Summary

猪自体移植肝细胞外细胞外细胞基因治疗

Published: November 04, 2018
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Summary

本方案旨在描述猪肝细胞分离和体外基因传递, 通过自体细胞移植治疗代谢疾病模型。虽然这种特殊的模式具有独特的优势, 有利于成功的治疗, 但应用是解决其他疾病和适应症的相关基础。

Abstract

基因治疗是治疗肝脏代谢许多先天错误的理想选择。在体内, 慢病毒载体已成功地用于治疗人类的许多造血疾病, 因为它们的使用提供了稳定的转基因表达, 因为载体能够融入宿主基因组。该方法表明肝细胞体外基因治疗在 i 型遗传性酪氨酸血症大型动物模型中的应用。这个过程包括 1) 从自体供体受者动物中分离原代肝细胞, 2) 通过肝细胞转导和慢病毒载体进行体内基因传递, 以及 3) 通过门静脉移植矫正肝细胞静脉注射。该方法的成功通常取决于有效和无菌地去除肝切除术, 仔细处理切除标本的存活肝细胞足以重新移植, 分离细胞的高百分比转导,无菌外科手术贯穿始终, 以防止感染。在这些步骤中的任何一个步骤的技术故障都将导致用于自体移植或捐献者受者动物感染的活转染肝细胞的低产量。为这种方法选择的人类1型遗传性酪氨酸血症 (ht-1) 的猪模型是唯一适合这种方法, 因为即使是一小部分矫正细胞的植入将导致肝脏的再繁殖与健康的细胞基于强大的相对于本土病肝细胞的选择性优势。虽然这种生长选择并不适用于所有适应症, 但这种方法是扩展到其他适应症的基础, 并允许操纵这种环境, 以解决肝脏内外的其他疾病, 同时控制接触病毒载体和机会的非目标毒性和致瘤性。

Introduction

肝脏代谢的先天错误是一个遗传性疾病的家族, 共同影响多达每800例活产 1.其中许多疾病是单一基因缺陷2 , 可以通过将受影响基因的单一纠正副本引入足够数量的肝细胞3来功能治愈。需要纠正的肝细胞的实际百分比因疾病4而异, 在很大程度上取决于其编码的蛋白质的性质, 例如, 排泄蛋白与细胞质的关系。在大多数情况下, 任何代谢疾病治疗的疗效都很容易通过循环中经常存在的生物标志物来检测。

ht-1 是由富马3-1 乙酸水拉酶 (fah)5的缺陷引起的肝脏代谢的先天错误, 是酪氨酸代谢最后一步。fah 缺乏导致肝脏中有毒代谢物的积累, 可导致急性肝功能衰竭和死亡, 或慢性形式的疾病可导致肝硬化和肝细胞癌。本病通过 2-(2-硝基-4-四氟甲基苯甲酰)-1, 3-环己二酮 (ntbc) 的管理进行临床管理, 这是一种小分子抑制剂的一种酶上游 fah 在酪氨酸代谢。这种疾病为测试基因治疗方法提供了一个理想的环境, 因为即使是少数肝细胞的成功矫正, 最终也会导致整个肝脏的重新繁殖, 在大小动物模型中都有修正的细胞7.,8. 出现这种情况的原因是, 由于毒性代谢物在未纠正的细胞中积累, 经校正的细胞具有深刻的生存优势。未矫正肝细胞的丢失允许与肝脏再生能力一致的修正肝细胞选择性扩张。治疗后, 可以很容易地测量移植后循环酪氨酸和琥珀酰丙酮水平的下降。

为了证明该程序的侵入性, 其中包括部分肝切除术, 这种方法的目标必须是持久的治疗。因此, 复制不称职的慢病毒载体被使用, 因为他们将稳定地融入肝细胞基因组9。确保随着肝脏的生长和扩张, 将修正后的基因传递给所有的子细胞, 以取代未矫正细胞的快速丢失。这是有利的腺病毒相关 (aav) 载体, 主要存在作为会代体, 只能通过一个单一的子细胞在有丝分裂10 , 从而失去任何效果的治疗在几个星期内。

尽管越来越多的文献支持慢病毒11的安全性, 但通过将宿主细胞的转导限制在受控的体外环境中, 缓解了人们对遗传毒性事件的担忧。自由载体从来没有系统地引入到宿主时, 这种方法进行, 限制暴露于肝细胞, 将通过自体移植通过门静脉重新引入。

