Summary

Kromatin Immunoutfällning (chip) med användning av Drosophila Vävnad

Published: March 23, 2012
doi:

Summary

Nyligen high-throughput sekvensering teknik har ökat kraftigt känslighet Chromatin Immunoprecipitation (chip) experiment och till grund för dess tillämpning med renade celler eller dissekeras vävnad. Här har vi avgränsa en metod att använda ChIP teknik med<em> Drosophila</em> Vävnad, som kan klara den endogena kromatinet tillstånd i en väldefinierad biologiskt system.

Abstract

Epigenetik är en snabbt växande fält som studerar hur kromatin staten bidrar till differentiell genuttryck i olika celltyper i olika utvecklingsstadier. Epigenetisk reglering bidrar till ett brett spektrum av biologiska processer, inbegripet cellplattor differentiering under fosterutvecklingen homeostas i vuxen ålder. En kritisk strategi i epigenetiska studier är att undersöka hur olika histon modifikationer och kromatin faktorer reglerar genuttryck. För att lösa detta är Chromatin Immunoprecipitation (chip) används allmänt för att få en ögonblicksbild av föreningen av särskilda faktorer som DNA i cellerna av intresse.

ChIP teknik använder vanligen odlade celler som utgångsmaterial, vilka kan erhållas i överflöd och homogenitet för att generera reproducerbara data. Det finns emellertid flera förbehåll: För det första är den miljö att växa celler i Petri-skål som skiljer sig från in vivo, vilket kaninte återspeglar den endogena kromatinet tillståndet av celler i en levande organism. För det andra kan inte alla typer av celler vara odlade ex vivo. Det finns bara ett begränsat antal cellinjer, från vilken människor kan få tillräckligt med material för ChIP analys.

Här beskriver vi en metod för att göra ChIP experiment med Drosophila vävnader. Utgångsmaterialet dissekeras vävnad från ett levande djur, vilket exakt kan reflektera den endogena kromatin staten. Anpassningsförmåga denna metod med många olika typer av vävnad kommer att tillåta forskare att ta itu med en mycket mer biologiskt relevanta frågor om epigenetisk reglering in vivo 1, 2. Genom att kombinera denna metod med hög genomströmning sekvensering (chip-punkter) kommer ytterligare att låta forskare för att få en epigenomiska landskap.

Protocol

(Hela ChIP Proceduren tar cirka två dagar. Beredning av chip bibliotek för high-throughput sekvensering tar ytterligare 2-3 dagar.) 1. Dissekera och förbereda Mjukpapper för ChIP Experiment (ca 1 miljon celler) Dissekera vävnad av intresse (t.ex. 200 par av Drosophila testiklar) i kall PBS + 1x proteashämmare (lös upp 1 pellet av proteashämmare cocktail i 1,5 ml 1 x PBS för att erhålla 7x stamlösning) + PMSF (slutlig koncentration 100 pg / ml)….

Discussion

Mångsidigheten av chip analyser som diskuteras i detta protokoll kan användas på olika vävnader, vilket ger en möjlighet att studera kromatinet staten i ett biologiskt relevant system. CHIP experiment med användning av celler från odlade system är bekvämt att utföra eftersom stora mängder av celler kan lätt erhållas. Däremot odlade celler inte nödvändigtvis celler i en multi-cellulär miljö. Genom att utveckla denna teknik använder dissekeras vävnad från levande djur, kan vi ta itu med många frågor…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka Dr Keji Zhao labb (NIH / NHLBI) för deras hjälp att ge sekvensering resultat. Vi vill också tacka UCSC Genome Project för användning av Genome Browser för att visualisera kartlagt sekvensering läser.

Detta arbete har fått stöd av R00HD055052 NIH vägen till Independence Award och R01HD065816 från NICHD den Lucile Parkard Foundation och Johns Hopkins University startbidrag till XC

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Complete Mini protease inhibitor cocktail Roche 11836153001  
Formaldehyde (37%) Supelco 47083-U  
PMSF Sigma 78830  
Kontes pellet pestle Fischer Scientific K749521-1590  
PCR Purification Kit Qiagen 28104  
Linear polyacrylamide Sigma 56575-1ML  
Glycogen Qiagen 158930  
SYBR green/ROX qPCR Master Mix Fermentas K0223  
Mini plate spinner Labnet Z723533  
Real time PCR system Applied Biosystem 4351101  
Small Volume Ultrasonic Processor Misonix HS-XL2000 Model discontinued
Dynabeads, Protein A Invitrogen 100-01D  
Dynamag magnet Invitrogen 123-21D  
Phenol:Chlorofrom:IAA Invitrogen 15593-049  
Epicentre DNA END-Repair Kit Epicentre Biotechnologies ER0720  
MinElute Reaction Cleanup Kit Qiagen 28204  
Klenow Fragment (3’→5′ exo–) New England Biolabs M0212S  
T4 DNA ligase Promega Corporation M1794  
Adaptor oligonucleotides Illumina PE-400-1001  
Paired-End Primer 1.0 and 2.0 Illumina 1001783
1001 784
 
E-Gel Electorphoresis system Invitrogen G6512ST  
2X Phusion HF Mastermix Finnzymes F-531  

References

  1. Kharchenko, P. V., Alekseyenko, A. A., Schwartz, Y. B., Minoda, A., Riddle, N. C., Ernst, J., Sabo, P. J., Larschan, E., Gorchakov, A. A., Gu, T. Comprehensive analysis of the chromatin landscape in Drosophila melanogaster. Nature. 471, 480-485 (2011).
  2. Filion, G. J., van Bemmel, J. G., Braunschweig, U., Talhout, W., Kind, J., Ward, L. D., Brugman, W., de Castro, I. J., Kerkhoven, R. M., Bussemaker, H. J., van Steensel, B. Systematic protein location mapping reveals five principal chromatin types in Drosophila cells. Cell. 143, 212-224 (2010).
  3. Barski, A., Cuddapah, S., Cui, K., Roh, T. Y., Schones, D. E., Wang, Z., Wei, G., Chepelev, I., Zhao, K. High-resolution profiling of histone methylations in the human genome. Cell. 129, 823-837 (2007).
  4. Chen, X., Lu, C., Prado, J. R., Eun, S. H., Fuller, M. T. Sequential changes at differentiation gene promoters as they become active in a stem cell lineage. Development. 138, 2441-2450 (2011).
  5. Gonczy, P., Matunis, E., DiNardo, S. bag-of-marbles and benign gonial cell neoplasm act in the germline to restrict proliferation during Drosophila spermatogenesis. Development. 124, 4361-4371 (1997).
  6. McKearin, D. M., Spradling, A. C. bag-of-marbles: a Drosophila gene required to initiate both male and female gametogenesis. Genes Dev. 4, 2242-2251 (1990).
  7. Gan, Q., Schones, D. E., Eun, S. H., Wei, G., Cui, K., Zhao, K., Chen, X. Monovalent and unpoised status of most genes in undifferentiated cell-enriched Drosophila testis. Genome Biol. 11, 42-42 (2010).
  8. Gan, Q., Chepelev, I., Wei, G., Tarayrah, L., Cui, K., Zhao, K., Chen, X. Dynamic regulation of alternative splicing and chromatin structure in Drosophila gonads revealed by RNA-seq. Cell Res. 7, 763-783 (2010).
check_url/3745?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Tran, V., Gan, Q., Chen, X. Chromatin Immunoprecipitation (ChIP) using Drosophila tissue. J. Vis. Exp. (61), e3745, doi:10.3791/3745 (2012).

View Video