Summary
人工内耳感覚上皮のプロテオーム解析は、その小さなサイズのために、膜タンパク質が単離および同定することが困難であるため、挑戦的であることができる。膜および可溶性タンパク質の両方は、高分解能質量分析と一緒に複数の調製方法及び分離技術を組み合わせることによって同定することができる。
Abstract
プロテオミクスは、複雑な生物システムへの洞察を提供することができ、一般的に使用されるアプローチである。蝸牛感覚上皮は、末梢神経系および中枢神経系で処理された電気化学的エネルギーに音の機械的エネルギーを伝達する受容体が含まれています。いくつかのプロテオミクス技術は、二次元の差ゲル電気泳動（2D-DIGE）、抗体マイクロアレイ、および質量分析（MS）などの内耳蝸牛を研究するために開発されてきた。 MSは、プロテオミクスにおける最も包括的かつ汎用性の高いツールであり、分離方法と組み合わせて、生物学的サンプルの詳細なプロテオームを提供することができます。 MSと組み合わせた分離方法は、タンパク質サンプルを濃縮する低分子量および疎水性タンパク質を検出し、プロテオームダイナミックレンジを低減することにより、低濃度タンパク質を同定する能力を有する。異なる消化戦略は、ペプチドおよびタンパク質を向上させ、全体溶解物または分画タンパク質溶解物に適用することができる配列カバー。強カチオン交換（SCX）、逆相（RP）、およびゲル溶出液画分の閉じ込め電気泳動（GELFrEE）を含む様々な分離技術の利用は、タンパク質同定のためのMS分析前に試料の複雑さを低減するために適用することができる。
Introduction
プロテオミクスは、タンパク質の発現、機能、変更、および1の相互作用を解析することにより、複雑な生物系の研究である。いくつかの方法は、抗体マイクロアレイ2、二次元ゲル電気泳動3-5、およびDIGE 6を含む内耳のプロテオーム解析のために利用されてきた。しかし、タンパク質の限られた数が同定されており、内耳11,12において同定10,000以上の遺伝子および発現配列タグ（EST）と比較して、2,7-10を特徴とする、MSは、最も一般的に使用され、包括的技術であるタンパク質特性のためのプロテオミクス。このような蝸牛のような複雑なプロテオミクスサンプルの分析は、挑戦することができます。しかしながら、MSを有する複数の分離技術の組み合わせは、増大したダイナミックな濃度範囲およびピーク容量13に、ペプチドおよびタンパク質のより多くの同定を可能にする。多次元chromatogra物理ポートは、異なる吸着機構の使用を可能にすることによって、非常に複雑なタンパク質混合物を減少させる。 2一般的に使用されるMSのプロテオーム解析アプローチ、ショットガンとボトムアッププロテオミクスがあります。ショットガンプロテオミクスでは、インタクトなタンパク質の混合物を酵素的に消化し 、逆相液体クロマトグラフィー（RPLC）14,15、続いて強力な陽イオン交換クロマトグラフィー（SCX）を用いて、多次元クロマトグラフィーを用いて分離される。分離されたペプチドは、タンデムMSとデータベース15を検索にかける。この技術の主な利点は、何千ものタンパク質が単一の分析で同定することができ、技術は膜タンパク質に適していることである。
ボトムアップアプローチにおいて、タンパク質混合物は、通常、1次元または2次元電気泳動によって分離し、個々のタンパク質バンドまたはスポットを切り出し、トリプシンなどの酵素で消化し、通常は複数のペプチドが得られる。しかし、別のより最近のLYは、ボトムアッププロテオミクスで使用、電気泳動の手法を開発し、GELFrEEです。この技術は、液相中のタンパク質サンプルを分別し、分析前にそれらをあまり複雑にする。この手法は、再現性が高いタンパク質回収を提供し、複雑なタンパク質サンプル16内の高濃度タンパク質の分布を低減します。分離されたタンパク質から生じるペプチドを、データベース17〜19を検索するための配列タグを作成するために、ペプチドマスフィンガープリンティングまたはタンデムMS（MS / MS）を用いて、MSによって分析される。ボトムアップアプローチを使用する主な利点のいくつかは、高分解能の分離と包括的なタンパク質カバレッジを得る能力である。ボトムアッププロテオミクスプロテオミクス20で最も広く使用される技術である、したがって、いくつかのバイオインフォマティクス·ツールの提供。加えて、タンパク質消化の前に複雑な混合物中で分離することができるので、識別のより大きな可能性がある。