本报告介绍了用于分离肝细胞的手术和外程序的方法, 用于体内基因治疗和随后的自体移植 12治疗 ht-1 猪8。整个过程包括: 1) 部分肝切除术, 作为肝细胞的来源和生长刺激宿主的肝脏, 2) 肝细胞从切除的肝脏, 然后进行体外基因校正, 最后 3) 重新引入修正肝细胞回到宿主。所述方法适用于所有具有一定修饰的大型动物模型, 但只有缺乏 fah 的猪13将具有修正肝细胞的选择性环境的优势。

Protocol

所有动物程序都是按照机构准则进行的, 并在研究行为之前得到机构动物护理和使用委员会 (iacuc) 的审查和批准。这里描述的程序是在3个月以下被认为健康和适合手术的男性和女性大型白色农场猪 (50% landrace\ 50% 大白遗传背景) 身上进行的。 除非机构兽医护理人员认为动物不兼容, 否则动物是在社会中居住的。 动物每天吃两次适当水平的食物, 每天至少由护理人员观察一次临床体征。 <p class="jov…

Representative Results

肝脏切除和自体移植在图 1中得到了示意图的表达。在5头接受肝切除术的有代表性的猪中, 大多数猪的产量为 gt;1 x10 9个肝细胞, 其生存能力约为 80% (表 2), 为包括基因在内的任何类型的理想操作提供了大量的细胞治疗。随后培养5头猪的未移植部分准备好的肝细胞表现出良好的生存能力和粘附力, 典型的肝细胞形态在转导和初始电?…

Discussion

本报告介绍了一种治疗猪 ht-1 模型的体外自体基因治疗方法。它包括部分肝切除术, 其次是体外肝细胞分离和分离肝细胞与伦蒂病毒携带纠正转基因。经修正的自体肝细胞然后通过门静脉8移植回 fah 缺乏的动物。虽然所述方法适用于所有经过一定修改的大型动物模型, 但缺乏 fah 的猪具有对校正细胞13,15具有高度选择性的独…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

作者感谢 duane meixner 在执行门静脉静脉注射方面的专业知识, steve krage、joanne pederson 和 lori hillin 在外科手术期间的支持。这项工作得到了明尼苏达州儿童医院基金会和明尼苏达州再生医学的支持。r. d. h. 的资金来自 nih k01 dk106056 奖和梅奥再生医学职业发展中心奖。

Materials

2-(2-nitro-4-trifluoromethylbenzoyl)-1,3-cyclohexanedione (NTBC) Yecuris 20-0027
12 mm Trocar Covidien B12STS
5 mm Trocar Covidien B5SHF
Endo Surgical Stapler 60 Covidien EGIA60AMT
Endo Surgical Stapler 45 Covidien EGIA45AVM
Endo Surgical Stapler 30 Covidien SIG30AVM
Endo catch bag Covidien 173050G
0 PDS Ethicon Z340H
2-0 Vicryl Ethicon J459H
4-0 Vicryl Ethicon J426H
Dermabond Ethicon DNX12 Sterile Dressing
Williams’-E Powder  Gibco ME16060P1
NaHCO3  Sigma Aldrich S8875-1KG
HEPES  Fisher BP310-1
Pen/Strep  Gibco 15140-122
Fetal Bovine Serum Corning 35-011-CV
NaCl (g/L) Sigma Aldrich S1679-1KG
KCl (g/L) Sigma Aldrich P3911-500G
EGTA (g/L) Oakwood Chemical 45172
N-acetyl-L-cysteine Oakwood Chemical 3631
(N-A-C, g/L) Sigma Aldrich A9165-100G
CaCl2 2H2O (g/L) Sigma Aldrich 223506-500G
Collagenase D (mg/mL) Crescent Chemical 17456.2
Dulbecco's modified eagle medium (DMEM) Corning 15-013-CV
Dexamethasone Fresenius Kabi NDC6337
Epidermal Growth Factor Gibco PHG0314

Referências

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Citar este artigo
Kaiser, R. A., Mao, S. A., Glorioso, J., Amiot, B., Nicolas, C. T., Allen, K. L., Du, Z., VanLith, C. J., Hickey, R. D., Nyberg, S. L., Lillegard, J. B. Lentiviral Vector-mediated Gene Therapy of Hepatocytes Ex Vivo for Autologous Transplantation in Swine. J. Vis. Exp. (141), e58399, doi:10.3791/58399 (2018).

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