Summary

Проектирование биореактора для улучшения сбора данных и моделирования пропускной способности инженерных тканей сердца

Published: June 02, 2023
doi:

Summary

Трехмерные сердечные ткани, биоинженерные с использованием кардиомиоцитов, полученных из стволовых клеток, стали многообещающими моделями для изучения здорового и больного миокарда человека in vitro , повторяя ключевые аспекты нативной сердечной ниши. В данной статье описывается протокол изготовления и анализа высокосодержательных инженерных тканей сердца, полученных из индуцированных плюрипотентных кардиомиоцитов, полученных из стволовых клеток человека.

Abstract

Сердечная недостаточность остается основной причиной смерти во всем мире, что создает острую потребность в более совершенных доклинических моделях человеческого сердца. Тканевая инженерия имеет решающее значение для фундаментальных научных исследований в области сердца; Культура клеток человека in vitro устраняет межвидовые различия животных моделей, в то время как более тканеподобная 3D-среда (например, с внеклеточным матриксом и гетероцеллюлярным сопряжением) моделирует условия in vivo в большей степени, чем традиционная двумерная культура на пластиковых чашках Петри. Однако для каждой модельной системы требуется специализированное оборудование, например, специально разработанные биореакторы и устройства функциональной оценки. Кроме того, эти протоколы часто являются сложными, трудоемкими и страдают от отказа маленьких, нежных тканей.

В данной работе описывается процесс создания надежной системы моделирования инженерной ткани сердца человека (hECT) с использованием индуцированных плюрипотентных кардиомиоцитов, полученных из стволовых клеток, для лонгитюдного измерения функции тканей. Шесть hECT с линейной геометрией полосы культивируются параллельно, при этом каждый hECT подвешивается к паре чувствительных к силе стойкам из полидиметилсилоксана (PDMS), прикрепленных к стойкам PDMS. Каждый пост увенчан черным трекером стабильных постов PDMS (SPoT), новой функцией, которая повышает простоту использования, пропускную способность, удержание тканей и качество данных. Форма позволяет надежно оптически отслеживать прогибы столбов, обеспечивая улучшенную трассировку силы подергивания с абсолютным активным и пассивным натяжением. Геометрия колпачка исключает разрушение тканей из-за соскальзывания hECT со стоек, а поскольку они включают в себя второй этап после изготовления стойки PDMS, SPoT могут быть добавлены к существующим конструкциям на основе стоек PDMS без существенных изменений в процессе изготовления биореактора.

Система используется для демонстрации важности измерения функции hECT при физиологических температурах и показывает стабильную функцию тканей во время сбора данных. Таким образом, мы описываем современную модельную систему, которая воспроизводит ключевые физиологические условия для повышения биоточности, эффективности и строгости инженерных сердечных тканей для применения in vitro .

Introduction

Инженерные модели сердечной ткани имеют различную геометрию и конфигурацию для повторения различных аспектов нативной сердечной ниши, которые трудно получить с помощью традиционной двумерной клеточной культуры. Одной из наиболее распространенных конфигураций является линейная тканевая полоса с гибкими анкерами на каждом конце, чтобы вызвать самосборку ткани и обеспечить ткани определенный предварительный натяг и считывание результирующих сил подергивания 1,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11, 12,13,14,15,16,17,18,19,20,21
,22,23,24,25,26,27. Создаваемая сила может быть надежно определена с помощью оптического отслеживания укорочения ткани и использования теории упругих пучков для расчета силы на основе измеренных прогибов и постоянной пружины анкеров 1,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11, 12,13,14,15,16,17,18,19,20,
21,22,25,26,28.

Тем не менее, инженерия сердечных тканей все еще является развивающейся областью, и некоторые проблемы остаются. Для каждой модели системы 10,29,30,31 требуется специализированное оборудование, такое как биореакторы, изготовленные по индивидуальному заказу и устройства функциональной оценки. Размер и сложность микроокружения этих конструкций часто ограничены низкой пропускной способностью из-за трудоемких протоколов, большого количества клеток и хрупкости тканей. Чтобы решить эту проблему, некоторые группы обратились к изготовлению микротканей, содержащих только сотни или тысячи клеток, чтобы облегчить высокопроизводительные анализы, которые полезны для разработки лекарств. Однако эта уменьшенная шкала усложняет точную оценку функции12, устраняет ключевые аспекты нативной сердечной ниши (такие как градиенты диффузии питательных веществ/кислорода и сложная архитектура36) и ограничивает количество материала, доступного для последующего молекулярного и структурного анализа (часто требующего объединения тканей). В таблице 1 обобщены некоторые конфигурации линейных моделей тканевых полос в литературе 1,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15, 16,17,18,19,20,
21,22,23,24,25,26,37,38,39,40.

