Summary

Визуализация клатрином эндоцитоза из G-белками в Single-событий резолюции через TIRF микроскопии

Published: October 20, 2014
doi:

Summary

Clathrin-mediated endocytosis, a rapid and highly dynamic process internalizes many proteins, including signaling receptors. The protocol described here directly visualizes the kinetics of individual endocytic events. This is essential for understanding how core members of the endocytic machinery coordinate with each other, and how protein cargo influence this process.

Abstract

Many important signaling receptors are internalized through the well-studied process of clathrin-mediated endocytosis (CME). Traditional cell biological assays, measuring global changes in endocytosis, have identified over 30 known components participating in CME, and biochemical studies have generated an interaction map of many of these components. It is becoming increasingly clear, however, that CME is a highly dynamic process whose regulation is complex and delicate. In this manuscript, we describe the use of Total Internal Reflection Fluorescence (TIRF) microscopy to directly visualize the dynamics of components of the clathrin-mediated endocytic machinery, in real time in living cells, at the level of individual events that mediate this process. This approach is essential to elucidate the subtle changes that can alter endocytosis without globally blocking it, as is seen with physiological regulation. We will focus on using this technique to analyze an area of emerging interest, the role of cargo composition in modulating the dynamics of distinct clathrin-coated pits (CCPs). This protocol is compatible with a variety of widely available fluorescence probes, and may be applied to visualizing the dynamics of many cargo molecules that are internalized from the cell surface.

Introduction

Процесс клатрин эндоцитоза (CME) зависит от своевременного прибытия многих компонентов клатрин опосредованного эндоцитоза машин для сбора грузов и манипулировать плазматическую мембрану в пузырьки 1-3. CME инициируется мембрана деформации и грузо-адаптера белков, которые приходят вместе в зарождающихся сайтов эндоцитоза 1. Эти белки набирать клатрин белка оболочки, который собирает в клетку-подобную структуру, которая образует клатриновых яму (КПК) 4. После того, как КПК полностью собран в сферическую форму, мембраны разрыва, в первую очередь через действия большого GTPase, динамина, генерирует свободные клатриновых везикулы (CCVS) 5,6. Это вызывает интернализацию быстрому распаду в клатрин покрытия, что позволяет компонентам быть повторно использован для множества циклов CME.

Открытие и характеристика белков, участвующих в CME была корни в традиционной Biochemical, генетические и методы микроскопии 4-6,8. Эти анализы выяснены роли и точки взаимодействия этих эндоцитотических компонентов. Хотя очень полезно для определения основных компонентов торговли машинами, эти анализы весьма ограничены в захвате динамического поведения компонентов CME или концентрации грузов. Это очень важный ограничение, так как CME движет хореографии сборке комплектов белковых модулей в определенных шагов, и, так как небольшие изменения в динамике отдельных эндоцитотических событий может иметь большие совокупные последствия эндоцитоза. Кроме того, недавние данные показывают, что отдельные ККТ могут отличаться как по составу, так и в поведении, предполагая, что физиологическое регулирование этого процесса весьма пространстве и во времени ограничены 9-14. Визуализация отдельных эндоцитотических события, поэтому, очень важно понять, почему существует несколько избыточные белки, участвующие в CME и как эти белки могут контролироваться бу физиологические сигналы для регулирования грузовой интернационализации.

Здесь мы опишем использование полного внутреннего отражения флуоресцентной микроскопии (TIRFM) наблюдать CME на уровне динамики отдельных ККТ в живых клетках. TIRFM опирается на разность показателей преломления между покровным стеклом и жидкую окружающую среду клеток 15,16. Когда возбуждающий свет направлен клеток на более, чем критический угол, она внутреннее отражение, создавая затухани волн, который поддерживает тонкую область освещения, проходящую приблизительно 100 нм выше покровного стекла. Это гарантирует, что только флуоресцентных молекул в этой узкой области возбуждены. Практически, это позволяет возбуждение флуоресцентных молекул на территории или вблизи плазматической мембраны, и сводит к минимуму флуоресценции из внутренних частей клетки. Это обеспечивает значительно более высокий коэффициент сигнал-шум и ось г разрешение для визуализации событий на плазмалеммы, товарищескойmpared для наиболее часто используемых режимах, таких как обычной эпифлуоресцентной или конфокальной флуоресцентной микроскопии. Мы также описать, в вступительного и практическом уровне, использование широко применяемого платформы анализа изображений для анализа и количественного простые морфологические особенности и динамику отдельных событий грузов эндоцитотических.