大きな課題の一つプロテオーム解析のための内耳を使用してその小さなサイズ、制限されたアクセス可能性、および細胞型の多様性21である。また、このようなイオンチャネル、輸送体および受容体としての機能を区別する重要なタンパク質は、22を単離することが困難であることができる膜タンパク質である。従って、フィルタ支援試料調製（FASP）をタンパク質抽出のために制限されている組織のプロテオーム解析のために有利で あり、膜23を可溶化するために界面活性剤を必要とする。このフィルタリングは、膜および可溶性タンパク質のMS分析のために、低分子量混入物23,24からペプチドを単離する能力を可能にする。
本プロトコルは、合わせて、両方の可溶性タンパク質および膜タンパク質を分析し、蝸牛感覚上皮からのタンパク質IDの数を最大化するために修正される一般的に使用されるプロテオミクスのアプローチを記載する。私たちは、FASPマルチダイジェストでショットガンプロテオミクスを使用して説明しますイオンは、イオン交換クロマトグラフィー、高分解能MS、およびデータ分析。加えて、我々はGELFrEE、FASPマルチ消化、高分解能MS、およびデータ分析とボトムアッププロテオミクスについて説明する。
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Protocol
倫理に関する声明
国立衛生研究所のガイドラインの下で記載されたマウスの組織を用いた実験は、南フロリダ大学施設内動物管理使用委員会（プロトコル3931R、3482R）により承認された。
1。タンパク質抽出
- -80℃で16〜30日齢（P30）CBA / Jマウスとストアから蝸牛感覚上皮を分離
- 実験の日に、1×リン酸緩衝生理食塩水（PBS）500μlで組織を洗浄する。千×gで3分間遠心し、上清を除去します。合計3回の洗浄のために繰り返します。
- 50mMのトリス-HCl、pH8.0、120mMのNaClを、50mMのNaFを、5mMのEDTA、500μg/ mlのAEBSF、10μg/ mlのロイペプチン、100μgのを/含有する溶解緩衝液100μlで、氷上で30秒間超音波処理した組織ソニックディスメン（;サーモフィッシャーモデル100）を使用してペプスタチンミリリットル、2μg/ mlのアプロチニン、および0.5μg/ mlのミクロシスチン。氷の上でクールな溶解液各超音波処理との間に1分間。 3Xの合計を超音波処理。
- 2分間、4℃で750×gでの抽出物を遠心分離し、新しいマイクロチューブに上清を除去します。氷上で30秒間超音波処理することによって、溶解緩衝液50μlにペレットを抽出します。 2分間、4℃で750×gでの抽出物を遠心分離する。 60分間、4℃で28,600×gで溶解物および遠心分離機の両方を兼ね備えています。新しいマイクロチューブに上清を除去し、ペレットに0.1％ASB-14を含む20μlの溶解バッファーを追加します。ボルテックスで1分間、4℃で60分間インキュベートする
- 60分間4℃でクール、次いで、5分間、95℃で試料を加熱する。 10分間、25℃で16,000×gで遠心分離して従ってください。上清を回収し、新しいチューブに移す。
- 5分間、4℃で16,000×gで懸濁物を遠心分離し、消化のために、上清を保持します。
2。 FASPを使用して全溶解液の二重トリプシンタンパク質消化
- 30μを追加4％ドデシル硫酸ナトリウム（SDS）を含む蝸牛のタンパク質抽出物（400μgの≤）リットルのアリコートを、100mMのトリス-HCl、pHが7.6および0.1 Mジチオスレイトール（DTT）を直接30Kスピンフィルター及び8200μlの混合トリス-HCl中のM尿素。 15分間14,000×gで遠心分離する。
- 15分間14,000×gで8 M尿素水溶液遠心200μLの濃縮物を希釈する。
- 1分間のフィルターと渦に集中する8 M尿素溶液中で10倍ヨードアセトアミド（IAA）の10を添加する。 10分間、14,000×gの遠心分離に続いて暗所で室温（RT）で20分間スピンフィルターをインキュベートする。