Группа Количество клеток в ткани Количество салфеток в пластине Формат пластины Функция привязки Функциональный метод сбора данных Общая медиа-ванна? Функциональная мера-
В то же время, если вы не знаете, как это сделать, вы можете
Йошида (ECT)38 4 миллиона 6 модифицированная 6-луночная пластина* Преобразователь силы Прямое измерение силы Нет Нет
Чан (чЭСК-КМ-ЭСТ)26 310 К 6 Изготовленная на заказ тарелка с 6 лунками Посты PDMS Прямое измерение силы да Нет
Файнберг (dyn-EHT)16 1,5 млн чел. 6 Изготовленная на заказ тарелка с 6 лунками Провод PDMS Форма ткани Нет да
РАДИСИК (BioWire)39, 40 110 К 8 полимерная проволока Форма проволоки да да
Коста (однократная чЭСТ)1, 2 1-2млн 4** Чашка Петри 10 см** Посты PDMS Оптическое отклонение (слежение за краем/объектом) да да
Коста (мульти-чЭСТ)3–9 500 К-1 миллион 6 Чашка Петри 6 см Посты PDMS Оптическое отклонение (слежение за краем/объектом) да да
Коста (мульти-ЭСТ с СПоТ) 1 миллион 6 Чашка Петри 6 см Столбы PDMS с черными шапками оптическое отклонение (слежение за объектом) да да
Passier (EHT)17 245 К 36 12-луночная пластина Столбы PDMS с черными шапками оптическое отклонение (слежение за объектом) да да
Вуньяк-Новакович13, 18 1 миллион 12 Чашка Петри 6 см Столбы PDMS с заглушками оптическое отклонение (обнаружение края) да да
Вуньяк-Новакович (MilliPillar)14 550 К 6 Изготовленная на заказ тарелка с 6 лунками Столбы PDMS с заглушками оптическое отклонение (слежение за объектом); Визуализация кальция Нет да
Эшенхаген (EHT)10, 19–21 1 миллион 12 12-луночная пластина Столбы PDMS с заглушками оптическое отклонение (определение края постпрогиба); Визуализация кальция Нет да
Зандстра (CaMiRi)22 25-150 К 96 96-луночная пластина Посты PDMS с хуками оптическое отклонение (обнаружение края) Нет да
Марри23, 24 900 К 24 24-луночный планшет Стойки PDMS с заглушками, встроенный магнит Магнитный датчик Нет да
Рейх (мкТУГ)11, 12, 25 неопределенный 156 Блюдо на 156 лунок Стойки PDMS с заглушками, встроенный магнит оптическое слежение (флуоресцентный шарик) да да

Таблица 1: Характеристики некоторых линейно-инженерных моделей сердечной ткани в литературе. Линейно-инженерные модели сердечной ткани различаются по размеру, пропускной способности, конструкции элементов закрепления и облегчению использования ванн с общей средой, а также по требованиям к отдельной системе мышечных ванн для функциональной характеристики. * Исследователи использовали коммерчески доступную инженерную тканевую систему, основанную на размерах стандартной 6-луночной пластины. ** Модульная система, в которой однотканевые биореакторы крепятся к любой пластиковой чашке для культур в нужном количестве и месте.

