Summary

Tasarlanmış Kardiyak Dokuların Veri Toplamasını ve Model Verimini İyileştirmek için Bir Biyoreaktör Tasarlama

Published: June 02, 2023
doi:

Summary

Kök hücre kaynaklı kardiyomiyositler kullanılarak biyomühendislik yapılan üç boyutlu kalp dokuları, doğal kardiyak nişin temel yönlerini özetlerken, sağlıklı ve hastalıklı insan miyokardını in vitro incelemek için umut verici modeller olarak ortaya çıkmıştır. Bu makale, insan kaynaklı pluripotent kök hücre kaynaklı kardiyomiyositlerden üretilen yüksek içerikli tasarlanmış kardiyak dokuların üretilmesi ve analiz edilmesi için bir protokolü açıklamaktadır.

Abstract

Kalp yetmezliği, dünya çapında önde gelen ölüm nedeni olmaya devam etmekte ve insan kalbinin daha iyi klinik öncesi modellerine acil bir ihtiyaç yaratmaktadır. Doku mühendisliği, temel bilim kardiyak araştırmaları için çok önemlidir; in vitro insan hücre kültürü, hayvan modellerinin türler arası farklılıklarını ortadan kaldırırken, daha doku benzeri bir 3D ortam (örneğin, hücre dışı matris ve heteroselüler eşleşme ile), in vivo koşulları, plastik Petri kapları üzerindeki geleneksel iki boyutlu kültürden daha büyük ölçüde simüle eder. Bununla birlikte, her model sistem, örneğin özel olarak tasarlanmış biyoreaktörler ve fonksiyonel değerlendirme cihazları gibi özel ekipman gerektirir. Ek olarak, bu protokoller genellikle karmaşıktır, emek yoğundur ve küçük, hassas dokuların başarısızlığından muzdariptir.

Bu makale, doku fonksiyonunun uzunlamasına ölçümü için indüklenmiş pluripotent kök hücre kaynaklı kardiyomiyositler kullanılarak sağlam bir insan mühendisliği kalp dokusu (hECT) model sistemi oluşturmak için bir süreci açıklamaktadır. Doğrusal şerit geometrisine sahip altı hECT paralel olarak kültürlenir ve her bir hECT, PDMS raflarına bağlı bir çift kuvvete duyarlı polidimetilsiloksan (PDMS) direğinden asılır. Her gönderi, kullanım kolaylığını, verimi, doku tutmayı ve veri kalitesini artıran yeni bir özellik olan siyah bir PDMS kararlı gönderi izleyici (SPoT) ile sınırlandırılmıştır. Şekil, sehimler sonrası sapmaların güvenilir optik takibine izin vererek, mutlak aktif ve pasif gerilimle gelişmiş seğirme kuvveti izlemeleri sağlar. Kapak geometrisi, direklerden kayan hECT’lerden kaynaklanan doku yetmezliğini ortadan kaldırır ve PDMS raf imalatından sonra ikinci bir adımı içerdiklerinden, SPoT’ler, biyoreaktör üretim sürecinde büyük değişiklikler yapılmadan mevcut PDMS post-based tasarımlarına eklenebilir.

Sistem, fizyolojik sıcaklıklarda hECT fonksiyonunun ölçülmesinin önemini göstermek için kullanılır ve veri toplama sırasında stabil doku fonksiyonunu gösterir. Özetle, in vitro uygulamalar için tasarlanmış kalp dokularının biyolojik uygunluğunu, verimliliğini ve titizliğini ilerletmek için temel fizyolojik koşulları yeniden üreten son teknoloji bir model sistemi açıklıyoruz.

Introduction

Tasarlanmış kardiyak doku modelleri, geleneksel iki boyutlu hücre kültürü ile elde edilmesi zor olan doğal kardiyak nişin çeşitli yönlerini özetlemek için çok çeşitli geometriler ve konfigürasyonlarda gelir. En yaygın konfigürasyonlardan biri, dokunun kendi kendine birleşmesini indüklemek ve dokuya tanımlanmış bir ön yük ve ortaya çıkan seğirme kuvvetlerinin bir okumasını sağlamak için her iki ucunda esnek ankrajlar bulunan doğrusal doku şerididir 1,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11, 12,13,14,15,16,17,18,19,20,21
,22,23,24,25,26,27. Üretilen kuvvet, doku kısalmasının optik olarak izlenmesi ve ölçülen sapmalardan gelen kuvveti veankrajların yay sabitini hesaplamak için elastik ışın teorisi kullanılarak sağlam bir şekilde belirlenebilir 1,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11, 12,13,14,15,16,17,18,19,20,
21,22,25,26,28.