- 15分間14,000×gでフィルタユニットや遠心分離機に集中する8 M尿素溶液100μlを加える。このステップの2倍を繰り返します。 50 mM重炭酸アンモニウム（ABC）10分間14,000×gでフィルタユニットや遠心分離機に溶液100μlを加える。このステップの2倍を繰り返します。
- 1:100トリプシン0.4μgの/μLを追加します（w / w）の酵素へタンパク質比は、37℃で一晩（O / N）をインキュベートする
- インキュベーションに続いて、10分間14,000×gで遠心分離器をフィルタするために50 mMのABC溶液40μlを加える。このステップ1Xを繰り返します。
- 10分間14,000×gでスピンフィルターと遠心分離機に0.5MのNaCl溶液50μlを追加します。新鮮なマイクロチューブにトリプシンペプチドを含む濾液を転送し、消化を停止するために1.0％ギ酸（FA）で酸性化する。
- 8 M尿素40μlのフィルターユニットを洗浄し、次に40μlの18MΩ水で2回洗う。
- 50 mMのABC溶液100μlをフィルタユニット3回洗浄します。最後の洗浄は、1:100（w / w）の酵素対タンパク質比でトリプシン0.4μgの/μLを加え、37℃でO / Nインキュベートした後に
- 第10分間14,000×gでフィルタユニットや遠心分離機に50 mMのABC溶液40μlを添加することにより、消化物からのトリプシンペプチドを溶出させる。このステップ1Xを繰り返します。
- に0.5MのNaCl溶液50μlを追加10分間14,000×gで、フィルタ部と遠心。新鮮なマイクロチューブにトリプシンペプチドを含む濾液を転送し、1.0％のFAで酸性化する。
- 試料は、標準としてBSAを用いてマイクロプレート比色アッセイを用いて定量することができる。
3。 FASPを使用して全溶解液のエンドプロテアーゼのLysCとトリプシンタンパク質消化
- 直接30Kスピンフィルターに4％のSDS、100mMのトリス-HCl、pHが7.6および0.1M DTTを含む蝸牛タンパク質抽出物30μlのアリコート（400μgの≤）を追加し、トリス塩酸8 M尿素を200μlと混合。 15分間14,000×gで遠心分離する。
- 15分間14,000×gで8 M尿素水溶液遠心200μLの濃縮物を希釈する。
- 1分間のフィルターと渦に集中する8 M尿素溶液中で10倍IAAの10μlを加える。暗闇の中で室温で20分間スピンフィルターをインキュベートし、10分間14,000×gで遠心する。
- 8 M尿素ゾルの100μLを追加15分間14,000×gでフィルタユニットや遠心分離機に集中するution。このステップの2倍を繰り返します。 10分間14,000×gでフィルタユニットや遠心分離機に100 mMの、ABC溶液100μlを加える。このステップの2倍を繰り返します。
- 1時50分（w / w）の酵素対タンパク質比でエンドプロテアーゼのLysC0.1μgの/μLを加え、30℃でO / Nインキュベート
- インキュベーションに続いて、10分間14,000×gでフィルタユニットや遠心分離機に100 mMの、ABC溶液40μlを加える。このステップ1Xを繰り返します。
- 10分間14,000×gでスピンフィルターと遠心分離機に0.5MのNaCl溶液50μlを追加します。新鮮なマイクロチューブにするlysCペプチドを含むろ液を移し、消化を停止するために1.0％のFAで酸性化する。
- 8 M尿素40μlのフィルターユニットを洗浄し、次に40μlの18MΩ水で2回洗う。
- 50 mMのABC溶液100μlをフィルタユニット3回洗浄します。最後の洗浄の後1:100酵素·ツー·プロトリプシン0.4μgの/μLを追加テイン比と37℃でO / Nインキュベート
- 10分間14,000×gでフィルタユニットや遠心分離機に50 mMのABC溶液40μlを添加することにより、トリプシンペプチドを溶出。このステップ1Xを繰り返します。
- 10分間14,000×gでフィルタユニットや遠心分離機に0.5MのNaCl溶液50μlを追加します。新鮮なマイクロチューブにトリプシンペプチドを含む濾液を転送し、1.0％のFAで酸性化する。
- 試料は、標準としてBSAを有するマイクロプレート比色アッセイを用いて定量することができる。
4。スピンカラムを用いて脱塩ペプチド