В этой статье описывается новейший протокол для создания нашей установленной модели линейной инженерной сердечной ткани человека (hECT)1,2,3,4,5,6,7,8,9,15,27 методы оценки сократительной функции hECT. Каждый многотканевой биореактор вмещает до шести hECT в общей ванне среды и состоит из двух «стоек» из силиконового эластомера полидиметилсилоксана (PDMS), установленного на жесткой раме из полисульфона. Каждая стойка PDMS содержит шесть гибких интегрированных стоек с датчиком силы диаметром 0,5 мм и длиной 3,25 мм, а вместе две стойки обеспечивают шесть пар стоек, каждая из которых вмещает один hECT. Инверсия биореактора помогает преодолеть любые препятствия для визуализации hECT снизу из-за конденсации воды из питательной среды или искажений от мениска границы раздела воздух-жидкость. Каждое сжатие hECT вызывает отклонение встроенных концевых стоек, и оптическое измерение сигнала отклонения обрабатывается в трассировку зависимости силы от времени, представляющую сократительную функцию hECT 1,2,3,4,5,6,7,8,9,15,27 . По сравнению с однотканевыми биореакторами, обычно используемыми для тканей такого размера, многотканевая конструкция повышает производительность эксперимента и позволяет изучать паракринную передачу сигналов между соседними тканями потенциально различного клеточного состава. Эта система была подтверждена в опубликованных исследованиях, описывающих применение в моделировании заболеваний 4,8, паракринной сигнализации 6,7, гетероклеточной культуре 5,9 и терапевтическом скрининге 7,9.

В этой системе hECT имеют длину около 6 мм и диаметр 0,5 мм, что обеспечивает надежное оптическое отслеживание измерений силы с низким уровнем шума. Кроме того, аспекты сложности тканей, такие как градиенты диффузии и клеточная организация, уравновешиваются управляемой потребностью в 1 миллион клеток на ткань. При использовании стандартной технологии ПЗС-камеры силы до 1 мкН (что соответствует менее 5 мкм после отклонения) генерируют четкий сигнал, гарантируя, что даже очень слабая сократительная функция, наблюдаемая в некоторых моделях заболевания hECT, может быть точно измерена. Это также облегчает детальный анализ кривой силы подергивания, что позволяет проводить анализ с высоким содержанием до 16 показателей сократимости41, включая развиваемую силу, скорости сокращения (+dF/dt) и расслабления (−dF/dt), а также вариабельность частоты биений.

Этот протокол начинается с инструкций по изготовлению компонентов биореактора. Особое внимание уделяется шагам по максимизации выхода hECT, снижению технической вариабельности функции тканей и оптимизации качества и глубины оценки тканей. В большинстве исследований в области инженерии сердечной ткани не сообщается о темпах потери тканей во время изготовления и долгосрочного тестирования, хотя это хорошо известная проблема в этой области и снижает пропускную способность иэффективность исследований. Методы тканевой инженерии, описанные здесь, совершенствовались на протяжении многих лет, чтобы обеспечить удержание всех hECT в большинстве биореакторов (независимо от того, как изготовлены стойки PDMS). Тем не менее, даже потеря 5-20% тканей может существенно повлиять на статистическую мощность, особенно в небольших экспериментах, ограниченных количеством доступных кардиомиоцитов (например, из-за проблем с дифференцировкой с некоторыми больными клеточнымилиниями или из-за высокой стоимости коммерчески закупаемых кардиомиоцитов) или условиями лечения (например, ограниченная доступность или высокая стоимость различных лекарственных препаратов).

В этом протоколе описывается изготовление стабильных пост-трекеров (SPoT), новой функции стоек PDMS, которые функционируют как колпачки на концах постов с датчиком силы, на которых размещаются hECT27. Показано, как геометрия колпачка значительно снижает потери hECT при падении или отрыве от стоек, тем самым открывая новые возможности для культивирования hECT с большим разнообразием жесткостей и напряжений, которые сложно культивировать на незакрытых стойках. Кроме того, SPoT обеспечивают высококонтрастный объект для улучшения оптического отслеживания сокращения hECT за счет последовательной и четко определенной формы27. Далее следует описание культивирования индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека (ИПСК) и дифференцировки кардиомиоцитов на основе ранее опубликованных протоколов 3,42,43, а также объяснение производства, культивирования и функциональных измерений hECT.

