В этом исследовании был разработан новый метод экспрессии генов in planta и редактирования генов, опосредованный агробактериями , в бамбуке. Этот метод значительно повысил эффективность валидации функций генов у бамбука, что имеет значительные последствия для ускорения процесса размножения бамбука.
Для бамбука был разработан новый метод трансформации генов in planta , который позволяет избежать необходимости в длительных и трудоемких процессах индукции и регенерации каллуса. Этот метод включает в себя экспрессию генов, опосредованную агробактериями, через ранение и вакуум для саженцев бамбука. Он успешно продемонстрировал экспрессию экзогенных генов, таких как репортер RUBY и ген Cas9 , в листьях бамбука. Наибольшая эффективность трансформации для накопления беталаина в проростках RUBY была достигнута при использовании штамма GV3101, с процентом 85,2% после заражения. Несмотря на то, что чужеродная ДНК не интегрировалась в геном бамбука, метод оказался эффективным в экспрессии экзогенных генов. Кроме того, с использованием этого метода была разработана система редактирования генов, из которой был получен мутант in situ , сгенерированный отредактированным геном бамбуковой виолаксантиндеэпоксидазы (PeVDE) в листьях бамбука с частотой мутаций 17,33%. Мутация гена PeVDE привела к снижению значений нефотохимического тушения (NPQ) при сильном освещении, что может быть точно обнаружено флуориметром. Это делает отредактированный PeVDE потенциальным нативным репортером как для экзогенных, так и для эндогенных генов бамбука. С помощью репортера PeVDE был успешно отредактирован ген циннамоил-КоА-редуктазы с частотой мутаций 8,3%. Эта операция позволяет избежать процесса культивирования тканей или индукции каллуса, что является быстрым и эффективным для экспрессии экзогенных генов и эндогенного редактирования генов в бамбуке. Этот метод может повысить эффективность верификации функций генов и поможет выявить молекулярные механизмы ключевых метаболических путей в бамбуке.
Исследование функции генов бамбука имеет большие перспективы для углубленного понимания бамбука и раскрытия его потенциала для генетической модификации. Эффективный способ достижения этой цели может быть достигнут с помощью процесса агробактериальной инфекции в листьях бамбука, при котором фрагмент Т-ДНК, содержащий экзогенные гены, вводится в клетки, что впоследствии приводит к экспрессии генов в клетках листьев.
Бамбук является ценным и возобновляемым ресурсом с широким спектром применения в производстве, искусстве и исследованиях. Бамбук обладает превосходными свойствами древесины, такими как высокая механическая прочность, ударная вязкость, умеренная жесткость и гибкость1, который в настоящее время широко используется в различных бытовых и промышленных расходных материалах, включая зубные щетки, соломинки, пуговицы, одноразовую посуду, подземные трубопроводы и наполнители градирен для выработки тепловой энергии. Таким образом, разведение бамбука играет решающую роль в получении сортов бамбука с отличными свойствами древесины для замены пластика и сокращения использования пластика, защиты окружающей среды и борьбы с изменением климата, а также создания значительной экономической ценности.
Тем не менее, традиционное разведение бамбука сталкивается с проблемами из-за длительной стадии вегетативного роста и неопределенного периода цветения. Несмотря на то, что методы молекулярной селекции были разработаны и применены для селекции бамбука, процесс трансформации гена бамбука является трудоемким, трудоемким и сложным из-за процессов индукции и регенерации каллуса 2,3,4,5. Стабильная генетическая трансформация часто требует агробактериальных методов, которые включают процессы культивирования тканей, такие как индукция и регенерация каллуса. Однако бамбук обладает низкой способностью к регенерации каллусов, что значительно ограничивает применение стабильной генетической трансформации в бамбуке. После того, как Agrobacterium заражает растительные клетки, фрагмент Т-ДНК проникает в растительные клетки, при этом большинство фрагментов Т-ДНК остаются неинтегрированными в клетках, что приводит к транзиторной экспрессии. Лишь небольшая часть фрагментов Т-ДНК случайным образом интегрируется в ее хромосому, что приводит к стабильной экспрессии. Уровни транзиторной экспрессии показывают кривую накопления, которая может варьироваться для каждого гена, экспрессируемого из Т-ДНК, доставляемой агробактериями. В большинстве случаев самые высокие уровни экспрессии возникают через 3-4 дня после инфильтрации и быстро снижаются через 5-6 дней 6,7. Предыдущие исследования показали, что более 1/3 мутаций в генетически отредактированных растениях, полученных без давления отбора на резистентность, происходят от транзиторной экспрессии CRISPR/Cas9, в то время как оставшиеся менее 2/3 происходят от стабильной экспрессии после интеграции ДНК в геном8. Это указывает на то, что интеграция Т-ДНК в геном растения не является необходимой для редактирования генов. Более того, давление отбора на резистентность значительно ингибирует рост нетрансгенных клеток, непосредственно влияя на процесс регенерации инфицированных эксплантов. Таким образом, используя переходную экспрессию без давления отбора для резистентности у бамбука, можно добиться неинтегрированной экспрессии экзогенных генов и изучать функцию генов непосредственно в органах растений. Таким образом, можно разработать простой и экономящий время метод экспрессии и редактирования экзогенных генов в бамбуке9.