- 1分間1100×gでアセトニトリル（ACN）と遠心分離機を500μlを加えることにより、C 18 MacroSpin欄をアクティブにします。遠心分離後、フロースルーを捨てる。
- 1分間1100×gで0.1％のFA遠心500μlでカラムを平衡化。フロースルーを捨て、このステップ1Xを繰り返します。
- ペプチドを500μlまで追加の列ANにダイジェスト1分間1100×gで遠心分離dは。サンプル量が500μL以上である場合は、この手順を繰り返します。
- 1分間1100×gで0.1％のFA遠心500μlでカラムを洗浄。フロースルーを捨てる。このステップ1Xを繰り返します。
- 1分間1100×gで列遠心90:10 ACN対水の比率を250μlを加える。脱塩したペプチドを含む溶離液を収集し、新鮮なマイクロチューブに移す。このステップ1Xを繰り返します。
- 真空遠心分離機で脱塩ペプチド試料を乾燥させ、完全にサンプルの乾燥をさせることは避けてください。
5。イオン交換クロマトグラフィー
- ペプチドを分離するために200×2.1ミリメートル、5ミクロンのSCXカラム（ポリスルホエチルA）に消化されたタンパク質試料の50〜100μgのを注入する。
- を250μl/分の流速で50分間にわたって2〜40％Bの勾配を使用する。溶媒Aは5 mMのギ酸アンモニウム、25％アセトニトリル中のpHが3.0と75％のddH 2 Oである。溶媒Bは、500 mMのギ酸アンモニウム、pHは25％ACNおよび75％のddH 2 O中に6.0
- 280nmでのペプチド画分を監視し、フラクションコレクターを使用して、2分間隔での画分を収集します。
- 塩除去を支 援するために、5％のFAを含むのddH 2 O中の50％アセトニトリル500μlの真空濃縮器および再懸濁の乾燥画分。
- ナノLC-MS/MS分析のために使用する準備まで-80℃でRedry画分と店舗。
6。アセトン沈殿
前にGELFrEE分離に蝸牛タンパク質上清を脱塩しなければなりません。アセトン沈殿、タンパク質を脱塩し、濃縮するために用いることができる。
- 蝸牛上清に氷冷アセトンの3ボリュームを追加します。優しくボルテックスし、-20°、CO / Nでインキュベート
- 遠心4℃で15分間15,000 xgでのサンプル混合物および上清を除去する。
- 4で5分間14,000×gで冷やしたアセトンと遠心分離機を用いたタンパク質ペレット3回洗う℃、
- ペレットを空気乾燥させ、18MΩの水を112μlに溶解する。
- マイクロプレート比色アッセイを用いてタンパク質濃度を決定します。
7。蝸牛感覚上皮のGELFrEE分別
- 5×試料緩衝液30μlを追加し（0.25 Mトリス-HCl、pH6.8、10％（w / v）のSDS、50％グリセロール、0.5％（w / v）のブロモフェノールブルー）18MΩの112μlに懸濁し、脱塩したタンパク質に水。
- タンパク質ジスルフィド結合を還元するために95℃で5分間、1M DTTおよび熱の8μlを加える。加熱後、室温まで冷却可能にします。
- アノードリザーバーにランニングバッファーを8mlの、収集チャンバをサンプリングするためにランニング緩衝液を150μl、及びカソードリザーバーにランニング緩衝液を6mlを加える。
- ピペットを用いてサンプルローディングチャンバ内に流入した可能性のあるバッファを削除します。
- 蝸牛タンパク質混合物の負荷150μL（≤1 mg）を、サンプルローディング室に8％Trのを使用して3.5から150 kDaの質量範囲を有するカートリッジアセテートである。
- 実行を開始するために下部電極と近い楽器蓋。
- 最初は陰極リザーバにランニング緩衝液2 mlを追加し、ファイル名を指定して実行を再開し、機器に時間を一時停止しました。
- 計器上の各一時停止間隔で、ピペットを用いて、サンプル収集チャンバーからサンプルを収集し、新たにラベルされたマイクロチューブに加える。ランニング緩衝液150μlで収集チャンバ2Xを洗って捨てる。
- サンプル収集室に新鮮なランニングバッファーを150μlを追加し、ファイル名を指定して実行を再開します。を150μl/画分の総体積の2.6時間の時間をかけてタンパク質画分を集める。
8。 GELFrEE分画の1Dゲル電気泳動