В этой статье также рассматривается необходимость измерения функции тканей при физиологической температуре. В миокарде человека (как плода, так и взрослых здоровых и больных тканей), а также в сердечной ткани широкого спектра видов животных (включая крыс, кошек, мышей, хорьков и кроликов)44,45 наблюдается заметное увеличение частотно-согласованной силы подергивания при температурах 28–32 °C по сравнению с физиологической температурой — явление, известное как гипотермическая инотропия45, 46. См. Тем не менее, влияние температуры на функцию искусственной ткани миокарда остается недостаточно изученным. Многие современные модели сердечной ткани, представленные в литературе, предназначены для функциональной оценки при 37 °C, чтобы приблизиться к физиологическим условиям 13,14,37. Однако, насколько нам известно, температурно-зависимое влияние на силу, генерируемую инженерными тканями сердца, систематически не исследовалось. В этом протоколе описывается конструкция электрода с движущейся частотой, которая сводит к минимуму потери тепла во время испытаний, а также позволяет включить изолированный нагревательный элемент в установку для функциональных измерений, который может поддерживать hECT при физиологической температуре без ущерба для стерильности27. Затем мы сообщаем о некоторых наблюдаемых эффектах температуры на функцию hECT, в том числе на развиваемую силу, частоту спонтанного биения, +dF/dt и −dF/dt. В целом, в этой статье представлены детали, необходимые для производства этой многотканевой силочувствительной биореакторной системы для изготовления инженерных тканей сердца человека и оценки их сократительной функции, а также представлен набор данных, обеспечивающих основу для сравнения измерений при комнатной температуре и при 37 °C27.

Protocol

В этом протоколе использовалась обезличенная линия ИПСК SkiPS 31.3 (первоначально перепрограммированная с использованием дермальных фибробластов здорового 45-летнего мужчины)47 и, таким образом, он был освобожден от специального одобрения Институционального наблюдательного ?…

Representative Results

В соответствии с вышеприведенным протоколом, кардиомиоциты были получены из здоровой линии ИПСК, ранее использовавшейся нашей группой 9,15, и изготовлены в hECT через 8-61 день в культуре. На рисунке 9A показаны репрезентативные изображения hECT …

Discussion

В литературе опубликовано множество линейно-инженерных моделей сердечной ткани, некоторые из которых описаны в таблице 1. Некоторые модели предполагают непосредственное измерение силы в тканях, но они, как правило, требуют переноса конструкции в отдельную мышечную ванну<sup clas…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы выражают признательность доктору Тимоти Кэшману за предыдущую работу над этим методом. Это исследование было поддержано финансированием Национальных институтов здравоохранения (NIH) (R01-HL132226 и K01 HL133424) и Международной программы передового опыта Фонда Ледюка (CURE-PLaN).

