Summary

Kullanarak Kromatin immünopresipitasyon (ChIP) Drosophila Doku

Published: March 23, 2012
doi:

Summary

Son zamanlarda yüksek verimlilik sıralama teknolojisi büyük ölçüde Kromatin immünopresipitasyon (ChIP) deney duyarlılığı artmış ve saflaştırılmış hücreleri veya disseke doku kullanarak uygulama açtı. İşte biz ChIP tekniği kullanılacak bir yöntem tasvir<em> Drosophila</emIyi karakterize biyolojik sisteminde endojen kromatin devleti ele alabilir> doku.

Abstract

Epigenetik hızla gelişen bir alan kalır kromatin devletin farklı gelişim aşamalarında farklı hücre tiplerinde farklı gen ifadesini nasıl katkıda çalışmaları. Epigenetik düzenleme yetişkinlikte embriyonik gelişimi ve homeostazı sırasında hücresel farklılaşma da dahil olmak üzere biyolojik süreçleri, geniş bir yelpazede katkıda bulunur. Epigenetik çalışmalar eleştirel bir strateji çeşitli histon modifikasyonları ve kromatin faktörleri gen ifadesinin düzenlenmesine nasıl incelemektir. Bu adres için, Kromatin immünopresipitasyon (ChIP) ilgi hücrelerde DNA ile belirli faktörlerin dernek bir enstantane elde etmek için yaygın olarak kullanılmaktadır.

ChIP tekniği yaygın olarak tekrarlanabilir verileri oluşturmak için bolluk ve homojenlik elde edilebilir malzeme, başlangıç ​​olarak kültür hücreleri kullanır. Bununla birlikte, birçok uyarılar vardır: İlk olarak, Petri tabağına hücrelerinin büyümesini ortamı, böylece, in vivo olarak farklı olan olabiliryaşayan bir organizma hücrelerin endojen kromatin devlet yansıtmamaktadır. İkinci olarak, hücreler değil, her türlü kültürü ex vivo olabilir. Insan ChIP tayini için yeterince malzeme edinebilecekleri hücre dizileri sadece sınırlı sayıda vardır.

Burada Drosophila dokuları kullanarak ChIP deney yapmak için bir yöntem tarif. Başlangıç ​​malzemesi böylece doğru endojen kromatin devlet yansıtabilir, yaşayan bir hayvan dokusu diseke edilir. Dokusu çok farklı tipleri ile bu yöntemin uyum araştırmacılar biyolojik olarak daha bir çok in vivo 1, 2, epigenetik düzenleme konusunda ilgili soruları sağlayacaktır. Yüksek verimlilik sıralama (ChIP-seq) ile bu yöntemi birleştirerek daha araştırmacı bir epigenomic manzara elde sağlayacaktır.

Protocol

(Tüm ChIP prosedürü yaklaşık iki gün sürer. Yüksek verimlilik sıralaması için ChIP kütüphaneler hazırlanması 2-3 gün sürer.) 1. Inceleyin ve ChIP Experiment (~ 1 milyon hücre) için doku hazırlanması Soğuk PBS + 1x proteaz inhibitörleri (7x stok solüsyonu elde etmek için 1.5 ml 1x PBS içinde proteaz inhibitörü kokteyl 1 pelet erimesi) de (Drosophila testislerin örneğin 200 çift) ilgi doku teşrih + PMSF (son konsantrasyonu 10…

Discussion

Bu protokol tartışılan ChIP analizlerin çok yönlülüğü, biyolojik ilgili sistemde kromatin devletin bir çalışma olanağı sağlar, farklı dokular üzerindeki kullanılabilir. Kültüre sistemlerinden hücreleri kullanılarak ChIP deneyler hücrelerinin büyük miktarda kolayca elde edilebilir çünkü gerçekleştirmek için uygundur. Bununla birlikte, kültürlenmiş hücrelerde mutlaka bir çoklu-hücresel ortamda hücreleri göstermemektedir. Canlı hayvan disseke doku kullanarak bu tekniği geliştirerek…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Yazarlar sıralama sonuçları sağlayarak yardım ettikleri için Dr Keji Zhao'nun laboratuarı (NIH / NHLBI) teşekkür etmek istiyorum. Biz de eşlenen sıralama okur görselleştirmek için Genom Tarayıcı kullanımı için UCSC genom projesi teşekkür etmek istiyorum.

