Summary

Técnicas de muestreo de sangre no terminal en los conejillos de Indias

Published: October 11, 2014
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Summary

Aunque un modelo conocido, el conejillo de indias en la actualidad representa un nicho en las ciencias experimentales en animales y datos limitados está disponible en la ejecución de la mayoría de los procedimientos. Aquí presentamos cuatro enfoques diferentes para no terminal en las técnicas de muestreo de sangre in vivo, ya sea en cobayas conscientes o anestesiados.

Abstract

Los conejillos de indias poseen varias similitudes biológicas a los seres humanos y se validan los modelos animales experimentales 1-3. Sin embargo, el uso de conejillos de indias actualmente representa un área relativamente estrecha de datos de investigación y descriptivos sobre la metodología específica es correspondientemente escasa. Las características anatómicas de los conejillos de Indias son un poco diferente de otros modelos de roedores, por lo tanto, la modulación de las técnicas de muestreo para dar cabida a las diferencias específicas de cada especie, por ejemplo., En comparación con los ratones y las ratas, son necesarias para obtener muestras suficientes y de alta calidad. Como tanto a largo como a corto plazo en los estudios in vivo a menudo requieren repetir el muestreo de sangre la elección de la técnica debe ser bien considerado con el fin de reducir el estrés y el malestar en los animales, sino también para asegurar la supervivencia, así como el cumplimiento de los requisitos de tamaño de la muestra y la accesibilidad. Muestras de sangre venosa se ​​pueden obtener en un número de sitios en los conejillos de indias por ejemplo., La safena y yugularvenas, cada técnica que contiene tanto ventajas como desventajas 4,5. A continuación, presentamos cuatro técnicas de muestreo de sangre diferentes, ya sea para cobayas conscientes o anestesiados. Los procedimientos son los procedimientos no terminales siempre que los volúmenes de muestra y número de muestras no exceden las directrices para la recogida de sangre en animales de laboratorio 6. Todos los métodos descritos han sido probados y solicitado repetido en el muestreo de sangre in vivo en los estudios dentro de nuestro centro de investigación a fondo.

Introduction

La cobaya es un modelo animal experimental valiosa y validado debido a un número de similitudes biológicas a los seres humanos, tales como un requisito para un suministro dietético de la vitamina C, la lipoproteína de plasma comparables enzimas metabolizadoras y perfiles de lipoproteínas, así como similitudes compartidas con placentación humana y 1-3,7,8 desarrollo prenatal. Esto hace que el conejillo de indias un modelo atractivo y conveniente para efectos de las enfermedades asociadas a la dieta tales como la enfermedad no alcohólica del hígado graso, las enfermedades cardiovasculares y los efectos putativos de la deficiencia de vitamina C, sino también el efecto de, por ejemplo estudiando., Intervención dietética materna en el desarrollo descendencia.

Muestreo de sangre repetida a menudo se requiere tanto a largo como a corto plazo en los estudios in vivo. Debido a las diferencias anatómicas específicas de las especies es necesaria la modulación de la técnica de muestreo para obtener muestras de sangre en los conejillos de indias en comparación con otros modelos de roedores <sup> 4,5. Esto incluye la variación en el curso de las venas y arterias, y también que los conejillos de indias no tienen una cola, por lo tanto tiene diferentes requisitos y opciones tanto para el muestreo y la manipulación. El muestreo de la safena o vena tarsal, induce mínimas molestias y el estrés en el animal y no requiere anestesia 3,9. Esta técnica permite que las muestras de pequeñas cantidades de sangre (100-400 l), por ejemplo repitió., Para determinar los marcadores bioquímicos en el plasma. Si un tamaño de muestra incluso más pequeño es suficiente (50-100 l), esto con bastante facilidad puede obtenerse por punción de la vena de la oreja. Esta técnica también se puede llevar a cabo en animales conscientes y es útil por ejemplo cuando se mide la glucosa en sangre 10,11. El muestreo de la vena yugular permite colección de grandes cantidades de sangre (1-2 ml), pero requiere anestesia.