Protocol

1 Выражение флуоресцентно меткой CME компонентов в культивируемых клетках НЕК293 полезные модели клетки, которые были использованы широко изучать GPCR биологию и эндоцитоз, и поэтому используются в качестве моделей в этом протоколе. Используйте любой протокол трансфекции, о…

Representative Results

Использование живых клеток TIRF микроскопии мы записали эндоцитотического динамику μ-опиоидных-рецептора (МЖД), G-белком рецептор (GPCR) и его эндоцитотический адаптер белок β-arrestin. Β-arrestin конструкцию временно трансфицировали в клетки, стабильно экспрессирующие линии MOR, используя протоко?…

Discussion

Здесь мы опишем использование TIRFM визуализировать клатрином опосредованный эндоцитоз (CME) на уровне индивидуальной ККТ в живых клетках в реальном времени. CME является быстрым и очень динамичным событием посредничестве кумулятивного эффекта многие пространстве и во времени отдельных ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to thank Drs. C. Szalinski, H. Teng, and M. Bruchez for help with Imaris, R. Vistein, and D. Shiwarski for technical help and advice, and Dr. M von Zastrow, Dr. T Kirchhausen, Dr. D Drubin, and Dr. W Almers for reagents and helpful discussion. Funding provided by T32 grant NS007433 to SLB and NIH DA024698 and DA036086 to MAP.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
DMEM/High Glucose with L-glutamine and sodium pyruvate Fisher Scientific  SH3024301
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (DPBS), no calcium, no magnesium Gibco, by Life Technologies 21600-010
EDTA Free Acid Amresco 0322-500G
Fetal Bovine Serum Gibco, by Life Technologies 10437-028
Leibovitz's L-15 Medium, no phenol red Gibco, by Life Technologies 21083-027
Opti-MEM Gibco, by Life Technologies
HEPES CellPURE by Fisher Scientific  BP2937-100
Effectene  Qiagen 301425 Transfection reagent
25 millimeter coverglass Fisher Scientific  12-545-86 
Corning cell culture treated flasks, 25cm2 Fisher Scientific  10-126-28
Cell culture 6-well plate Greiner Bio-One, by VWR 82050-896
Monoclonal ANTI-FLAG M1 Sigma Aldrich F3040-5MG
[D-Ala2, N-Me-Phe4, Gly5-ol]-Enkephalin acetate salt (DAMGO) Sigma Aldrich E7384-5MG
Alexa Fluor 647 Protein Labeling Kit Life Technologies A20173
ImageJ NIH http://rsb.info.nih.gov/ij/
Imaris Image analysis software BitPLane http://www.bitplane.com/imaris/imaris, for automated analysis
Nikon Eclipse Ti inverted microscope and required accessories including filter cubes and filters Nikon
Nikon TIRF arm with required adapters for Nikon Eclipse Ti Nikon For adjusting angle of incidence
iXon+ EMCCD camera and adapters Andor

