кроме того, гонадотропины могут увеличивать яичники и увеличивать риск кровотечений во время извлечения ооцитов, отрицательно влияя на воздействие оперативных полей при лапароскопии. LBR метода OP-IVM относительно низок. Необходимы дополнительные исследования для изучения наилучших оперативных сроков и модификации системы культуры IVM для улучшения результатов OP-IVM. В целом, OP-IVM сочетает IVM с гинекологической хирургией, так что незрелые ооциты, которые были бы повреждены или выброшены, могут быть сохранены и использованы для АРТ. OP-IVM имеет преимущества в том, чтобы избежать осложнений, вызванных препаратами, стимулирующими яичники, и уменьшить количество операций по лечению бесплодия. Поэтому OP-IVM следует рассматривать как потенциально ценный метод лечения для определенных пациентов и изучать более глубоко, чтобы лучше понять его эффекты и результаты.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Авторам нечего раскрывать.

Acknowledgments

Эта работа была поддержана грантами Китайской национальной ключевой программы исследований и разработок (No 2017YFC1002000, 2018YFC1004001, 2019YFA0801400), Национального научного фонда Китая (No 81571386, 81730038), Инновационного фонда медицинских наук CAMS (2019-I2M-5-001) и Специального исследовательского проекта развития здоровья китайского капитала (2018-2-4095).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
19 G single-lumen aspiration needles Cook, Australia K-OPS-7035-REH-ET
4-well plate Corning
70 μm nylon cell strainer Falcon, USA 352350
CO2 Incubator Thermo
Culture oil Vitrolife, Sweden 10029,OVOIL  Step 3.2.
FSH & LH Ferring Reproductive Health, Germany MENOPUR®
Glass Pasteur pipette Hilgenberg GmbH, Germany 3154102-26
G-MOPS medium pH-stable handling medium for washing the needle before puncturing
IVM medium Origio, Denmark ART-1600-B
Laminar Flow Clean Benches ESCO
Petri dish Thermo Fisher Scientific, Denmark 263991
pH stable handing media designed to support the handling and manipulation of oocytes and embryos outside the incubator Vitrolife, Sweden 10130, G-MOPS PLUS Step 7.1.
Rinse solution Cook, Australia K-SIFB-100
Stereoscope Nikon