Bununla birlikte, kardiyak doku mühendisliği hala gelişen bir alandır ve bazı zorluklar devam etmektedir. Her model sistem 10,29,30,31 için özel yapım biyoreaktörler ve fonksiyonel değerlendirme cihazları gibi özel ekipman gereklidir. Bu yapıların mikro çevresinin boyutu ve karmaşıklığı, emek yoğun protokoller, yüksek sayıda hücre ve doku kırılganlığı nedeniyle genellikle düşük verimle sınırlıdır. Bunu ele almak için, bazı gruplar, ilaç keşfi için yararlı olan yüksek verimli tahlilleri kolaylaştırmak için yalnızca yüzlerce veya binlerce hücre içeren mikro dokuların imalatına yöneldi. Bununla birlikte, bu azaltılmış ölçek, işlev12’nin doğru değerlendirmesini zorlaştırır, doğal kardiyak nişin temel yönlerini (besin/oksijen difüzyon gradyanları ve karmaşık mimari36 gibi) ortadan kaldırır ve sonraki moleküler ve yapısal analiz için mevcut malzeme miktarını sınırlar (genellikle dokuların havuzlanmasını gerektirir). Tablo 1, literatürdeki lineer doku şeridi modellerinin bazı konfigürasyonlarını özetlemektedir 1,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15, 16,17,18,19,20,
21,22,23,24,25,26,37,38,39,40.

Grup Doku başına hücre sayısı Plaka başına doku Plaka formatı Ankraj özelliği İşlevsel veri toplama yöntemi Paylaşılan medya banyosu mu? İşlevsel ölçü-
ment in situ mu?
Yoshida (EKT)38 4 milyon 6 modifiye edilmiş 6 kuyucuklu plaka* kuvvet dönüştürücü Doğrudan Kuvvet Ölçümü Hayır Hayır
Chan (hESC-CM-ECT’ler)26 310 bin 6 Özel 6 kuyulu çanak PDMS gönderileri Doğrudan Kuvvet Ölçümü evet Hayır
Feinberg (dyn-EHT)16 1.5 milyon 6 Özel 6 kuyulu çanak PDMS kablosu doku şekli Hayır evet
RDISIC (BioWire)39, 40 110 bin 8 polimer tel Tel şekli evet evet
Kosta (tek hECT)1, 2 1-2 milyon 4** 10 cm Petri kabı** PDMS gönderileri Optik sapma (kenar/nesne izleme) evet evet
Kosta (çok hECT)3–9 500 K-1 milyon 6 6 cm Petri kabı PDMS gönderileri Optik sapma (kenar/nesne izleme) evet evet
Costa (SPoT ile çok hECT) 1 milyon 6 6 cm Petri kabı Siyah kapaklı PDMS gönderileri Optik sapma (nesne izleme) evet evet
Yolcu (EHT)17 245 bin 36 12 oyuklu plaka Siyah kapaklı PDMS gönderileri Optik sapma (nesne izleme) evet evet
Vunjak-Novakoviç13, 18 1 milyon 12 6 cm Petri kabı Kapaklı PDMS gönderileri Optik sapma (kenar algılama) evet evet
Vunjak-Novakovic (MilliPillar)14 550 bin 6 Özel 6 kuyulu çanak Kapaklı PDMS gönderileri optik sapma (nesne izleme); Kalsiyum görüntüleme Hayır evet
Eschenhagen (EHT)10, 19–21 1 milyon 12 12 oyuklu plaka Kapaklı PDMS gönderileri optik sapma (post sapmanın kenar tespiti); Kalsiyum görüntüleme Hayır evet
Zandstra (CaMiRi)22 25-150 bin 96 96 oyuklu plaka Kancalı PDMS direkleri Optik sapma (kenar algılama) Hayır evet
Murry23, 24 900 bin 24 24 oyuklu plaka Kapaklı PDMS direkleri, entegre mıknatıs Manyetik sensör Hayır evet
Reich (μTUG)11, 12, 25 Tanımsız 156 156 kuyucuklu çanak Kapaklı PDMS direkleri, entegre mıknatıs Optik İzleme (Floresan Boncuk) evet evet

Tablo 1: Literatürdeki bazı lineer mühendislik kalp dokusu modellerinin özellikleri. Doğrusal mühendislik ürünü kalp dokusu modelleri, boyut, verim, ankraj özelliği tasarımları ve paylaşılan ortam banyolarının kolaylaştırılmasının yanı sıra fonksiyonel karakterizasyon için ayrı bir kas banyosu sistemi gereksinimleri bakımından farklılık gösterir. * Araştırmacılar, standart bir 6 oyuklu plakanın boyutlarına dayanan, ticari olarak temin edilebilen bir mühendislik doku sistemi kullandılar. ** Tek dokulu biyoreaktörlerin herhangi bir plastik kültür kabına istenilen sayı ve yerde ankrajlandığı modüler bir sistemdir.