Materials

0.25 mm diamete 304 Stainless Steel Wire McMaster Carr 6517K61 
0.25% trypsin-EDTA Gibco 25200056
1.7 mL Microtubes Axygen MCT-175-C
10 cm dishes (20 mm tall) Corning 353003
10 mL Serological Pipette Drummond 6-000-010
10 N NaOH Fisher Scientific SS225-1 dilute 1:10 in sterile distilled water
10X Modified Eagle Medium Sigma Aldrich M0275
20 – 200 μL Micropipette Eppendorf 3123000055
200 μL MicroPipette Tips VWR 76322-150
5 mL Serological Pipette Drummond 6-000-005
50 mL Conical Centrifuge Tubes Falcon 352070
6 cm Petri Dish Corning 353002
6 Watt LED Dual Gooseneck Illuminator AmScope  LED-6W 
6-Well Plates Corning 353046
90 degree angle mirror Edmund Optics 45-594
Acrylic bonding glue SCIGRIP #4
Adjustable 10 cm x 10 cm jack Fisher Scientific 14-673-50
Aluminum 6061 McMaster Carr 9008K82
A-Plan 10X Objective Lens ZEISS 1020-863
Autoclave Bags Propper 21002
B-27 supplement ThermoFisher 17504044
B-27 supplement (without insulin) ThermoFisher A1895601
Benchtop Centrifuge Eppendorf 5810 R
Black ABS Ultimaker 2.85 mm wide
Bovine Collagen I Gibco A1064401
CHIR99021 Tocris 4423
Class II Biosafety Cabinet Labconco 3430009
Clear Acrylic Sheeting estreetplastics 1002502436 6.25 mm thick
CNC Vertical Mill Haas VF-1
Conductive Graphite Bars McMaster Carr 1763T33
Dissection microscope Olympus SZ61
Dulbecco's Modified Eagle Medium/Ham's F-12 Nutrient Mix ThermoFisher 11330032
Ethanol Fisher Scientific A4094 Dilute to 70% in water
EVE Automated Cell counter NanoEntek E1000
EVE Cell Counting Slide NanoEntek EVS-050
Fetal Bovine Serum Life Technologies 10438026
Fine Curved Forceps Fine Science Tools 11253-25
Forma Series II Water Jacketed CO2 Incubator Thermo Electron Corporation 3110 AKA "incubator". With HEPA class 100 filter
Fusion360 software Autodesk AKA "CAD software"
Glass Hemocytometer Reichert 1475 0.1 mm deep
HEPES Sigma Aldrich H3784
hESC qualified matrigel Corning 354277 AKA "basement membrane matrix". Store in frozen aliquots
High Speed CCD Camera PixelLINK P7410
Inverted Microscope Carl Zeiss Werk Axiovert 40 CFL 10X phase contrast objective
IWR-1 Selleck Chem S7086
LabView Software National Instruments 2016
Laminar flow clean bench NuAire NU-201-330 necessary for hECT functional analysis
Laptop AsusTek Strix Intel Core i& processor ,CPU 2.8GHz, 16GB RAM
Laser Cutting Machine Epilog Helix 24
Magnification headset ExcelBlades 70020 Recommended for steps requiring fine manipulations
Matlab Mathworks Version 2019b or later AKA "data analysis software"
Micro Vannas Scissors, 3 mm blade WPI Instruments 501839
Microscope Boom Stand Olympus SZ2-STU1
Penicillin-Streptomycin stock solution ThermoFisher 15140122 10,000 IU/ml penicillin; 10,000 μg/ml streptomycin
Phosphate-buffered saline without divalent cations Sigma Aldrich P3813 Diluted in distilled water to 1X and 10X concentrations
Pipette Controller Drummond 4-000-100
PixelLINK Capture OEM PixelLINK 10.2.1.6 AKA "Camera Software"
Polysulfone McMaster Carr 86735K73 translucent amber color
Polytetrafluoroethylene (PTFE) McMaster Carr 8545K176  Black, molded
ReLeSR Stem Cell Technologies 5872 AKA "iPSC dissociation media"
Rosewell Park Memorial Institute 1640 Media ThermoFisher 11875135
Silicone Sheeting SMI manufacturing glossy, 0.02 in thickness, durometer 40
Size 10/0 Blue, Green, Red, and Yellow Glass Seed Beads Michael's color should withstand autoclaving
Spatula Fisher Scientific 14-373 used for mixing PDMS
Square Pulse Stimulator  Astro-Med / Grass Technologies S88X
Stainless Steel Razoblades GEM 62-0179-CTN preferred over non-stainless steel due to lower hardness
Stemflex ThermoFisher A3349401 AKA "iPSC culture media"
Sterile distilled water ThermoFisher 5230
Sylgard 170 -  Silicone Elastomer Encapsulant Black 0.9 kg Kit Dow DOWSIL 170 2LB KIT AKA black Polydimethylsiloxane (black PDMS)
Sylgard 184 – Silicone Elastomer Clear 1 lb Kit Dow DC 184 SYLGARD 0.5KG 1.1LB KIT AKA Polydimethylsiloxane (PDMS)
Temperature-controlled heated stage Okolab H401-HG-SMU Set height to 10 cm
Thermoplastic 3D printer Ultimaker Ultimaker 3
Thiazovivin Selleck Chem S1459
Trypan Blue NanoEntek EBT-001
Vacuum Chamber Bel-Art Parts F42027-0000
Variable Speed Mini Band Saw Micro-Mark 82203
Variable Speed Miniature Drill Press Micro-Mark 82959
Vibration Isolation Table Labconco 3618000
Weighing Boats VWR 10803-140
Talon Cylinder Bench Clamp VWR 97035-528 AKA screw clamp

