Summary

TIRF 현미경을 통해 단일 ​​이벤트 해상도에서 G 단백질 결합 수용체의 Clathrin 매개 엔도 시토 시스를 시각화

Published: October 20, 2014
doi:

Summary

Clathrin-mediated endocytosis, a rapid and highly dynamic process internalizes many proteins, including signaling receptors. The protocol described here directly visualizes the kinetics of individual endocytic events. This is essential for understanding how core members of the endocytic machinery coordinate with each other, and how protein cargo influence this process.

Abstract

Many important signaling receptors are internalized through the well-studied process of clathrin-mediated endocytosis (CME). Traditional cell biological assays, measuring global changes in endocytosis, have identified over 30 known components participating in CME, and biochemical studies have generated an interaction map of many of these components. It is becoming increasingly clear, however, that CME is a highly dynamic process whose regulation is complex and delicate. In this manuscript, we describe the use of Total Internal Reflection Fluorescence (TIRF) microscopy to directly visualize the dynamics of components of the clathrin-mediated endocytic machinery, in real time in living cells, at the level of individual events that mediate this process. This approach is essential to elucidate the subtle changes that can alter endocytosis without globally blocking it, as is seen with physiological regulation. We will focus on using this technique to analyze an area of emerging interest, the role of cargo composition in modulating the dynamics of distinct clathrin-coated pits (CCPs). This protocol is compatible with a variety of widely available fluorescence probes, and may be applied to visualizing the dynamics of many cargo molecules that are internalized from the cell surface.

Introduction

clathrin 매개 엔도 시토 시스 (CME)의 과정은 소체 1-3에화물을 수집하고 세포막을 조작 clathrin-매개 된 세포 내 이입 기계의 다양한 컴포넌트뿐만 도착 타이밍에 의존한다. CME는 엔도 시토 시스 1의 초기 사이트에서 함께 와서 막 변형 및화물 어댑터 단백질에 의해 시작된다. 이러한 단백질은 clathrin 코팅 피트 (CCP) (4)을 형성 새장 형 구조로 어셈블 외피 단백질 clathrin를 모집. CCP가 완전히 주로 큰 GTPase, dynamin의 작용을 통해 구형, 막 분열로 조립되면, 무료 clathrin 코팅 소포 (CCVS) 5,6를 생성합니다. 이러한 내재화는 구성 요소의 여러 CME 라운드 동안 재사용 될 수 있도록 clathrin 코트의 신속한 분해를 트리거한다.

CME에 관여하는 단백질의 발견 및 특성화는 전통적인 생화학 뿌리되었습니다emical, 유전 및 현미경 기술 4-6,8. 이러한 분석법은 이러한 세포 내 이입 컴포넌트 역할과 상호 작용 지점을 해명 하였다. 인신 매매 기계의 필수 구성 요소를 정의하기위한 매우 유용하지만, 이러한 분석은 매우 CME 구성 요소 나화물 농도의 동적 동작을 캡처 제한됩니다. CME 정의 단계에서 단백질의 모듈 세트의 안무 조립체에 의해 구동되기 때문에 이것은 중요한 제한이 있으며, 개개의 세포 내 이입 이벤트 역학의 작은 변화는 세포 내 이입에 큰 누적 결과를 초래할 수 있기 때문이다. 또한, 최근의 데이터는 개별 CCPS이 과정의 생리적 조절이 높은 공간과 시간적으로 9-14 제약을 시사 조성과 행동 모두 다를 수 있음을 나타냅니다. 각각의 세포 내 이입 이벤트를 시각화 따라서, CME에 관련된 여러 중복 단백질과 방법이 단백질을 제어 할 수 있습니다 B가 이유를 이해하는 것이 필수적입니다Y 생리 학적 신호는화물 국제화를 조절합니다.

여기에서 우리는 살아있는 세포의 개별 CCPS의 역학의 수준에서 CME를 관찰하는 총 내부 반사 형광 현미경 (TIRFM)의 사용을 설명합니다. TIRFM는 유리 커버 슬립 셀 (15, 16)의 유체 환경 사이의 굴절율의 차이에 의존한다. 여기 광이 임계각 이상에서 세포쪽으로 이동 될 때, 내부적으로는 커버 슬립 위에 약 100 nm의 연장 조명 얇은 필드를 유지 소멸 파를 생성 반사된다. 이것은이 좁은 필드 내에서만 형광 분자가 흥분 보장합니다. 실제적으로, 이것은 나 세포막 근처 형광 물질의 여기를 허용하고, 셀의 내부 부분으로부터 형광을 최소화한다. 이것은 세포막 공동에서 이벤트를 시각화하는 상당히 높은 신호 대 잡음비 및 z 축 해상도를 제공종래의 표면 형광 또는 공 초점 형광 현미경으로 더 일반적으로 사용되는 모드로 mpared. 우리는 또한 입문 실용 레벨에서 설명하는, 일반적으로 사용되는 이미지 분석 플랫폼의 사용을 분석하고 간단한 형태 학적 특징 및 개별화물 세포 내 이입 이벤트 역학을 정량한다.