Bu makale, yerleşik doğrusal insan mühendisliği kalp dokusu (hECT) modelimizi üretmek için en son protokolü açıklamaktadır1,2,3,4,5,6,7,8,9,15,27 ve hECT kasılma fonksiyonunu değerlendirme yöntemleri. Her çok dokulu biyoreaktör, paylaşılan bir ortam banyosunda altı hekte kadar barındırır ve sert bir polisülfon çerçeve üzerine monte edilmiş silikon elastomer polidimetilsiloksan’dan (PDMS) yapılmış iki “raf” parçasından oluşur. Her PDMS rafı, 0,5 mm çapında ve 3,25 mm uzunluğunda altı esnek entegre kuvvet algılama direği içerir ve birlikte, iki raf, her biri bir heECT tutan altı çift direk sağlar. Biyoreaktörün ters çevrilmesi, kültür ortamından su yoğunlaşması veya hava-sıvı arayüzünün menisküsünden kaynaklanan bozulmalar nedeniyle hECT’lerin aşağıdan görselleştirilmesine yönelik herhangi bir engelin üstesinden gelmeye yardımcı olur. Bir hECT’nin her kasılması, entegre uç direklerin sapmasına neden olur ve sapma sinyalinin optik ölçümü, hECT 1,2,3,4,5,6,7,8,9,15,27’nin kasılma fonksiyonunu temsil eden bir kuvvete karşı zaman izlemesine işlenir . Tipik olarak bu boyuttaki dokular için kullanılan tek dokulu biyoreaktörlerle karşılaştırıldığında, çok dokulu tasarım deneysel verimi artırır ve potansiyel olarak farklı hücresel bileşime sahip bitişik dokular arasında parakrin sinyalizasyonunun incelenmesini sağlar. Bu sistem, hastalık modellemesi 4,8, parakrin sinyalleme 6,7, heteroselüler kültür 5,9 ve terapötik tarama 7,9’daki uygulamaları açıklayan yayınlanmış çalışmalarda doğrulanmıştır.

Bu sistemde, hECT’ler yaklaşık 6 mm uzunluğunda ve 0,5 mm çapında olacak şekilde tasarlanmıştır ve düşük gürültülü kuvvet ölçümlerinin sağlam optik takibini kolaylaştırır. Ayrıca, difüzyon gradyanları ve hücresel organizasyon gibi doku karmaşıklığının yönleri, doku başına 1 milyon hücrelik yönetilebilir bir gereksinimle dengelenir. Standart CCD kamera teknolojisiyle, 1 μN kadar zayıf kuvvetler (sapma sonrası 5 μm’den daha azını temsil eder) net bir sinyal üreterek, bazı hECT hastalık modellerinde gözlemlendiği gibi son derece zayıf kasılma fonksiyonunun bile doğru bir şekilde ölçülebilmesini sağlar. Bu aynı zamanda seğirme kuvveti eğrisinin ayrıntılı analizini kolaylaştırır, böylece gelişmiş kuvvet, kasılma (+dF/dt) ve gevşeme (−dF/dt) oranları ve vuruş hızı değişkenliği dahil olmak üzere 16’ya kadar kasılma metriğinin41 yüksek içerikli analizini mümkün kılar.

Bu protokol, biyoreaktör bileşenlerinin üretilmesi için talimatlarla başlar. HEKT verimini en üst düzeye çıkarmak, doku fonksiyonundaki teknik değişkenliği azaltmak ve doku değerlendirmesinin kalitesini ve derinliğini optimize etmek için adımlara özel önem verilir. Kardiyak doku mühendisliği çalışmalarının çoğu, bu alanda iyi bilinen bir zorluk olmasına ve çalışmaların verimini ve verimliliğini azaltmasına rağmen, üretim ve uzun süreli testler sırasında doku kaybı oranlarını bildirmemektedir27. Burada açıklanan doku mühendisliği yöntemleri, biyoreaktörlerin çoğunda (PDMS raflarının nasıl üretildiğine bakılmaksızın) tüm hECT’lerin tutulmasını sağlamak için yıllar içinde rafine edilmiştir. Bununla birlikte, %5-20’lik bir doku kaybı bile, özellikle mevcut kardiyomiyosit sayısı ile sınırlı daha küçük deneylerde (örneğin, bazı hastalıklı hücre dizileri4 ile farklılaşma zorlukları nedeniyle veya ticari olarak satın alınan kardiyomiyositlerin yüksek maliyeti nedeniyle) veya tedavi durumu (örneğin, çeşitli tedavi bileşiklerinin sınırlı mevcudiyeti veya yüksek maliyeti) ile istatistiksel gücü önemli ölçüde etkileyebilir.