Referências

  1. Serrao, G. W., et al. Myocyte-depleted engineered cardiac tissues support therapeutic potential of mesenchymal stem cells. Tissue Engineering. Part A. 18 (13-14), 1322-1333 (2012).
  2. Turnbull, I. C., et al. Advancing functional engineered cardiac tissues toward a preclinical model of human myocardium. FASEB Journal. 28 (2), 644-654 (2014).
  3. Cashman, T. J., et al. Construction of defined human engineered cardiac tissues to study mechanisms of cardiac cell therapy. Journal of Visualized Experiments. (109), e53447 (2016).
  4. Stillitano, F., et al. Genomic correction of familial cardiomyopathy in human engineered cardiac tissues. European Heart Journal. 37 (43), 3282-3284 (2016).
  5. Mayourian, J., et al. Experimental and computational insight into human mesenchymal stem cell paracrine signaling and heterocellular coupling effects on cardiac contractility and arrhythmogenicity. Circulation Research. 121 (4), 411-423 (2017).
  6. Mayourian, J., et al. therapeutic paracrine modulation of cardiac excitation-contraction coupling. Circulation Research. 122 (1), 167-183 (2018).
  7. Mayourian, J., et al. Exosomal microRNA-21-5p mediates mesenchymal stem cell paracrine effects on human cardiac tissue contractility. Circulation Research. 7 (122), 933-944 (2018).
  8. Turnbull, I. C., et al. Cardiac tissue engineering models of inherited and acquired cardiomyopathies. Methods in Molecular Biology. 1816, 145-159 (2018).
  9. Murphy, J. F., et al. Adult human cardiac stem cell supplementation effectively increases contractile function and maturation in human engineered cardiac tissues. Stem Cell Research & Therapy. 10 (1), 373 (2019).
  10. Breckwoldt, K., et al. Differentiation of cardiomyocytes and generation of human engineered heart tissue. Nature Protocols. 12 (6), 1177-1197 (2017).
  11. Huang, C. Y., et al. Enhancement of human iPSC-derived cardiomyocyte maturation by chemical conditioning in a 3D environment. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 138, 1-11 (2020).
  12. Ramade, A., Legant, W. R., Picart, C., Chen, C. S., Boudou, T. Microfabrication of a platform to measure and manipulate the mechanics of engineered microtissues. Methods in Cell Biology. 121, 191-211 (2014).
  13. Ronaldson-Bouchard, K., et al. Engineering of human cardiac muscle electromechanically matured to an adult-like phenotype. Nature Protocols. 14 (10), 2781-2817 (2019).
  14. Tamargo, M. A., et al. milliPillar: A platform for the generation and real-time assessment of human engineered cardiac tissues. ACS Biomaterials Science & Engineering. 7 (11), 5215-5229 (2021).
  15. Ceholski, D. K., et al. CXCR4 and CXCR7 play distinct roles in cardiac lineage specification and pharmacologic β-adrenergic response. Stem Cell Research. 23, 77-86 (2017).
  16. Bliley, J. M., et al. Dynamic loading of human engineered heart tissue enhances contractile function and drives a desmosome-linked disease phenotype. Science Translational Medicine. 13 (603), (2021).
  17. Ribeiro, M. C., et al. A new versatile platform for assessment of improved cardiac performance in human-engineered heart tissues. Journal of Personalized Medicine. 12 (2), 214 (2022).
  18. Ronaldson-Bouchard, K., et al. Advanced maturation of human cardiac tissue grown from pluripotent stem cells. Nature. 556 (7700), 239-243 (2018).
  19. Mannhardt, I., et al. Human engineered heart tissue: Analysis of contractile force. Stem Cell Reports. 7 (1), 29-42 (2016).
  20. Mannhardt, I., et al. Blinded contractility analysis in hiPSC-cardiomyocytes in engineered heart tissue format: Comparison with human atrial trabeculae. Toxicological Sciences. 158 (1), 164-175 (2017).
  21. Saleem, U., et al. Force and calcium transients analysis in human engineered heart tissues reveals positive force-frequency relation at physiological frequency. Stem Cell Reports. 14 (2), 312-324 (2020).