A continuación, presentamos cuatro técnicas de muestreo de sangre diferentes, ya sea para cobayas conscientes o anestesiados. El procedures son todos los procedimientos no terminales siempre que los volúmenes de muestra y número de muestras no exceden las directrices para la recogida de sangre en animales de laboratorio 6. Es en interés de la buena ciencia, así como de bienestar de los animales que el estrés se debe mantener a un mínimo. En consecuencia, sólo bien entrenado y personal competente debe realizar los procedimientos con animales.

Protocol

Los procedimientos que se muestran se realizaron de acuerdo a los protocolos aprobados por el danés Experimentación Animal Inspección, dependiente del Ministerio de Alimentación, Agricultura y Pesca. 1. Sangre de muestreo desde el lateral safena o tarsal Vein Lleve a cabo este procedimiento sin anestesia y la ayuda de un investigador, que maneja el conejillo de indias, y una recogida de la muestra. Afeitarse la región tarsal de la pata trasera con una rasuradora el?…

Representative Results

Se han presentado cuatro enfoques diferentes de técnicas in vivo no terminales en muestras de sangre, ya sea en cobayas conscientes o anestesiados. Figura 1 ilustra el curso de la safena y la vena lateral del tarso en el conejillo de indias y los posibles sitios de punción. Venas del oído visibles en la superficie dorsal de una oreja de cerdo de guinea se ilustran en la Figura 2 Estas venas pueden ser utilizados para tomar muestras de sangre cuando se requiere sólo…

Discussion

En comparación con los ratones y las ratas, conejillos de Indias son temerosos por naturaleza y deben ser abordados con calma y manejados correctamente para reducir el estrés. Desde el punto de vista del bienestar animal, actuando con cuidado es naturalmente una prioridad; Sin embargo, esto también reducirá el riesgo de efectos de ansiedad asociada a los datos recogidos por ej., aumento de los niveles sanguíneos de corticosteroides y glucosa 12. Del mismo modo, la manipulación diaria habituar a…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Reconocemos la asistencia en un crack de Annie B. Kristensen, Elisabeth V. Andersen, Belinda B. Bringtoft y los cuidadores de animales en el Departamento de Medicina Experimental, Frederiksberg Campus de la Facultad de Salud y Ciencias Médicas de la Universidad de Copenhague, Dinamarca. Jacob Lønholdt se dio las gracias por su excelente asistencia técnica en la filmación de los procedimientos. Este estudio fue apoyado en parte por el Centro LifePharm en vivo y Farmacología de la Universidad de Copenhague.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Electric shaver Wella (Contura), Denmark 273207 Alternative product may be used. Multiple suppliers
Syringes  B.Braun-Omnifix-F, Germany 9161406V Alternative product may be used. Multiple suppliers
Needles BD Microlance,Spain 301156 Alternative product may be used. Multiple suppliers
Microvette collection tube  Sarstedt, D-51588Nümbrecht, Germany 201,288,100 Alternative product may be used. Multiple suppliers
Accu-Check analyzer Roche A/S Diagnostics, Denmark Alternative product may be used. Multiple suppliers
Heparin 5000 IE/ml LEO Pharma, Denmark Alternative product may be used. Multiple suppliers
Anesthesia Zoletil 50, Chemvet, Denmark Alternative product may be used. Multiple suppliers
Anesthesia Narcoxyl vet 20 mg/ml, Intervet, Denmark Alternative product may be used. Multiple suppliers
Anesthesia Torbugesic vet 10 mg/ml, Scanvet, Denmark Alternative product may be used. Multiple suppliers
Neutral eye ointment Alternative product may be used. Multiple suppliers
Gauze or a cotton swab  Alternative product may be used. Multiple suppliers
Disinfectant (70% alcohol) Alternative product may be used. Multiple suppliers