Bu protokol, hECT’leri27 tutan kuvvet algılama direklerinin uçlarında kapaklar olarak işlev gören PDMS raflarının yeni bir özelliği olan kararlı direk izleyicilerin (SPoT’ler) imalatını açıklar. Kapak geometrisinin, direklerin düşmesinden veya çekilmesinden kaynaklanan hECT kaybını nasıl önemli ölçüde azalttığı, böylece kapaksız direklerde kültürlenmesi zor olan daha çeşitli sertlik ve gerilimlere sahip hEKT’lerin kültürlenmesi için yeni fırsatlar açtığı gösterilmiştir. Ek olarak, SPoT’ler, tutarlı ve iyi tanımlanmış bir şekil27 aracılığıyla hECT kasılmasının optik takibini iyileştirmek için yüksek kontrastlı bir nesne sağlar. Bunu, insan kaynaklı pluripotent kök hücrelerin (iPSC’ler) kültürlenmesinin ve daha önce yayınlanmışprotokoller 3,42,43’e dayalı kardiyomiyosit farklılaşmasının bir açıklaması ve hECT üretimi, kültürü ve fonksiyonel ölçümlerinin bir açıklaması takip eder.

Bu makale aynı zamanda fizyolojik sıcaklıkta doku fonksiyonunu ölçme ihtiyacını da ele almaktadır. İnsan miyokardının (fetal ve yetişkin sağlıklı ve hastalıklı doku) yanı sıra çok çeşitli hayvan türlerinden (sıçanlar, kediler, fareler, gelincikler ve tavşanlar dahil) alınan kalp dokusu44,45, fizyolojik sıcaklığa kıyasla 28 °C-32 °C sıcaklıklarda frekansla eşleşen seğirme kuvvetinde belirgin bir artış gösterir – hipotermik inotropi olarak bilinen bir fenomen 45, 46. Bununla birlikte, sıcaklığın tasarlanmış miyokard dokusu fonksiyonu üzerindeki etkileri yeterince araştırılmamıştır. Literatürdeki birçok yeni tasarlanmış kalp dokusu modeli, fizyolojik koşullarayaklaşık 37 °C’de fonksiyonel olarak değerlendirilecek şekilde tasarlanmıştır 13,14,37. Bununla birlikte, bildiğimiz kadarıyla, tasarlanmış kalp dokuları tarafından üretilen kuvvet üzerindeki sıcaklığa bağlı etkiler sistematik olarak araştırılmamıştır. Bu protokol, test sırasında ısı kaybını en aza indirmenin yanı sıra, steriliteden ödün vermeden hECT’leri fizyolojik sıcaklıkta tutabilen fonksiyonel ölçümler için kuruluma yalıtılmış bir ısıtma elemanının dahil edilmesine izin veren bir pacing elektrot tasarımını açıklar27. Daha sonra, geliştirilen kuvvet, spontan atım frekansı, +dF/dt ve −dF/dt dahil olmak üzere sıcaklığın hECT fonksiyonu üzerindeki gözlemlenen etkilerinden bazılarını rapor ediyoruz. Toplamda, bu makale, insan tarafından tasarlanmış kalp dokularını üretmek ve kasılma işlevlerini değerlendirmek için bu çok dokulu kuvvet algılayıcı biyoreaktör sistemini üretmek için gereken ayrıntıları sağlar ve oda sıcaklığında ve 37 ° C’de ölçümler için bir karşılaştırma sağlayan bir dizi veri sunulur27.

Protocol

Bu protokol, tanımlanmamış bir iPSC hattı olan SkiPS 31.3’ü (orijinal olarak 45 yaşındaki sağlıklı bir erkekten alınan dermal fibroblastlar kullanılarak yeniden programlanmıştır)47 kullandı ve bu nedenle, kurumun insan araştırmaları etik komitesi yönergelerine uygun olarak belirli Kurumsal İnceleme Kurulu onayından muaftı. Tüm hücre ve hECT manipülasyonunu aseptik koşullarda HEPA filtreli sınıf II biyolojik güvenlik kabininde veya laminer akışlı çalışma tezgahı…

Representative Results

Yukarıdaki protokolü takiben, kardiyomiyositler daha önce grubumuz 9,15 tarafından kullanılan sağlıklı bir iPSC hattından üretildi ve kültürde 8-61 gün sonra hEKT’lere üretildi. Şekil 9A, alttan bakıldığında, (üstte) ve (altta) SPoT’lar olmadan oluşturulan hEKT’lerin temsili görüntülerini göstermektedir. Fonksiyonel ölçümler, oda sıcaklığında (23 °C) ve fizyolojik sıcaklıkta (36 °C) hECT üretimind…

Discussion

Literatürde yayınlanmış çok sayıda lineer mühendislik kardiyak doku modeli vardır ve bunların bazıları Tablo 1’de tanımlanmıştır. Bazı modeller doku kuvvetinin doğrudan ölçülmesini içerir, ancak bunlar tipik olarak yapının ayrı bir kas banyosunaaktarılmasını gerektirir 38. Çoğu model, dokular her iki uçta, en yaygın olarakPDMS direkleri 1,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15,16 <sup …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Yazarlar, bu yöntemle ilgili önceki çalışmaları için Dr. Timothy Cashman’a teşekkür eder. Bu çalışma, Ulusal Sağlık Enstitüleri (NIH) (R01-HL132226 ve K01 HL133424) ve Leducq Vakfı Uluslararası Mükemmellik Ağları Programı (CURE-PLaN) tarafından finanse edilerek desteklenmiştir.