  22. Thavandiran, N., et al. Functional arrays of human pluripotent stem cell-derived cardiac microtissues. Scientific Reports. 10 (1), 6919 (2020).
  23. Bielawski, K. S., Leonard, A., Bhandari, S., Murry, C. E., Sniadecki, N. J. Real-time force and frequency analysis of engineered human heart tissue derived from induced pluripotent stem cells using magnetic sensing. Tissue Engineering. Part C, Methods. 22 (10), 932-940 (2016).
  24. Leonard, A., et al. Afterload promotes maturation of human induced pluripotent stem cell derived cardiomyocytes in engineered heart tissues. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 118, 147-158 (2018).
  25. Bose, P., Huang, C. Y., Eyckmans, J., Chen, C. S., Reich, D. H. Fabrication and mechanical properties measurements of 3D microtissues for the study of cell-matrix interactions. Methods in Molecular Biology. 1722, 303-328 (2018).
  26. Zhang, W., et al. Maturation of human embryonic stem cell-derived cardiomyocytes (hESC-CMs) in 3D collagen matrix: Effects of niche cell supplementation and mechanical stimulation. Acta Biomaterialia. 49, 204-217 (2017).
  27. van Neste, C. Advances in bioreactor design and multi-dimensional analysis for assessing maturation phenotype of human engineered cardiac tissues. PhD thesis. Icahn School of Medicine at Mount Sinai. , (2022).
  28. Sala, L., et al. MUSCLEMOTION: A versatile open software tool to quantify cardiomyocyte and cardiac muscle contraction in vitro and in vivo. Circulation Research. 122 (3), e5-e16 (2018).
  29. Salazar, B. H., Cashion, A. T., Dennis, R. G., Birla, R. K. Development of a cyclic strain bioreactor for mechanical enhancement and assessment of bioengineered myocardial constructs. Cardiovascular Engineering and Technology. 6 (4), 533-545 (2015).
  30. Putame, G., et al. Application of 3D printing technology for design and manufacturing of customized components for a mechanical stretching bioreactor. Journal of Healthcare Engineering. 2019, 3957931 (2019).
  31. Akintewe, O. O., Roberts, E. G., Rim, N. -. G., Ferguson, M. A. H., Wong, J. Y. Design approaches to myocardial and vascular tissue engineering. Annual Review of Biomedical Engineering. 19, 389-414 (2017).
  32. Chen, G., et al. Phospholamban as a crucial determinant of the inotropic response of human pluripotent stem cell-derived ventricular cardiomyocytes and engineered 3-dimensional tissue constructs. Circulation. Arrhythmia and Electrophysiology. 8 (1), 193-202 (2015).
  33. Giacomelli, E., et al. Human-iPSC-derived cardiac stromal cells enhance maturation in 3D cardiac microtissues and reveal non-cardiomyocyte contributions to heart disease. Cell Stem Cell. 26 (6), 862-879 (2020).
  34. Beauchamp, P., et al. 3D co-culture of hiPSC-derived cardiomyocytes with cardiac fibroblasts improves tissue-like features of cardiac spheroids. Frontiers in Molecular Biosciences. 7, 14 (2020).
  35. Campostrini, G., et al. functional analysis and applications of isogenic three-dimensional self-aggregating cardiac microtissues from human pluripotent stem cells. Nature Protocols. 16 (4), 2213-2256 (2021).
  36. Swiatlowska, P., Iskratsch, T. Tools for studying and modulating (cardiac muscle) cell mechanics and mechanosensing across the scales. Biophysical Reviews. 13 (5), 611-623 (2021).
  37. Zhao, Y., et al. Engineering microenvironment for human cardiac tissue assembly in heart-on-a-chip platform. Matrix Biology. 85-86, 189-204 (2020).
  38. Fujiwara, Y., Deguchi, K., Miki, K., Nishimoto, T., Yoshida, Y. A method for contraction force measurement of hiPSC-derived engineered cardiac tissues. Methods in Molecular Biology. 2320, 171-180 (2021).
  39. Wang, E. Y., et al. Biowire model of interstitial and focal cardiac fibrosis. ACS Central Science. 5 (7), 1146-1158 (2019).
  40. Zhao, Y., et al. A platform for generation of chamber-specific cardiac tissues and disease modeling. Cell. 176 (4), 913-927 (2019).