Protocol

찬란의 1 발현은 배양 된 세포에 CME 구성 요소 태그 HEK293 세포는 GPCR 생물학 및 세포 내 이입을 연구하기 위해 광범위하게 사용되고있다, 따라서이 프로토콜의 모델로 사용되는 유용한 모델 세포입니다. 과발현과 낮은 세포 독성이없는 균일 한 표현을 제공하는 형질 전환 프로토콜을 사용합니다. 멸균 층류 후드에있는 모든 세포 배양을 처리합니다. 10 % 소 태아 혈청 …

Representative Results

사용 라이브 셀 TIRF 현미경 우리는 μ-오피오이드 수용체 (MOR)의 세포 내 이입 역학을 녹음 한, G-단백질 결합 수용체 (GPCR)와 세포 내 이입 어댑터 단백질 β-arrestin. β-arrestin 구조체는 일시적으로도 1에 설명 된 프로토콜을 사용하여 안정하게 발현하는 MOR 세포주에 형질 전환하고, 96 시간 후 묘화 하였다. 안정적인 세포주의 MOR은 N-말단의 pH에​​ 민감한 GFP 태그입니다. 이 형광 단백질?…

Discussion

여기에서 우리는 실시간으로 살아있는 세포에서 개별 CCPS의 수준에서 clathrin 매개 엔도 시토 시스 (CME)를 시각화하는 TIRFM의 사용을 설명합니다. CME는 많은 공간적으로 시간적으로 별도의 개별 이벤트의 누적 효과에 의해 매개 신속하고 매우 동적 인 이벤트입니다. 이러한 내재화의 생화학 적 측정과 같은 현재 사용되는 대부분의 분석법, 표면 바이오 티 닐화 또는 리간드 결합, 유동 세포 계측법 ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to thank Drs. C. Szalinski, H. Teng, and M. Bruchez for help with Imaris, R. Vistein, and D. Shiwarski for technical help and advice, and Dr. M von Zastrow, Dr. T Kirchhausen, Dr. D Drubin, and Dr. W Almers for reagents and helpful discussion. Funding provided by T32 grant NS007433 to SLB and NIH DA024698 and DA036086 to MAP.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
DMEM/High Glucose with L-glutamine and sodium pyruvate Fisher Scientific  SH3024301
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (DPBS), no calcium, no magnesium Gibco, by Life Technologies 21600-010
EDTA Free Acid Amresco 0322-500G
Fetal Bovine Serum Gibco, by Life Technologies 10437-028
Leibovitz's L-15 Medium, no phenol red Gibco, by Life Technologies 21083-027
Opti-MEM Gibco, by Life Technologies
HEPES CellPURE by Fisher Scientific  BP2937-100
Effectene  Qiagen 301425 Transfection reagent
25 millimeter coverglass Fisher Scientific  12-545-86 
Corning cell culture treated flasks, 25cm2 Fisher Scientific  10-126-28
Cell culture 6-well plate Greiner Bio-One, by VWR 82050-896
Monoclonal ANTI-FLAG M1 Sigma Aldrich F3040-5MG
[D-Ala2, N-Me-Phe4, Gly5-ol]-Enkephalin acetate salt (DAMGO) Sigma Aldrich E7384-5MG
Alexa Fluor 647 Protein Labeling Kit Life Technologies A20173
ImageJ NIH http://rsb.info.nih.gov/ij/
Imaris Image analysis software BitPLane http://www.bitplane.com/imaris/imaris, for automated analysis
Nikon Eclipse Ti inverted microscope and required accessories including filter cubes and filters Nikon
Nikon TIRF arm with required adapters for Nikon Eclipse Ti Nikon For adjusting angle of incidence
iXon+ EMCCD camera and adapters Andor

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Soohoo, A. L., Bowersox, S. L., Puthenveedu, M. A. Visualizing Clathrin-mediated Endocytosis of G Protein-coupled Receptors at Single-event Resolution via TIRF Microscopy. J. Vis. Exp. (92), e51805, doi:10.3791/51805 (2014).

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