Разработанный метод экзогенной экспрессии генов и редактирования генов характеризуется простотой, экономичностью, отсутствием дорогостоящего оборудования и сложных процедур9. В этом методе бамбуковый эндогенный ген виолаксантиндеэпоксидазы (PeVDE) был использован в качестве репортера для экзогенной экспрессии генов без давления отбора. Это связано с тем, что отредактированный PeVDE в листьях бамбука снижает способность к фотозащите при сильном освещении и демонстрирует снижение значения нефотохимического гашения (NPQ), которое может быть обнаружено с помощью флуоресцентной визуализации хлорофилла. Чтобы продемонстрировать эффективность этого метода, с помощью этой системы был нокаутирован еще один эндогенный ген бамбука — ген циннамоил-КоА-редуктазы (PeCCR5)9 и успешно сгенерирован мутант этого гена. Этот метод может быть использован для функциональной характеристики генов, выполняющих функции в листьях бамбука. Путем гиперэкспрессии этих генов в листьях бамбука можно повысить уровень их экспрессии, а путем редактирования генов их экспрессия может быть снижена, что позволяет изучать уровни экспрессии генов, фенотипы листьев и состав продукта. Это обеспечивает более эффективный и осуществимый подход к исследованию функции генов в бамбуке. Этот метод может быть применен для функциональной характеристики генов, которые функционируют в листьях бамбука. Путем гиперэкспрессии этих генов в листьях бамбука можно повысить уровень их экспрессии, а путем редактирования генов их экспрессия может быть снижена, что позволяет изучать уровни экспрессии генов, фенотипы листьев и состав продукта. Кроме того, важно отметить, что из-за обширной полиплоидизации большинство коммерчески важных генов в геномах бамбука присутствуют в нескольких копиях, что приводит к генетической избыточности. Это создает проблему для выполнения мультиплексного редактирования генома в бамбуке. Прежде чем применять методы стабильной генетической трансформации или редактирования генов, крайне важно быстро проверить функции генов. При решении проблемы множественных копий генов один из подходов заключается в анализе профилей экспрессии транскриптома для выявления генов, которые активно экспрессируются на определенных стадиях. Кроме того, нацеливание на консервативные функциональные домены этих копий генов позволяет создавать общие целевые последовательности или включать несколько сайтов-мишеней в один и тот же вектор CRISPR/Cas9, обеспечивая одновременный нокаут этих генов. Это обеспечивает более эффективный и осуществимый подход к исследованию функции генов в бамбуке.
Этот метод значительно сокращает необходимое время по сравнению с традиционными методами генетической трансформации, которые обычно занимают 1-2 года, и обеспечивает транзиторную экспрессию экзогенных генов и редактирование генов эндогенных генов в течение 5 дней. Тем не менее, этот м?…
The authors have nothing to disclose.
Авторы выражают благодарность за финансовую поддержку Национальной программе ключевых исследований и разработок Китая (грант No 2021YFD2200502), Национальному фонду естественных наук Китая (грант No 31971736).
35S::RUBY | Addgene, United States | 160908 | Plamid construct |
Agrobacterium competent cells of GV3101, EHA105,LBA4404, and AGL1 | Biomed, China | BC304-01, BC303-01, BC301-01, and BC302-01 | For Agrobacterium infection |
CTAB | Sigma-Aldrich, United States | 57-09-0 | DNA extraction |
Imaging-PAM fluorometer | Walz, Effeltrich, Germany | Detect chlorophyll fluorescence of bamboo leaves | |
ImagingWin | Walz, Effeltrich, Germany | Software for Imaging-PAM fluorometer | |
Paq CI or Aar I | NEB, United States | R0745S | Incorporate the target sequence onto the CRISPR/Cas9 vector. |
PrimeSTAR Max DNA polymerase | Takara, Japan | R045Q | For gene cloning |
T4 DNA ligase | NEB, United States | M0202V | Incorporate the target sequence onto the CRISPR/Cas9 vector. |