Materials

0.25 mm diamete 304 Stainless Steel Wire McMaster Carr 6517K61 
0.25% trypsin-EDTA Gibco 25200056
1.7 mL Microtubes Axygen MCT-175-C
10 cm dishes (20 mm tall) Corning 353003
10 mL Serological Pipette Drummond 6-000-010
10 N NaOH Fisher Scientific SS225-1 dilute 1:10 in sterile distilled water
10X Modified Eagle Medium Sigma Aldrich M0275
20 – 200 μL Micropipette Eppendorf 3123000055
200 μL MicroPipette Tips VWR 76322-150
5 mL Serological Pipette Drummond 6-000-005
50 mL Conical Centrifuge Tubes Falcon 352070
6 cm Petri Dish Corning 353002
6 Watt LED Dual Gooseneck Illuminator AmScope  LED-6W 
6-Well Plates Corning 353046
90 degree angle mirror Edmund Optics 45-594
Acrylic bonding glue SCIGRIP #4
Adjustable 10 cm x 10 cm jack Fisher Scientific 14-673-50
Aluminum 6061 McMaster Carr 9008K82
A-Plan 10X Objective Lens ZEISS 1020-863
Autoclave Bags Propper 21002
B-27 supplement ThermoFisher 17504044
B-27 supplement (without insulin) ThermoFisher A1895601
Benchtop Centrifuge Eppendorf 5810 R
Black ABS Ultimaker 2.85 mm wide
Bovine Collagen I Gibco A1064401
CHIR99021 Tocris 4423
Class II Biosafety Cabinet Labconco 3430009
Clear Acrylic Sheeting estreetplastics 1002502436 6.25 mm thick
CNC Vertical Mill Haas VF-1
Conductive Graphite Bars McMaster Carr 1763T33
Dissection microscope Olympus SZ61
Dulbecco's Modified Eagle Medium/Ham's F-12 Nutrient Mix ThermoFisher 11330032
Ethanol Fisher Scientific A4094 Dilute to 70% in water
EVE Automated Cell counter NanoEntek E1000
EVE Cell Counting Slide NanoEntek EVS-050
Fetal Bovine Serum Life Technologies 10438026
Fine Curved Forceps Fine Science Tools 11253-25
Forma Series II Water Jacketed CO2 Incubator Thermo Electron Corporation 3110 AKA "incubator". With HEPA class 100 filter
Fusion360 software Autodesk AKA "CAD software"
Glass Hemocytometer Reichert 1475 0.1 mm deep
HEPES Sigma Aldrich H3784
hESC qualified matrigel Corning 354277 AKA "basement membrane matrix". Store in frozen aliquots
High Speed CCD Camera PixelLINK P7410
Inverted Microscope Carl Zeiss Werk Axiovert 40 CFL 10X phase contrast objective
IWR-1 Selleck Chem S7086
LabView Software National Instruments 2016
Laminar flow clean bench NuAire NU-201-330 necessary for hECT functional analysis
Laptop AsusTek Strix Intel Core i& processor ,CPU 2.8GHz, 16GB RAM
Laser Cutting Machine Epilog Helix 24
Magnification headset ExcelBlades 70020 Recommended for steps requiring fine manipulations
Matlab Mathworks Version 2019b or later AKA "data analysis software"
Micro Vannas Scissors, 3 mm blade WPI Instruments 501839
Microscope Boom Stand Olympus SZ2-STU1
Penicillin-Streptomycin stock solution ThermoFisher 15140122 10,000 IU/ml penicillin; 10,000 μg/ml streptomycin
Phosphate-buffered saline without divalent cations Sigma Aldrich P3813 Diluted in distilled water to 1X and 10X concentrations
Pipette Controller Drummond 4-000-100
PixelLINK Capture OEM PixelLINK 10.2.1.6 AKA "Camera Software"
Polysulfone McMaster Carr 86735K73 translucent amber color
Polytetrafluoroethylene (PTFE) McMaster Carr 8545K176  Black, molded
ReLeSR Stem Cell Technologies 5872 AKA "iPSC dissociation media"
Rosewell Park Memorial Institute 1640 Media ThermoFisher 11875135
Silicone Sheeting SMI manufacturing glossy, 0.02 in thickness, durometer 40
Size 10/0 Blue, Green, Red, and Yellow Glass Seed Beads Michael's color should withstand autoclaving
Spatula Fisher Scientific 14-373 used for mixing PDMS
Square Pulse Stimulator  Astro-Med / Grass Technologies S88X
Stainless Steel Razoblades GEM 62-0179-CTN preferred over non-stainless steel due to lower hardness
Stemflex ThermoFisher A3349401 AKA "iPSC culture media"
Sterile distilled water ThermoFisher 5230
Sylgard 170 -  Silicone Elastomer Encapsulant Black 0.9 kg Kit Dow DOWSIL 170 2LB KIT AKA black Polydimethylsiloxane (black PDMS)
Sylgard 184 – Silicone Elastomer Clear 1 lb Kit Dow DC 184 SYLGARD 0.5KG 1.1LB KIT AKA Polydimethylsiloxane (PDMS)
Temperature-controlled heated stage Okolab H401-HG-SMU Set height to 10 cm
Thermoplastic 3D printer Ultimaker Ultimaker 3
Thiazovivin Selleck Chem S1459
Trypan Blue NanoEntek EBT-001
Vacuum Chamber Bel-Art Parts F42027-0000
Variable Speed Mini Band Saw Micro-Mark 82203
Variable Speed Miniature Drill Press Micro-Mark 82959
Vibration Isolation Table Labconco 3618000
Weighing Boats VWR 10803-140
Talon Cylinder Bench Clamp VWR 97035-528 AKA screw clamp