References

  1. McMahon, H. T., Boucrot, E. Molecular mechanism and physiological functions of clathrin-mediated endocytosis. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 12 (8), 517-533 (2011).
  2. Kaksonen, M., Toret, C. P., Drubin, D. G. A Modular Design for the Clathrin- and Actin-Mediated Endocytosis Machinery. Cell. 123 (2), (2005).
  3. Taylor, M. J., Perrais, D., Merrifield, C. J. A High Precision Survey of the Molecular Dynamics of Mammalian Clathrin-Mediated Endocytosis. PLoS Biology. 9 (3), (2011).
  4. Ungewickell, E., Branton, D. Assembly units of clathrin coats. Nature. 289 (5796), 420-422 (1981).
  5. Bliek, A. M., Meyerowrtz, E. M. Dynamin-like protein encoded by the Drosophila shibire gene associated with vesicular traffic. Nature. 351 (6325), (1991).
  6. Hinshaw, J. E., Schmid, S. L. Dynamin self-assembles into rings suggesting a mechanism for coated vesicle budding. Nature. 374 (6518), (1995).
  7. Merrifield, C. J., Perrais, D., Zenisek, D. Coupling between Clathrin-Coated-Pit Invagination, Cortactin Recruitment, and Membrane Scission Observed in Live Cells. Cell. 121 (4), 593-606 (2005).
  8. Grabs, D., Slepnev, V. I., et al. The SH3 domain of amphiphysin binds the proline-rich domain of dynamin at a single site that defines a new SH3 binding consensus sequence. The Journal of biological chemistry. 272 (20), 13419-13425 (1997).
  9. Tosoni, D., Puri, C., et al. TTP Specifically Regulates the Internalization of the Transferrin Receptor. Cell. 123 (5), 875-888 (2005).
  10. Puthenveedu, M. A., von Zastrow, M. Cargo Regulates Clathrin-Coated Pit Dynamics. Cell. 127 (1), 113-124 (2006).
  11. Soohoo, A. L., Puthenveedu, M. A. Divergent modes for cargo-mediated control of clathrin-coated pit dynamics. Molecular Biology of the Cell. 24 (11), 1725-1734 (2013).
  12. Posor, Y., Eichhorn-Gruenig, M., et al. Spatiotemporal control of endocytosis by phosphatidylinositol-3,4-bisphosphate. Nature. 10, (2013).
  13. Mettlen, M., Stoeber, M., Loerke, D., Antonescu, C. N., Danuser, G., Schmid, S. L. Endocytic accessory proteins are functionally distinguished by their differential effects on the maturation of clathrin-coated pits. Molecular Biology of the Cell. 20 (14), 3251-3260 (2009).
  14. Loerke, D., Mettlen, M., et al. Cargo and dynamin regulate clathrin-coated pit maturation. PLoS Biology. 7 (3), (2009).
  15. Axelrod, D. Cell-substrate contacts illuminated by total internal reflection fluorescence. The Journal of Cell Biology. 89 (1), 141-145 (1981).
  16. Merrifield, C. J., Feldman, M. E., Wan, L., Almers, W. Imaging actin and dynamin recruitment during invagination of single clathrin-coated pits. Nature Cell Biology. 4 (9), 691-698 (2002).
  17. Ehrlich, M., Boll, W., et al. Endocytosis by random initiation and stabilization of clathrin-coated pits. Cell. 118 (5), 591-605 (2004).
  18. Yarar, D., Waterman-Storer, C. M., Schmid, S. L. A dynamic actin cytoskeleton functions at multiple stages of clathrin-mediated endocytosis. Molecular Biology of the Cell. 16 (2), 964-975 (2005).
  19. Rappoport, J. Z., Kemal, S., Benmerah, A., Simon, S. M. Dynamics of clathrin and adaptor proteins during endocytosis. American journal of physiology. Cell physiology. 291 (5), (2006).
  20. Doyon, J. B., Zeitler, B., et al. Rapid and efficient clathrin-mediated endocytosis revealed in genome-edited mammalian cells. Nature Cell Biology. 13 (3), 331-337 (2011).
  21. Hopp, T. P., Prickett, K. S., et al. A Short Polypeptide Marker Sequence Useful for Recombinant Protein Identification and Purification. Bio/Technology. 6 (10), 1204-1210 (1988).
  22. Miesenböck, G., De Angelis, D. A., Rothman, J. E. Visualizing secretion and synaptic transmission with pH-sensitive green fluorescent proteins. Nature. 394 (6689), 192-195 (1998).
  23. Saffarian, S., Cocucci, E., Kirchhausen, T. Distinct Dynamics of Endocytic Clathrin-Coated Pits and Coated Plaques. PLoS Biology. 7 (9), (2009).
  24. Yudowski, G., Puthenveedu, M., Henry, A., von Zastrow, M. Cargo-Mediated Regulation of a Rapid Rab4-Dependent Recycling Pathway. Molecular Biology of the Cell. 1, 1-11 (2009).
  25. Batchelder, E. M., Yarar, D. Differential Requirements for Clathrin-dependent Endocytosis at Sites of Cell-Substrate Adhesion. Molecular Biology of the Cell. 21 (17), 3070-3079 (2010).
  26. Mattheyses, A. L., Atkinson, C. E., Simon, S. M. Imaging Single Endocytic Events Reveals Diversity in Clathrin, Dynamin and Vesicle Dynamics. Traffic. 12 (10), 1394-1406 (2011).
  27. Aguet, F., Antonescu, C. N., Mettlen, M., Schmid, S. L., Danuser, G. Advances in analysis of low signal-to-noise images link dynamin and AP2 to the functions of an endocytic checkpoint. Dev Cell. 26 (3), 279-291 (2013).
  28. Boucrot, E., Howes, M. T., Kirchhausen, T., Parton, R. G. Redistribution of caveolae during mitosis. J Cell Sci. 124, 1965-1972 (2011).
  29. Bhaya, D., Davison, M., Barrangou, R. CRISPR-Cas systems in bacteria and archaea: versatile small RNAs for adaptive defense and regulation. Annual review of genetics. 45, 273-297 (2011).
  30. Boch, J., Scholze, H., et al. Breaking the Code of DNA Binding Specificity of TAL-Type. III Effectors. Science. 326 (5959), 1509-1512 (2009).
check_url/51805?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Soohoo, A. L., Bowersox, S. L., Puthenveedu, M. A. Visualizing Clathrin-mediated Endocytosis of G Protein-coupled Receptors at Single-event Resolution via TIRF Microscopy. J. Vis. Exp. (92), e51805, doi:10.3791/51805 (2014).

View Video