References

  1. DeOgburn, R., et al. Effects of increased dietary cholesterol with carbohydrate restriction on hepatic lipid metabolism in Guinea pigs. Comp.Med. 62 (2), 109-115 (2012).
  2. Fernandez, M., Volek, J. S. Guinea pigs a suitable animal model to study lipoprotein metabolism, atherosclerosis and inflammation. Nutr Metab (Lond). 3 (17), (2006).
  3. Frikke-Schmidt, H., Tveden-Nyborg, P., Birck, M. M., Lykkesfeldt, J. High dietary fat and cholesterol exacerbates chronic vitamin C deficiency in guinea pigs. Br J Nutr. 105 (1), 54-61 (2011).
  4. Hem, A., Smith, A. J., Solberg, P. Saphenous vein puncture for blood sampling of the mouse, rat, hamster, gerbil, guinea pig, ferret and mink. Lab Anim. 32 (4), 364-368 (1998).
  5. Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. Blood sample collection in small laboratory animals. J Pharmacol Pharmacother. 1 (2), 87-93 (2010).
  6. Guillen, J. FELASA guidelines and recommendations. J Am Assoc Lab Anim Sci. 51 (3), 311-321 (2012).
  7. Ye, P., Cheah, I. K., Halliwell, B. High fat diets and pathology in the guinea pig Atherosclerosis or liver damage. Biochim Biophys Acta. 1832 (2), 355-364 (2013).
  8. Tveden-Nyborg, P., et al. Maternal vitamin C deficiency during pregnancy persistently impairs hippocampal neurogenesis in offspring of guinea pigs. PLoS One. 7 (10), 12-18391 (2012).
  9. Schjoldager, J. G., Tveden-Nyborg, P., Lykkesfeldt, J. Prolonged maternal vitamin C deficiency overrides preferential fetal ascorbate transport but does not influence perinatal survival in guinea pigs. Br J Nutr. 110 (9), 1573-1579 (2013).
  10. Greulich, S., et al. Secretory products of guinea pig epicardial fat induce insulin resistance and impair primary adult rat cardiomyocyte function. J Cell Mol Med. 15 (11), 2399-2410 (2011).
  11. Swifka, J., Weiss, J., Addicks, K., Eckel, J., Rosen, P. Epicardial fat from guinea pig a model to study the paracrine network of interactions between epicardial fat and myocardium. Cardiovasc Drugs Ther. 22 (2), 107-114 (2008).
  12. Pilny, A. A. Clinical hematology of rodent species. Vet.Clin North Am Exot Anim Pract. 11 (3), 523-vii (2008).
  13. Franco, N. H., Olsson, I. A. Scientists and the 3Rs: attitudes to animal use in biomedical research and the effect of mandatory training in laboratory animal science. Lab Anim. 48 (1), 50-60 (2014).
  14. Van, L. J., et al. eAssessing the application of the 3Rs a survey among animal welfare officers in The Netherlands. Lab Anim. 47 (3), 210-219 (2013).
  15. Sloan, R. C., et al. High doses of ketamine-xylazine anesthesia reduce cardiac ischemia-reperfusion injury in guinea pigs. J Am Assoc Lab Anim Sci. 50 (3), 349-354 (2011).
  16. Jacobson, C. A. A novel anaesthetic regimen for surgical procedures in guinea pigs. Lab Anim. 35 (3), 271-276 (2001).
  17. Saha, J. K., Xia, J., Grondin, J. M., Engle, S. K., Jakubowski, J. A. Acute hyperglycemia induced by ketamine xylazine anesthesia in rats mechanisms and implications for preclinical models. Exp Biol Med(Maywood). 230 (10), 777-784 (2005).
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Cite This Article
Birck, M. M., Tveden-Nyborg, P., Lindblad, M. M., Lykkesfeldt, J. Non-Terminal Blood Sampling Techniques in Guinea Pigs. J. Vis. Exp. (92), e51982, doi:10.3791/51982 (2014).

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