1Dゲル電気泳動は、従来の酵素消化およびMS分析にGELFrEE分画からの結果を可視化するために使用することができる。 GELFrEEタンパク質画分は、4〜15％トリス-HClゲル上で分離することができる。
9。 FASPを使用しGELFrEE画分のタンパク質消化
修飾FASP手順はGELFrEE画分の界面活性剤の除去、消化のために使用される。
- 8 Mトリス - 塩酸中の尿素および25分間14,000×gで遠心分離器を200μlと混合、直接30Kフィルタユニットに個々の部分を追加します。
- 尿素溶液200μlで濃縮液を希釈そして12分、14,000×gで遠心分離します。このステップ1Xを繰り返します。
- 各フィルタ·ユニット、1分間ボルテックスに集中する尿素溶液中で10倍IAAの10μl加え、暗所で室温で30分間インキュベートする。
- 15分間14,000×gでフィルタユニットや遠心分離機に集中する尿素溶液100μlを加える。このステップの2倍を繰り返します。フィルタユニット10分間14,000 xgで遠心分離器に100 mMの、ABC溶液100μlを加える。このステップの2倍を繰り返します。
- フィルターユニット1:50（w / w）の酵素対タンパク質比のためのLysC0.1μgの/μLを加え、30℃でO / Nインキュベート
- インキュベーションに続いて、10分間14,000×gでスピンフィルターと遠心分離機に100 mMの、ABC溶液40μlを加える。このステップ1Xを繰り返します。
- 10分間14,000×gでスピンフィルターと遠心分離機に0.5MのNaCl溶液50μlを追加します。新鮮なマイクロチューブに各スピンフィルターからのlysCペプチドを含むろ液を移し、trifluoroacで酸性ポナルレスタット酢酸（TFA）。
- 40μlの18MΩ水で2回洗った後、8 M尿素40μlのスピンフィルターを洗ってください。
- スピンフィルターを50mMのABC溶液100μlで3回洗浄します。最後の洗浄の後1:100（w / w）の酵素対タンパク質比でトリプシン0.4μgの/μLを加え、37℃でO / Nインキュベート
- 10分間14,000×gで50 mMのABCソリューションや遠心分離機の40μLを追加することにより、各フィルタユニットからトリプシンペプチドを溶出させる。このステップ1Xを繰り返します。
- フィルタユニット10分間14,000×gで遠心分離機に0.5MのNaCl溶液50μlを加える。新鮮なマイクロチューブに各フィルタ·ユニットからのトリプシンペプチドを含む濾液を転送し、TFAで酸性化する。
- 真空濃縮器内のすべてのダイジェストを乾燥させます。
10。 LC-MS/MS用サンプルの調製
- 乾燥したのLysCおよびトリプシンペプチドを再構成すると、0.1％のFAと渦の20μlの画分を消化。
- 10 20,000×gで遠心分離サンプル分とは、新しいサンプルバイアルにサンプルの上部95％を削除します。
- 塩および汚染物質を除去し、75ミクロン×10cmのC 18カラムクロマトグラフ分離を実行するためには100μmのX 25ミリメートルのサンプル·トラップ上に各々のペプチド画分の5μLを注入する。
- 200リットル/分の流量で100分かけて2〜40％Bの勾配を使用する。溶媒Aは95％のddH 2 Oおよび0.1％FAを含む5％のアセトニトリルである。溶媒Bは80％ACNおよび0.1％FAを含有する20％のddH 2 Oである。
- 各MSは、高分解能質量分析計で走査するための10のタンデム質量スペクトルを収集する。 LTQオービトラップ質量分析計は、この実験で使用した。
11。タンパク質同定
- フォワードおよびタンパク質配列と共通の汚染物質を逆の両方を含むUniProtのマウスデータベースを使用してタンパク質を同定する。 MASCOT検索エンジンとMaxQuantソフトウェアは、タンパク質データベースを検索するために使用される。
- 使用可能な検索パラメータには、固定modificシステインのカルバミドメチルのATION、メチオニンの酸化の変数の変更は、タンパク質のN末端アセチル化、2の最大値は切断を逃した。識別のために考慮すべき最小のペプチドの長さが6アミノ酸である。 ±8 ppmおよび1.2 DA（質量誤差は、質量分析計を使用しているに依存します）のフラグメント質量許容のペプチド質量濃度誤差を入力してください。