  41. Lee, E. K., et al. Machine learning of human pluripotent stem cell-derived engineered cardiac tissue contractility for automated drug classification. Stem Cell Reports. 9 (5), 1560-1572 (2017).
  42. Batalov, I., Feinberg, A. W. Differentiation of cardiomyocytes from human pluripotent stem cells using monolayer culture. Biomarker Insights. 10, 71-76 (2015).
  43. Lian, X., et al. Robust cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells via temporal modulation of canonical Wnt signaling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (27), E1848-E1857 (2012).
  44. Penefsky, Z. J., Buckley, N. M., Litwak, R. S. Effect of temperature and calcium on force-frequency relationships in mammalian ventricular myocardium. Pflugers Archiv. 332 (4), 271-282 (1972).
  45. Bers, D. M. . Excitation-Contraction Coupling and Cardiac Contractile Force. , (2001).
  46. Kanaya, N., Gable, B., Wickley, P. J., Murray, P. A., Damron, D. S. Experimental conditions are important determinants of cardiac inotropic effects of propofol. Anesthesiology. 103 (5), 1026-1034 (2005).
  47. Galende, E., et al. Amniotic fluid cells are more efficiently reprogrammed to pluripotency than adult cells. Cellular Reprogramming. 12 (2), 117-125 (2010).
  48. Wacker-Gussmann, A., Strasburger, J. F., Cuneo, B. F., Wakai, R. T. Diagnosis and treatment of fetal arrhythmia. American Journal of Perinatology. 31 (7), 617-628 (2014).
  49. Federmann, M., Hess, O. M. Differentiation between systolic and diastolic dysfunction. European Heart Journal. 15, 2-6 (1994).
  50. Knight, W. E., et al. Maturation of pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes enables modeling of human hypertrophic cardiomyopathy. Stem Cell Reports. 16 (3), 519-533 (2021).
  51. Ma, Z., et al. Contractile deficits in engineered cardiac microtissues as a result of MYBPC3 deficiency and mechanical overload. Nature Biomedical Engineering. 2 (12), 955-967 (2018).
  52. de Lange, W. J., et al. Human iPSC-engineered cardiac tissue platform faithfully models important cardiac physiology. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 320 (4), H1670-H1686 (2021).
  53. Hiranandani, N., Varian, K. D., Monasky, M. M., Janssen, P. M. L. Frequency-dependent contractile response of isolated cardiac trabeculae under hypo-, normo-, and hyperthermic conditions. Journal of Applied Physiology. 100 (5), 1727-1732 (2006).
  54. Puglisi, J. L., Bassani, R. A., Bassani, J. W., Amin, J. N., Bers, D. M. Temperature and relative contributions of Ca transport systems in cardiac myocyte relaxation. The American Journal of Physiology. 270 (5), H1772-H1778 (1996).
  55. Puglisi, J. L., Yuan, W., Bassani, J. W., Bers, D. M. Ca(2+) influx through Ca(2+) channels in rabbit ventricular myocytes during action potential clamp: Influence of temperature. Circulation Research. 85 (6), e7-e16 (1999).
  56. Li, R. A., et al. Bioengineering an electro-mechanically functional miniature ventricular heart chamber from human pluripotent stem cells. Biomaterials. 163, 116-127 (2018).
  57. Sharma, A., et al. Biomanufacturing in low Earth orbit for regenerative medicine. Stem Cell Reports. 17 (1), 1-13 (2022).
  58. Strauss, D. G., Wu, W. W., Li, Z., Koerner, J., Garnett, C. Translational models and tools to reduce clinical trials and improve regulatory decision making for QTc and proarrhythmia risk (ICH E14/S7B updates). Clinical Pharmacology & Therapeutics. 109 (2), 319-333 (2021).
  59. Gintant, G., et al. Repolarization studies using human stem cell-derived cardiomyocytes: Validation studies and best practice recommendations. Regulatory Toxicology and Pharmacology. 117, 104756 (2020).
check_url/pt/64368?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
van Neste, C. C., Wiley, K. A., Chang, S. W., Borrello, J., Turnbull, I. C., Costa, K. D. Designing a Bioreactor to Improve Data Acquisition and Model Throughput of Engineered Cardiac Tissues. J. Vis. Exp. (196), e64368, doi:10.3791/64368 (2023).

View Video