Referências

  1. Serrao, G. W., et al. Myocyte-depleted engineered cardiac tissues support therapeutic potential of mesenchymal stem cells. Tissue Engineering. Part A. 18 (13-14), 1322-1333 (2012).
  2. Turnbull, I. C., et al. Advancing functional engineered cardiac tissues toward a preclinical model of human myocardium. FASEB Journal. 28 (2), 644-654 (2014).
  3. Cashman, T. J., et al. Construction of defined human engineered cardiac tissues to study mechanisms of cardiac cell therapy. Journal of Visualized Experiments. (109), e53447 (2016).
  4. Stillitano, F., et al. Genomic correction of familial cardiomyopathy in human engineered cardiac tissues. European Heart Journal. 37 (43), 3282-3284 (2016).
  5. Mayourian, J., et al. Experimental and computational insight into human mesenchymal stem cell paracrine signaling and heterocellular coupling effects on cardiac contractility and arrhythmogenicity. Circulation Research. 121 (4), 411-423 (2017).
  6. Mayourian, J., et al. therapeutic paracrine modulation of cardiac excitation-contraction coupling. Circulation Research. 122 (1), 167-183 (2018).
  7. Mayourian, J., et al. Exosomal microRNA-21-5p mediates mesenchymal stem cell paracrine effects on human cardiac tissue contractility. Circulation Research. 7 (122), 933-944 (2018).
  8. Turnbull, I. C., et al. Cardiac tissue engineering models of inherited and acquired cardiomyopathies. Methods in Molecular Biology. 1816, 145-159 (2018).
  9. Murphy, J. F., et al. Adult human cardiac stem cell supplementation effectively increases contractile function and maturation in human engineered cardiac tissues. Stem Cell Research & Therapy. 10 (1), 373 (2019).
  10. Breckwoldt, K., et al. Differentiation of cardiomyocytes and generation of human engineered heart tissue. Nature Protocols. 12 (6), 1177-1197 (2017).
  11. Huang, C. Y., et al. Enhancement of human iPSC-derived cardiomyocyte maturation by chemical conditioning in a 3D environment. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 138, 1-11 (2020).
  12. Ramade, A., Legant, W. R., Picart, C., Chen, C. S., Boudou, T. Microfabrication of a platform to measure and manipulate the mechanics of engineered microtissues. Methods in Cell Biology. 121, 191-211 (2014).
  13. Ronaldson-Bouchard, K., et al. Engineering of human cardiac muscle electromechanically matured to an adult-like phenotype. Nature Protocols. 14 (10), 2781-2817 (2019).
  14. Tamargo, M. A., et al. milliPillar: A platform for the generation and real-time assessment of human engineered cardiac tissues. ACS Biomaterials Science & Engineering. 7 (11), 5215-5229 (2021).
  15. Ceholski, D. K., et al. CXCR4 and CXCR7 play distinct roles in cardiac lineage specification and pharmacologic β-adrenergic response. Stem Cell Research. 23, 77-86 (2017).
  16. Bliley, J. M., et al. Dynamic loading of human engineered heart tissue enhances contractile function and drives a desmosome-linked disease phenotype. Science Translational Medicine. 13 (603), (2021).
  17. Ribeiro, M. C., et al. A new versatile platform for assessment of improved cardiac performance in human-engineered heart tissues. Journal of Personalized Medicine. 12 (2), 214 (2022).
  18. Ronaldson-Bouchard, K., et al. Advanced maturation of human cardiac tissue grown from pluripotent stem cells. Nature. 556 (7700), 239-243 (2018).
  19. Mannhardt, I., et al. Human engineered heart tissue: Analysis of contractile force. Stem Cell Reports. 7 (1), 29-42 (2016).
  20. Mannhardt, I., et al. Blinded contractility analysis in hiPSC-cardiomyocytes in engineered heart tissue format: Comparison with human atrial trabeculae. Toxicological Sciences. 158 (1), 164-175 (2017).
  21. Saleem, U., et al. Force and calcium transients analysis in human engineered heart tissues reveals positive force-frequency relation at physiological frequency. Stem Cell Reports. 14 (2), 312-324 (2020).