Bu çalışma start-up XC fon NICHD Lucile Parkard Vakfı ve Johns Hopkins Üniversitesi'nden Bağımsızlık Ödülü ve R01HD065816 için R00HD055052 NIH Pathway tarafından desteklenmektedir

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Complete Mini protease inhibitor cocktail Roche 11836153001  
Formaldehyde (37%) Supelco 47083-U  
PMSF Sigma 78830  
Kontes pellet pestle Fischer Scientific K749521-1590  
PCR Purification Kit Qiagen 28104  
Linear polyacrylamide Sigma 56575-1ML  
Glycogen Qiagen 158930  
SYBR green/ROX qPCR Master Mix Fermentas K0223  
Mini plate spinner Labnet Z723533  
Real time PCR system Applied Biosystem 4351101  
Small Volume Ultrasonic Processor Misonix HS-XL2000 Model discontinued
Dynabeads, Protein A Invitrogen 100-01D  
Dynamag magnet Invitrogen 123-21D  
Phenol:Chlorofrom:IAA Invitrogen 15593-049  
Epicentre DNA END-Repair Kit Epicentre Biotechnologies ER0720  
MinElute Reaction Cleanup Kit Qiagen 28204  
Klenow Fragment (3’→5′ exo–) New England Biolabs M0212S  
T4 DNA ligase Promega Corporation M1794  
Adaptor oligonucleotides Illumina PE-400-1001  
Paired-End Primer 1.0 and 2.0 Illumina 1001783
1001 784
 
E-Gel Electorphoresis system Invitrogen G6512ST  
2X Phusion HF Mastermix Finnzymes F-531  

References

  1. Kharchenko, P. V., Alekseyenko, A. A., Schwartz, Y. B., Minoda, A., Riddle, N. C., Ernst, J., Sabo, P. J., Larschan, E., Gorchakov, A. A., Gu, T. Comprehensive analysis of the chromatin landscape in Drosophila melanogaster. Nature. 471, 480-485 (2011).
  2. Filion, G. J., van Bemmel, J. G., Braunschweig, U., Talhout, W., Kind, J., Ward, L. D., Brugman, W., de Castro, I. J., Kerkhoven, R. M., Bussemaker, H. J., van Steensel, B. Systematic protein location mapping reveals five principal chromatin types in Drosophila cells. Cell. 143, 212-224 (2010).
  3. Barski, A., Cuddapah, S., Cui, K., Roh, T. Y., Schones, D. E., Wang, Z., Wei, G., Chepelev, I., Zhao, K. High-resolution profiling of histone methylations in the human genome. Cell. 129, 823-837 (2007).
  4. Chen, X., Lu, C., Prado, J. R., Eun, S. H., Fuller, M. T. Sequential changes at differentiation gene promoters as they become active in a stem cell lineage. Development. 138, 2441-2450 (2011).
  5. Gonczy, P., Matunis, E., DiNardo, S. bag-of-marbles and benign gonial cell neoplasm act in the germline to restrict proliferation during Drosophila spermatogenesis. Development. 124, 4361-4371 (1997).
  6. McKearin, D. M., Spradling, A. C. bag-of-marbles: a Drosophila gene required to initiate both male and female gametogenesis. Genes Dev. 4, 2242-2251 (1990).
  7. Gan, Q., Schones, D. E., Eun, S. H., Wei, G., Cui, K., Zhao, K., Chen, X. Monovalent and unpoised status of most genes in undifferentiated cell-enriched Drosophila testis. Genome Biol. 11, 42-42 (2010).
  8. Gan, Q., Chepelev, I., Wei, G., Tarayrah, L., Cui, K., Zhao, K., Chen, X. Dynamic regulation of alternative splicing and chromatin structure in Drosophila gonads revealed by RNA-seq. Cell Res. 7, 763-783 (2010).

Play Video

Cite This Article
Tran, V., Gan, Q., Chen, X. Chromatin Immunoprecipitation (ChIP) using Drosophila tissue. J. Vis. Exp. (61), e3745, doi:10.3791/3745 (2012).

View Video