- MaxQuantソフトウェアでは、ペプチドおよびタンパク質同定のために1％の偽発見率（FDR）を使用する。タンパク質同定は、一致したペプチドの数、パーセントタンパク質配列カバー率、およびペプチド配列でリストアップされている。
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Representative Results
蝸牛感覚上皮の最も包括的なプロテオームを得るためには、迅速な組織切開前タンパク質抽出およびサンプル調製に必要とされている。二つのプロテオミクス技術は、ショットガンとボトムアッププロテオミクスを使用することができる。 図1に示すように、ショットガンプロテオミクスのための試料を調製し、FASP消化手順を使用した。 FASP法は、タンパク質の濃度、界面活性剤の除去、および複数の酵素を用いたタンパク質の消化を可能にします。最初は、プールされた18分画にSCXカラム上で分画し、ナノLC-MS/MSにより分析したトリプシンでの第二の消化、続いてトリプシン消化した使用2重消化手順がありました。この実験的なアプローチを使用して単一LC-MS/MS実行を行うときに1485のタンパク質の総量を、1％FDRで同定された。同定されたタンパク質のうち、329及び258のタンパク質（ 図それぞれ、ミトコンドリアおよび原形質膜に分類された2A）。二重消化手順は、トリプシン消化に続いてのlysC消化で構成されていた。各消化物は、個々にロードされ、SCXカラム上で分離した18のフラクションにナノLC-MS/MSにより分析した。のLysC及びトリプシン消化の結果は、1％のFDRで3,503全体タンパク質を産生した。 図2Bは、605及び617のタンパク質がそれぞれ、ミトコンドリアおよび原形質膜に分類されたことを示している。このアプローチは、膜結合タンパク質IDの最大数を提供した。のLysCおよびトリプシン画の複製分析が同定されたタンパク質の65％以上が、実験の間で共有された示した。しかし、反復分析において新たに同定されたタンパク質もありました。追加のペプチドおよびタンパク質は、したがって、断片化のために25の異なるペプチドをもたらすによるクロマトグラフィーの小さな変化を同定した。
ボトムアッププロテオミクスはGELFrEE分別を使用して適用した図3に示すように先立ってLC-MS/MS。収集された12 GELFrEE画がありました。従来消化およびLC-MS/MS分析に、銀染色したゲルは、図4に示すようにGELFrEE分画からの結果を可視化するために調製した。ゲルは、連続した各画分について分子量を増加させることによってタンパク質の分離を示した。したがって、12 GELFrEE液体留分は、2つの異なるマルチFASP消化アプローチを用いて消化し、LC-MS/MSによって分析した。最初の消化のアプローチは、単一のランLC-MS/MSを行う際に、1％FDRで2,165タンパク質の同定につながったダブルトリプシン消化を用いて行った。 図5Aは、ミトコンドリアに分類516及び399のタンパク質があったことを示している原形質膜であった。第二のアプローチは、消化トリプシン消化に続いてエンドプロテイナーゼのLysCを用いて行った。単一走行LC-MS/MS分析は、1％のFDRと2211のタンパク質を同定した。このアプローチは、トリプシン/トリプシンのアプローチ（ 図5B）を使用したときのように膜結合タンパク質の同様の数を示した。質量分析プロテオミクスデータは、データ·セット識別子PXD000231 25 ProteomeXchangeコンソーシアム26に寄託されている。異なる技術からの結果を組み合わせることは、マウス蝸牛感覚上皮（ 図6）からの膜の数が多く、可溶性タンパク質をもたらした。
図1 FASP、イオン交換クロマトグラフィー、および高分解能MSを用いてショットガンプロテオミクス実験の模式図。タンパク質は、抽出、可溶化、およびのLysC及びトリプシンエンドプロテイナーゼでFASPを使用して消化する。のLysC（緑チューブ）およびトリプシンペプチド（紫チューブ）をSCXクロマトグラフィーを用いてより複雑でない画分に分離し、ナノLC-MS/MSを用いて分析する。 Mascot検索エンジンは、タンパク質同定のためのMSデータを処理するために使用された。 拡大画像を表示するにはここをクリックしてください。
SCX分離およびSCX分離、続いてトリプシンを有する第2の消化、続いてのLysCと（B）第一の消化、続いてトリプシンで（A）は、第1および第2の消化を行う際に図2のタンパク質IDの細胞成分のプロファイルをGO。全てのカテゴリがカウントされる非排他的に、タンパク質は、細胞成分のための複数のカテゴリを有する場合。es.jpg "ターゲット=" _blank ">拡大画像を表示するにはここをクリックしてください。
図3 GELFrEE、FASP、高分解能MSを用いてボトムアッププロテオミクス実験の模式図。抽出タンパク質が可溶化され、タンパク質を溶解物から塩および望ましくない汚染物質を除去するためにアセトン（青色チューブ）を用いて沈殿させる。タンパク質ペレットを可溶化したタンパク質はGELFrEEを使用して分画する。各画分のLysCおよびトリプシンのエンドプロテイナーゼでFASPを使用して消化した。のLysC（緑チューブ）、各画分からのトリプシンペプチド（紫色のチューブ）は、MASCOTを使用してMSのデータを検索することによって同定ナノLC-MS/MSおよびタンパク質を用いて分析する。 大型見るにはここをクリックしてください R画像。
図4。従来MS分析を、各画分中のタンパク質の分離を視覚化する蝸 牛感覚上皮のGELFrEE画分の銀染色ゲル。（M）タンパク質マーカー、（1）画分1、（3）フラクション2、（5）画分5、（7）画分7、（8）画分8、（9）画分9、（10）画分10、（11）画分11、（12）フラクション12。 DarvilleとSokolowskiは24の許可を得て（適応）復刻。アメリカ化学会によって著作権2013。 拡大画像を表示するにはここをクリックしてください。
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図5。GELFrEE分離と、（B）GELFrEE分離後のトリプシンを用いた第二の消化に続いてのLysCとの最初の消化後トリプシンで、（A）は、第1および第2の消化を行う際に、タンパク質IDの細胞成分のプロファイルを移動します。すべてのカテゴリが、非排他的にカウントされ、タンパク質は細胞成分のために複数のカテゴリがある場合。 拡大画像を表示するにはここをクリックしてください。
図6。 SCX、ワックス、またはGELFrEE分離を使用して識別されたすべてのタンパク質の細胞成分のプロファイルを移動します。タンパク質は細胞成分のために複数のカテゴリ、そのcategorieのすべてを持っていたときSは、非排他的にカウントした。 拡大画像を表示するにはここをクリックしてください。
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Discussion
蝸牛感覚上皮からタンパク質同定を最大化するための鍵な手順は次のとおりです。消化、複数の分離技術の2）を使用し、高分解能質量分析計の3）利用のために複数のエンドプロテイナーゼの1）を使用します。複数の酵素の適用は、ペプチドの数を増加させ、タンパク質配列カバー率を向上させ、ひいては蝸牛組織から同定されたタンパク質の数を向上させることができる。トリプシン、最も一般的に使用されるプロテアーゼは、MSのイオン化及び断片化するのに適していたペプチドを生成し、タンパク質の効率的かつ特異的な切断を提供しています。しかし、このような、より効率的なペプチド切断を提供リジン残基でも切断する、のLysC、のように、従来のトリプシンに別の酵素を使用した。これは、のLysC /トリプシン消化から生成されたタンパク質の配列カバレッジがトリプシン/トリプシン消化物からのタンパク質配列カバー率に対するタンパク質配列カバー率の相対的な増加を示したことが観察された。
前のMSへの多次元分離のove_content ">インプリこれは、典型的には識別するのが困難である膜タンパク質を含む、複数のタンパク質の同定を可能にした。ショットガンプロテオミクスアプローチにおいて高い蝸牛試料の複雑性を低減。膜タンパク質のより大きな数が使用して同定したボトムアップ·アプローチとは対照的に、散弾銃のアプローチが、より低濃度タンパク質の同定のための許可GELFrEEを用いたボトムアップアプローチが。これは、蝸牛から、個々にcochlinとして高い豊富なタンパク質の単離に起因している画分。例えばLTQ-オービトラップのような高分解能質量分析計によって、本プロトコルで達成される高い品質データ、蝸牛で同定することができるタンパク質の数を改善し、増加させる。 LTQ-オービトラップは、高分解能、高質量精度、およびペプチドの分析のための高感度を提供しています。この楽器ENABのため、アプリケーションレのような蝸牛感覚上皮のような複雑な生物学的サンプルからのタンパク質の同定と、低豊富なペプチドの同定を向上させます。 MSの強力なツールでこれらの組み合わせの実験的アプローチの利用は、したがって、聴覚や難聴に関与する新規タンパク質バイオマーカーを同定する機会を改善し、大幅に蝸牛タンパク質データセットを増やすことができます。
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Disclosures
著者らは、競合する利害を宣言していません。
Acknowledgments
著者は、博士ケントシーリー、この機能を使用するための南フロリダ大学の創薬イノベーションセンター（CDDI）プロテオミクス基盤施設のディレクターに感謝します。この作品は、BHASにNIH / NIDCD助成R01 DC004295によってサポートされていました
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 8% Tris-acetate cartridge | Protein Discovery | 42103 | |
| Acetone | Sigma-Aldrich | 179124 | |
| Acetonitrile | Honeywell | 015-1L | |
| AEBSF | Calbiochem | 101500 | |
| Ammonium formate | Fisher Scientific | AC16861 | |
| Aprotinin | Calbiochem | 616370 | |
| ASB-14 | Calbiochem | 182750-5GM | |
| Bovine serum albumin | BioRad | 500-0112 | |
| C18 column | New Objective | A25112 | 75 μm x 10 cm |
| DC Protein Assay | BioRad | 500-0116 | Microplate Assay Protocol |
| EDTA | Sigma-Aldrich | E9884 | |
| Endoproteinase Lys-C | Sigma-Aldrich | P3428 | |
| FASP Protein Digestion Kit | Protein Discovery | 44250 | |
| Formic acid | Fluka | 94318 | |
| GELFrEE Fractionation System | Protein Discovery | 42001 | GELFrEE 8100 |
| Leupeptin | Calbiochem | 108975 | |
| MacroSpin Column | The Nest Group | SMM SS18V | Silica C18 |
| Microcystin | Calbiochem | 475815 | |
| Pepstatin | Sigma-Aldrich | P5318 | |
| Polysulfoethyl A Column | The Nest Group | 202SE0503 | |
| Sodium dodecyl sulfate (SDS) | Sigma-Aldrich | L3771 | |
| Sonic Dismembrator | Thermo Fisher | 15-338-53 | Model 100 |
| Trypsin | Sigma-Aldrich | T6567 | Proteomics Grade |
References
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