  22. Thavandiran, N., et al. Functional arrays of human pluripotent stem cell-derived cardiac microtissues. Scientific Reports. 10 (1), 6919 (2020).
  23. Bielawski, K. S., Leonard, A., Bhandari, S., Murry, C. E., Sniadecki, N. J. Real-time force and frequency analysis of engineered human heart tissue derived from induced pluripotent stem cells using magnetic sensing. Tissue Engineering. Part C, Methods. 22 (10), 932-940 (2016).
  24. Leonard, A., et al. Afterload promotes maturation of human induced pluripotent stem cell derived cardiomyocytes in engineered heart tissues. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 118, 147-158 (2018).
  25. Bose, P., Huang, C. Y., Eyckmans, J., Chen, C. S., Reich, D. H. Fabrication and mechanical properties measurements of 3D microtissues for the study of cell-matrix interactions. Methods in Molecular Biology. 1722, 303-328 (2018).
  26. Zhang, W., et al. Maturation of human embryonic stem cell-derived cardiomyocytes (hESC-CMs) in 3D collagen matrix: Effects of niche cell supplementation and mechanical stimulation. Acta Biomaterialia. 49, 204-217 (2017).
  27. van Neste, C. Advances in bioreactor design and multi-dimensional analysis for assessing maturation phenotype of human engineered cardiac tissues. PhD thesis. Icahn School of Medicine at Mount Sinai. , (2022).
  28. Sala, L., et al. MUSCLEMOTION: A versatile open software tool to quantify cardiomyocyte and cardiac muscle contraction in vitro and in vivo. Circulation Research. 122 (3), e5-e16 (2018).
  29. Salazar, B. H., Cashion, A. T., Dennis, R. G., Birla, R. K. Development of a cyclic strain bioreactor for mechanical enhancement and assessment of bioengineered myocardial constructs. Cardiovascular Engineering and Technology. 6 (4), 533-545 (2015).
  30. Putame, G., et al. Application of 3D printing technology for design and manufacturing of customized components for a mechanical stretching bioreactor. Journal of Healthcare Engineering. 2019, 3957931 (2019).
  31. Akintewe, O. O., Roberts, E. G., Rim, N. -. G., Ferguson, M. A. H., Wong, J. Y. Design approaches to myocardial and vascular tissue engineering. Annual Review of Biomedical Engineering. 19, 389-414 (2017).
  32. Chen, G., et al. Phospholamban as a crucial determinant of the inotropic response of human pluripotent stem cell-derived ventricular cardiomyocytes and engineered 3-dimensional tissue constructs. Circulation. Arrhythmia and Electrophysiology. 8 (1), 193-202 (2015).
  33. Giacomelli, E., et al. Human-iPSC-derived cardiac stromal cells enhance maturation in 3D cardiac microtissues and reveal non-cardiomyocyte contributions to heart disease. Cell Stem Cell. 26 (6), 862-879 (2020).
  34. Beauchamp, P., et al. 3D co-culture of hiPSC-derived cardiomyocytes with cardiac fibroblasts improves tissue-like features of cardiac spheroids. Frontiers in Molecular Biosciences. 7, 14 (2020).
  35. Campostrini, G., et al. functional analysis and applications of isogenic three-dimensional self-aggregating cardiac microtissues from human pluripotent stem cells. Nature Protocols. 16 (4), 2213-2256 (2021).
  36. Swiatlowska, P., Iskratsch, T. Tools for studying and modulating (cardiac muscle) cell mechanics and mechanosensing across the scales. Biophysical Reviews. 13 (5), 611-623 (2021).
  37. Zhao, Y., et al. Engineering microenvironment for human cardiac tissue assembly in heart-on-a-chip platform. Matrix Biology. 85-86, 189-204 (2020).
  38. Fujiwara, Y., Deguchi, K., Miki, K., Nishimoto, T., Yoshida, Y. A method for contraction force measurement of hiPSC-derived engineered cardiac tissues. Methods in Molecular Biology. 2320, 171-180 (2021).
  39. Wang, E. Y., et al. Biowire model of interstitial and focal cardiac fibrosis. ACS Central Science. 5 (7), 1146-1158 (2019).
  40. Zhao, Y., et al. A platform for generation of chamber-specific cardiac tissues and disease modeling. Cell. 176 (4), 913-927 (2019).
  41. Lee, E. K., et al. Machine learning of human pluripotent stem cell-derived engineered cardiac tissue contractility for automated drug classification. Stem Cell Reports. 9 (5), 1560-1572 (2017).
  42. Batalov, I., Feinberg, A. W. Differentiation of cardiomyocytes from human pluripotent stem cells using monolayer culture. Biomarker Insights. 10, 71-76 (2015).
  43. Lian, X., et al. Robust cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells via temporal modulation of canonical Wnt signaling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (27), E1848-E1857 (2012).
  44. Penefsky, Z. J., Buckley, N. M., Litwak, R. S. Effect of temperature and calcium on force-frequency relationships in mammalian ventricular myocardium. Pflugers Archiv. 332 (4), 271-282 (1972).
  45. Bers, D. M. . Excitation-Contraction Coupling and Cardiac Contractile Force. , (2001).
  46. Kanaya, N., Gable, B., Wickley, P. J., Murray, P. A., Damron, D. S. Experimental conditions are important determinants of cardiac inotropic effects of propofol. Anesthesiology. 103 (5), 1026-1034 (2005).
  47. Galende, E., et al. Amniotic fluid cells are more efficiently reprogrammed to pluripotency than adult cells. Cellular Reprogramming. 12 (2), 117-125 (2010).
  48. Wacker-Gussmann, A., Strasburger, J. F., Cuneo, B. F., Wakai, R. T. Diagnosis and treatment of fetal arrhythmia. American Journal of Perinatology. 31 (7), 617-628 (2014).
  49. Federmann, M., Hess, O. M. Differentiation between systolic and diastolic dysfunction. European Heart Journal. 15, 2-6 (1994).
  50. Knight, W. E., et al. Maturation of pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes enables modeling of human hypertrophic cardiomyopathy. Stem Cell Reports. 16 (3), 519-533 (2021).
  51. Ma, Z., et al. Contractile deficits in engineered cardiac microtissues as a result of MYBPC3 deficiency and mechanical overload. Nature Biomedical Engineering. 2 (12), 955-967 (2018).
  52. de Lange, W. J., et al. Human iPSC-engineered cardiac tissue platform faithfully models important cardiac physiology. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 320 (4), H1670-H1686 (2021).
  53. Hiranandani, N., Varian, K. D., Monasky, M. M., Janssen, P. M. L. Frequency-dependent contractile response of isolated cardiac trabeculae under hypo-, normo-, and hyperthermic conditions. Journal of Applied Physiology. 100 (5), 1727-1732 (2006).
  54. Puglisi, J. L., Bassani, R. A., Bassani, J. W., Amin, J. N., Bers, D. M. Temperature and relative contributions of Ca transport systems in cardiac myocyte relaxation. The American Journal of Physiology. 270 (5), H1772-H1778 (1996).
  55. Puglisi, J. L., Yuan, W., Bassani, J. W., Bers, D. M. Ca(2+) influx through Ca(2+) channels in rabbit ventricular myocytes during action potential clamp: Influence of temperature. Circulation Research. 85 (6), e7-e16 (1999).
  56. Li, R. A., et al. Bioengineering an electro-mechanically functional miniature ventricular heart chamber from human pluripotent stem cells. Biomaterials. 163, 116-127 (2018).
  57. Sharma, A., et al. Biomanufacturing in low Earth orbit for regenerative medicine. Stem Cell Reports. 17 (1), 1-13 (2022).
  58. Strauss, D. G., Wu, W. W., Li, Z., Koerner, J., Garnett, C. Translational models and tools to reduce clinical trials and improve regulatory decision making for QTc and proarrhythmia risk (ICH E14/S7B updates). Clinical Pharmacology & Therapeutics. 109 (2), 319-333 (2021).
  59. Gintant, G., et al. Repolarization studies using human stem cell-derived cardiomyocytes: Validation studies and best practice recommendations. Regulatory Toxicology and Pharmacology. 117, 104756 (2020).

Play Video

Citar este artigo
van Neste, C. C., Wiley, K. A., Chang, S. W., Borrello, J., Turnbull, I. C., Costa, K. D. Designing a Bioreactor to Improve Data Acquisition and Model Throughput of Engineered Cardiac Tissues. J. Vis. Exp. (196), e64368, doi:10.3791/64368 (2023).

View Video