Summary

染色质免疫沉淀(ChIP)使用果蝇组织

Published: March 23, 2012
doi:

Summary

最近高通量测序技术,大大提高了染色质免疫沉淀(ChIP)实验的灵敏度,并促使其使用纯化的细胞或解剖组织的申请。在这里,我们划定使用芯片技术与方法<em>果蝇</em>组织,可以解决在一个特点的生物系统的内源性染色质状态。

Abstract

表观遗传学仍然是一个发展迅速的领域,如何染色质状态差,在不同类型的细胞在不同发育阶段的基因表达的研究。表观遗传调控,有利于广泛的生物过程,包括细胞分化的胚胎发育过程中和在成年后的动态平衡。在表观遗传学研究的一个重要战略,是研究各种组蛋白修饰和染色质的因素,如何调节基因的表达。为了解决这个问题,染色质免疫沉淀(ChIP)被广泛使用,以获得与细胞DNA的特定因素的关联的快照。

芯片技术作为起始原料,可在获得丰度和均匀性产生重复性的数据,通常使用的细胞培养。然而,有几个注意事项:首先,在培养皿中生长的细胞环境是从体内不同,因此可能在一个活的有机体,不能反映内源性细胞的染色质状态。其次,并非所有类型的细胞可以体外培养。有只有一个细胞系的数量有限,从中人们可以得到足够的材料芯片检测。

在这里,我们描述的方法做芯片实验用果蝇组织。起始原料是从一个活生生的动物解剖组织,从而能准确反映内源性染色质状态。这种方法有许多不同类型的组织的适应性将允许研究人员解决了很多生物体内 1,2的表观遗传调控的有关问题。此方法结合高通量测序技术(ChIP-SEQ),将进一步使研究人员能够获得表观景观。

Protocol

(整个芯片过程大约需要两天。高通量测序芯片库的制备另需2-3天。) 1。解剖,并准备组织芯片实验(约1亿个细胞) 冷PBS + 1蛋白酶抑制剂(溶解在1.5 mL的1X PBS 1蛋白酶抑制剂的鸡尾酒颗粒获得7X原液)在解剖组织的利益(例如果蝇精巢200双)+ PMSF(终浓度为100微克/毫升)。漂洗两次组织和悬浮在200μL与抑制剂的解决方案相同的PBS组织。 ?…

Discussion

本议定书中所讨论的芯片分析的通用性,可用于在不同的组织,它提供了一个机会,在生物相关系统研究染色质状态。芯片实验中使用的细胞培养系统是方便执行,因为可以很容易地获得大量的细胞。然而,培养的细胞并不一定反映在多细胞环境中的细胞。通过使用活的动物解剖组织开发这一技术,我们可以解决许多问题,培养的细胞不能。

尽管本协议的有效性,有几个注?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

笔者想感谢他们副科级赵博士的实验室研究院(NIH / NHLBI)的测序结果提供帮助。我们也想感谢UCSC基因组计划,基因组浏览器使用的可视化映射测序读取。

一直支持这项工作由R00HD055052 NIH的通路独立奖和从NICHD的,露西尔Parkard基金会,约翰·霍普金斯大学的启动资金到XC R01HD065816

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Complete Mini protease inhibitor cocktail Roche 11836153001  
Formaldehyde (37%) Supelco 47083-U  
PMSF Sigma 78830  
Kontes pellet pestle Fischer Scientific K749521-1590  
PCR Purification Kit Qiagen 28104  
Linear polyacrylamide Sigma 56575-1ML  
Glycogen Qiagen 158930  
SYBR green/ROX qPCR Master Mix Fermentas K0223  
Mini plate spinner Labnet Z723533  
Real time PCR system Applied Biosystem 4351101  
Small Volume Ultrasonic Processor Misonix HS-XL2000 Model discontinued
Dynabeads, Protein A Invitrogen 100-01D  
Dynamag magnet Invitrogen 123-21D  
Phenol:Chlorofrom:IAA Invitrogen 15593-049  
Epicentre DNA END-Repair Kit Epicentre Biotechnologies ER0720  
MinElute Reaction Cleanup Kit Qiagen 28204  
Klenow Fragment (3’→5′ exo–) New England Biolabs M0212S  
T4 DNA ligase Promega Corporation M1794  
Adaptor oligonucleotides Illumina PE-400-1001  
Paired-End Primer 1.0 and 2.0 Illumina 1001783
1001 784
 
E-Gel Electorphoresis system Invitrogen G6512ST  
2X Phusion HF Mastermix Finnzymes F-531  

References

  1. Kharchenko, P. V., Alekseyenko, A. A., Schwartz, Y. B., Minoda, A., Riddle, N. C., Ernst, J., Sabo, P. J., Larschan, E., Gorchakov, A. A., Gu, T. Comprehensive analysis of the chromatin landscape in Drosophila melanogaster. Nature. 471, 480-485 (2011).
  2. Filion, G. J., van Bemmel, J. G., Braunschweig, U., Talhout, W., Kind, J., Ward, L. D., Brugman, W., de Castro, I. J., Kerkhoven, R. M., Bussemaker, H. J., van Steensel, B. Systematic protein location mapping reveals five principal chromatin types in Drosophila cells. Cell. 143, 212-224 (2010).
  3. Barski, A., Cuddapah, S., Cui, K., Roh, T. Y., Schones, D. E., Wang, Z., Wei, G., Chepelev, I., Zhao, K. High-resolution profiling of histone methylations in the human genome. Cell. 129, 823-837 (2007).
  4. Chen, X., Lu, C., Prado, J. R., Eun, S. H., Fuller, M. T. Sequential changes at differentiation gene promoters as they become active in a stem cell lineage. Development. 138, 2441-2450 (2011).
  5. Gonczy, P., Matunis, E., DiNardo, S. bag-of-marbles and benign gonial cell neoplasm act in the germline to restrict proliferation during Drosophila spermatogenesis. Development. 124, 4361-4371 (1997).
  6. McKearin, D. M., Spradling, A. C. bag-of-marbles: a Drosophila gene required to initiate both male and female gametogenesis. Genes Dev. 4, 2242-2251 (1990).
  7. Gan, Q., Schones, D. E., Eun, S. H., Wei, G., Cui, K., Zhao, K., Chen, X. Monovalent and unpoised status of most genes in undifferentiated cell-enriched Drosophila testis. Genome Biol. 11, 42-42 (2010).
  8. Gan, Q., Chepelev, I., Wei, G., Tarayrah, L., Cui, K., Zhao, K., Chen, X. Dynamic regulation of alternative splicing and chromatin structure in Drosophila gonads revealed by RNA-seq. Cell Res. 7, 763-783 (2010).
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Cite This Article
Tran, V., Gan, Q., Chen, X. Chromatin Immunoprecipitation (ChIP) using Drosophila tissue. J. Vis. Exp. (61), e3745, doi:10.3791/3745 (2012).

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