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Ho, V. N. A., Braam, S. C., Pham, T. D., Mol, B. W., Vuong, L. N. The effectiveness and safety of in vitro maturation of oocytes versus in vitro fertilization in women with a high antral follicle count. Human Reproduction. 34 (6), 1055-1064 (2019).
  2. Yang, Z. Y., Chian, R. C. Development of in vitro maturation techniques for clinical applications. Fertility and Sterility. 108 (4), 577-584 (2017).
  3. Hatirnaz, S., et al. Oocyte in vitro maturation: A sytematic review. Turkish Journal of Obstetrics and Gynecology. 15 (2), 112-125 (2018).
  4. Gremeau, A. S., et al. In vitro maturation or in vitro fertilization for women with polycystic ovaries? A case-control study of 194 treatment cycles. Fertility and Sterility. 98 (2), 355-360 (2012).
  5. Ho, V. N. A., Braam, S. C., Pham, T. D., Mol, B. W., Vuong, L. N. The effectiveness and safety of in vitro maturation of oocytes versus in vitro fertilization in women with a high antral follicle count. Human Reproduction. 34 (6), 1055-1064 (2019).
  6. Sahin, C., et al. Which should be the preferred technique during laparoscopic ovarian cystectomy. Reproductive Sciences. 24 (3), 393-399 (2017).
  7. Xiao, J., et al. Impact of hemostatic methods on ovarian reserve and fertility in laparoscopic ovarian cystectomy. Experimental and Therapeutic. 17 (4), 2689-2693 (2019).
  8. Song, X. -L., et al. Enhancing the scope of in vitro maturation for fertility preservation: transvaginal retrieval of immature oocytes during endoscopic gynaecological procedures. Human Reproduction. 35 (4), 837-846 (2020).
  9. Magnusson, Å, Källen, K., Thurin-Kjellberg, A., Bergh, C. The number of oocytes retrieved during IVF: a balance between efficacy and safety. Human Reproduction. 33 (1), 58-64 (2018).
  10. Larose, H., et al. Gametogenesis: A journey from inception to conception. Current Topics in Developmental Biology. Wellik, D. M., et al. 132, Academic Press. 257-310 (2019).
  11. Broer, S. L., Broekmans, F. J. M., Laven, J. S. E., Fauser, B. C. J. M. Anti-Müllerian hormone: ovarian reserve testing and its potential clinical implications. Human Reproduction Update. 20 (5), 688-701 (2014).
  12. Arce, J. C., La Marca, A., Mirner Klein, B., Nyboe Andersen, A., Fleming, R. Antimüllerian hormone in gonadotropin releasing-hormone antagonist cycles: prediction of ovarian response and cumulative treatment outcome in good-prognosis patients. Fertility and Sterility. 99 (6), 1644-1653 (2013).
  13. Katayama, K. P., et al. Ultrasound-guided transvaginal needle aspiration of follicles for in vitro fertilization. Obstetrics and Gynecology. 72 (2), 271-274 (1988).
  14. Dellenbach, P., et al. Transvaginal sonographically controlled follicle puncture for oocyte retrieval. Fertility and Sterility. 44 (5), 656-662 (1985).
  15. Hirata, T., et al. Concomitant ovarian drilling and oocyte retrieval by laparoendoscopic single-site surgery led to live birth using in vitro maturation of oocyte and transfer of frozen-thawed blastocyst in woman with polycystic ovary syndrome. Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 40 (5), 1431-1435 (2014).
  16. Deutinger, J., et al. Follicular aspiration for in vitro fertilization: sonographically guided transvaginal versus laparoscopic approach. European Journal of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Biology. 26 (2), 127-133 (1987).
  17. Tanbo, T., Henriksen, T., Magnus, O., Abyholm, T. Oocyte retrieval in an IVF program. A comparison of laparoscopic and transvaginal ultrasound-guided follicular puncture. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 67 (3), 243-246 (1988).
  18. Nagy, Z. P., et al. Pregnancy and birth after intracytoplasmic sperm injection of in vitro matured germinal-vesicle stage oocytes: case report. Fertility and Sterility. 65 (5), 1047-1050 (1996).
  19. Söderström-Anttila, V., Mäkinen, S., Tuuri, T., Suikkari, A. -M. Favourable pregnancy results with insemination of in vitro matured oocytes from unstimulated patients. Human Reproduction. 20 (6), 1534-1540 (2005).
  20. Hwang, J. L., Lin, Y. H., Tsai, Y. L. In vitro maturation and fertilization of immature oocytes: a comparative study of fertilization techniques. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 17 (1), 39-43 (2000).
  21. Walls, M., Junk, S., Ryan, J. P., Hart, R. IVF versus ICSI for the fertilization of in-vitro matured human oocytes. Reproductive Biomedicine Online. 25 (6), 603-607 (2012).
  22. Park, J. H., Jee, B. C., Kim, S. H. Comparison of normal and abnormal fertilization of in vitro-matured human oocyte according to insemination method. Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 42 (4), 417-421 (2016).
  23. Ho, V. N. A., Pham, T. D., Le, A. H., Ho, T. M., Vuong, L. N. Live birth rate after human chorionic gonadotropin priming in vitro maturation in women with polycystic ovary syndrome. Journal of Ovarian Research. 11 (1), 70 (2018).
  24. Zheng, X., et al. Effect of hCG priming on embryonic development of immature oocytes collected from unstimulated women with polycystic ovarian syndrome. Reproductive Biology and Endocrinology. 10, 40 (2012).
  25. Tannus, S., et al. Predictive factors for live birth after in vitro maturation of oocytes in women with polycystic ovary syndrome. Archives of Gynecology and Obstetrics. 297 (1), 199-204 (2018).
  26. Cohen, Y., et al. Decreased pregnancy and live birth rates after vitrification of in vitro matured oocytes. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 35 (9), 1683-1689 (2018).
  27. Yazdanpanah, F., Khalili, M. A., Eftekhar, M., Karimi, H. The effect of vitrification on maturation and viability capacities of immature human oocytes. Archives of Gynecology and Obstetrics. 288 (2), 439-444 (2013).

Tags

Медицина Выпуск 171 IVM Сохранение фертильности трансвагинальное извлечение эндоскопические гинекологические процедуры СПКЯ

Erratum

Formal Correction: Erratum: OP-IVM: Combining In vitro Maturation after Oocyte Retrieval with Gynecological Surgery
Posted by JoVE Editors on 06/26/2023. Citeable Link.

An erratum was issued for: OP-IVM: Combining In vitro Maturation after Oocyte Retrieval with Gynecological Surgery. The Protocol and Representative Results sections were updated.

Step 3.2 of the Protocol was updated from:

Add 0.5 mL of IVM medium supplemented with 0.075 IU/mL of follicle-stimulating hormone (FSH) and 0.075 IU/mL of luteinizing hormone (LH) to each well of a 4-well plate. Cover the medium with oil.

to:

Add 0.5 mL of IVM medium supplemented with 0.75 IU/mL of follicle-stimulating hormone (FSH) and 0.75 IU/mL of luteinizing hormone (LH) to each well of a 4-well plate. Cover the medium with oil.

The legend for Figure 2 was updated from:

Figure 2: Morphological characteristics of representative images of oocytes. (A) COCs, (B) MII, (C) MI, (D) GV stage. Abbreviations: COCs = cumulus-oocyte complexes; GV = germinal vesicle; MI = metaphase I; MII = metaphase II.

to:

Figure 2: Morphological characteristics of representative images of oocytes. (A) COCs, (B) GV, (C) MI, (D) MII stage. Abbreviations: COCs = cumulus-oocyte complexes; GV = germinal vesicle; MI = metaphase I; MII = metaphase II.

OP-IVM: Сочетание созревания in vitro после извлечения ооцитов с гинекологической хирургией
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Liu, T., Song, X., Zheng, X., Yan,… More

Liu, T., Song, X., Zheng, X., Yan, L., Ma, C., Li, R., Yan, J., Qiao, J. OP-IVM: Combining In vitro Maturation after Oocyte Retrieval with Gynecological Surgery. J. Vis. Exp. (171), e61647, doi:10.3791/61647 (2021).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter