Summary

Isolasjon, Kryopreservering og kultur menneskerettighets amnion Epitelceller for kliniske anvendelser

Published: December 21, 2014
doi:

Summary

We describe a protocol to isolate and culture human amnion epithelial cells (hAECs) using animal product-free reagents in accordance with current good manufacturing practices (cGMP) guidelines.

Abstract

Human amnion epithelial cells (hAECs) derived from term or pre-term amnion membranes have attracted attention from researchers and clinicians as a potential source of cells for regenerative medicine. The reason for this interest is evidence that these cells have highly multipotent differentiation ability, low immunogenicity, and anti-inflammatory functions. These properties have prompted researchers to investigate the potential of hAECs to be used to treat a variety of diseases and disorders in pre-clinical animal studies with much success.

hAECs have found widespread application for the treatment of a range of diseases and disorders. Potential clinical applications of hAECs include the treatment of stroke, multiple sclerosis, liver disease, diabetes and chronic and acute lung diseases. Progressing from pre-clinical animal studies into clinical trials requires a higher standard of quality control and safety for cell therapy products. For safety and quality control considerations, it is preferred that cell isolation protocols use animal product-free reagents.

We have developed protocols to allow researchers to isolate, cryopreserve and culture hAECs using animal product-free reagents. The advantage of this method is that these cells can be isolated, characterized, cryopreserved and cultured without the risk of delivering potentially harmful animal pathogens to humans, while maintaining suitable cell yields, viabilities and growth potential. For researchers moving from pre-clinical animal studies to clinical trials, these methodologies will greatly accelerate regulatory approval, decrease risks and improve the quality of their therapeutic cell population.

Introduction

Celler avledet fra perinatale kilder, for eksempel morkaken, morkake membraner, navlestreng og fostervann har tiltrukket seg oppmerksomhet fra forskere og klinikere som en potensiell kilde til celler for regenerativ medisin 1,2. Årsaken til denne interessen er at disse celletyper alle har en viss grad av plastisitet og immunmodulerende evne 3, egenskaper som er avgjørende for deres potensielle terapeutiske anvendelser.

hAECs er en heterogen populasjon epitel som kan være avledet fra sikt eller pre-term amnion membran 4, som gir en rikelig potensiell kilde til regenerativ cellemateriale. De egenskapene som gjør hAECs tiltalende som en mobil terapi inkluderer deres multipotency, lav immunogenisitet, og anti-inflammatoriske egenskaper. hAECs har blitt funnet å være meget multipotent både in vitro og in vivo, er i stand til å differensiere til mesodermal linjene (cardiomyocytes, myocytes, osteocytter, adipocytter), endodermal linjene (bukspyttkjertelen celler, leverceller, lungeceller) og ectodermal linjene (hår, hud, nerveceller og astrocytter) 5-10.

Betryggende, til tross for sine multipotency hAECs ikke synes å enten skjema svulster eller fremme svulst utvikling in vivo. Videre hAECs er også immune privilegert, uttrykker lave nivåer av klasse II menneskelige leukocyttantigener (HLAs) 8. Denne egenskapen sannsynlig ligger bak deres evne til å unngå immun avvisning etter allogen og xenogen transplantasjon, som demonstrert i studier med immun kompetente aper, kaniner, marsvin, rotter og griser 11-13. hAECs vise potent immunmodulerende og immunsupprimerende egenskaper og dermed gi betydelige praktiske fordeler for potensielle kliniske anvendelser i autoimmun sykdom terapi. hAECs antas å utøve immunmodulerende funksjoner på både medfødte og ervervede immunforsvar. Påe av mekanismene foreslåtte, er gjennom utskillelsen av immunmodulerende faktorer 14.

Nåværende anvendelser av hAECs i prekliniske dyresykdomsmodeller inkluderer behandling av hjerneslag, multippel sklerose, leversykdom, diabetes og kroniske og akutte lungesykdommer. Forskere har vist interesse for å bruke hAECs å behandle post-takts hjernebetennelse på grunn av sine unike egenskaper. Det er dokumentert at hAECs kan krysse blod-hjerne barrieren der de kan innpode, overleve i opptil 60 dager, differensiere i nevroner, redusere betennelse og fremme regenerering av skadet sentralnervesystemet vev i dyremodeller av nevrologiske sykdommer 15.

hAECs tilbyr muligheten til å målrette og reversere flere patologiske pathways som bidrar til utvikling og progresjon av multippel sklerose. For eksempel resultater fra prekliniske dyrestudier tyder på at hAECs er sterkt immundempende ogkan potensielt indusere perifer immuntoleranse og reversere pågående betennelsesreaksjoner. hAECs har også vist seg å ha kapasitet til å differensiere i nerveceller in vivo og forbedre endogen neuroregeneration gjennom utskillelsen av et stort utvalg av neurotrof faktorer 16.

Humane og gnager amnion epitelceller har allerede demonstrert deres terapeutiske effekt ved behandling av leversykdom hos dyremodeller. I en karbontetraklorid skade induksjon modell av leversykdom, HAEC transplantasjon fører til innpoding av levedyktige hAECs i leveren, sammen med redusert hepatocytter apoptose, og redusert hepatisk inflammasjon og fibrose 17.

hAECs kan stimuleres til uttrykt i bukspyttkjertelen faktorer, inkludert insulin og glukose transportører. Flere studier har undersøkt muligheten for hAECs å gjenopprette blodglukosenivåer i diabetiker mus 18. I mus som mottokhAECs, både dyr kroppsvekt og blodsukker redusert til normale nivåer etter injeksjon av celler. Disse studiene presentere en sterk sak for bruk av hAECs for behandling av diabetes mellitus.

hAECs har en bevist rolle i forebygging og reparasjon av eksperimentell akutt og kronisk lungeskade både voksne og neonatale modeller 19. Disse studiene fant at hAECs skille in vitro til funksjonell lunge epitelceller uttrykker flere lunge-assosiert proteiner, inkludert Cystisk fibrose transmembran Conductance Regulator (CFTR), ion-kanalen som er mutert hos pasienter med cystisk fibrose 20. I tillegg, når hAECs blir levert til den skadde voksen og neonatal lunge, utøver de sin reparerende virkninger via modulering av vertsimmunceller, redusere lunge leukocytt-rekruttering, inkludert neutrofiler, makrofager og lymfocytter 21-23.

Gitt sin overflod,sikkerhet posten, og påvist kliniske applikasjoner for flere sykdommer, kliniske forsøk med hAECs er uunngåelig. Med mål om å fremskynde oversettelse av HAEC behandlinger i kliniske-studier, har vi utviklet metoder for å isolere, fryse ned og kultur hAECs på en måte som er egnet for kliniske studier, ved hjelp av animalske produkt-free reagenser i samsvar med gjeldende Good Manufacturing Practices (cGMP) retningslinjer .

Vi baserte denne protokollen en tidligere utgitt protokoll som vi brukte med hell for å isolere hAECs bruker animalske reagenser 6. Vi endret den opprinnelige protokollen for å erstatte animalske produkter med dyreproduktfritt reagenser, og påfølgende optimalisering ble utført for å optimalisere celleutbytte, levedyktighet og renhet. Vårt mål var å utvikle en protokoll som ville være i samsvar med regelverkets krav til celle produksjon for kliniske studier.

Protocol

MERK: morkaker skal samles fra Singleton sunt svangerskap, med en preferanse for langtids elektive keisersnitt. Skrevet, bør informert samtykke gis for innsamling av sin morkake. Din relevant menneskelige forskningsetisk komité bør godkjenning all innsamling og bruk av menneskelig vev. 1. Isolering av amnion Epitelceller Plasser morkaken på en steril overflate i en klasse II biologisk sikkerhetskabinett. Ved hjelp av sterile Hanks balansert…

Representative Results

Når denne fremgangsmåte følges fullstendig, bør en gjennomsnittlig utbytte på 120 millioner hAECs være forventet, med et typisk område på fra 80 til 160 millioner celler. Fra disse utbytter, kan forventes en gjennomsnittlig levedyktigheten til 83 ± 4%. Den økede gjennomsnittlig utbytte og litt lavere levedyktigheten i klinisk metode kan skyldes høyere trypsin-aktivitet enn animalsk-avledede produkt, og kanskje også på grunn av mangel av serumproteiner. Isolerte hAECs har en gjennomsnittlig celleoverflatepro…

Discussion

Det er flere viktige parametere som kan ha en betydelig innvirkning på suksessen av denne metodikken. Lagring av morkaken eller amnion i opp til 3 timer før isolering av hAECs kan være ønskelig for logistikk eller planleggingsformål, men det anbefales at vevet er behandlet så snart som mulig. Hvis vevet skal lagres, er det anbefalt at lagring kan utføres etter disseksjon og vasking av amnion membran. Amnion kan lagres i sterile HBSS inneholdende antibiotika ved 4 ° C, men kan redusere cellenes levedyktighet med …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors acknowledge financial support from the Victorian Government’s Operational Infrastructure Support Program.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Collection Kit
Stripping tray Fisher Scientific 13-361B
Liberty Dressing Forcep, pointed 13cm Fisher Scientific S17329 
Scissors – Sharp/Blunt Straight Fisher Scientific NC0562592 
Sterile latex gloves  Fisher Scientific 19-014-643 
Protective Apparel (Gown) U-line S-15374-M
Protective Apparel
Isolation gowns U-line S-15374-M
Sterile latex gloves  Fisher Scientific 19-014-643 
General purpose face mask Cardinal Health AT7511
Bonnets Medline CRI1001
Shoe covers U-line S-7873W
Media and Reagents
Hanks’ Balanced Salt Solution (HBSS) Life Technologies 14175095 without calcium or magnesium
TrypZean(animal product–free recombinant trypsin) Sigma Aldrich T3449
Soybean Trypsin Inhibitor  1g/50mL Sigma Aldrich T6522
Cryostor CS5 BioLife Solutions 205102
Trypan blue reagent Life Technologies 15250-061
anti-EpCam-PE Miltenyi Biotec 130 – 091-253
PE-isotype control Miltenyi Biotec 130-098-845
anti-CD90-PeCy5 BD Pharmingen 555597
PeCy5-isotype control BD Pharmingen 557224
anti-CD105-APC BD Pharmingen 562408
APC-isotype control BD Pharmingen 340754
Collagen Type VI Sigma Aldrich C7521
Consumables
50mL graduated pipette BD/Falcon 356550
10mL graduated pipette BD/Falcon 356551
5mL graduated pipette BD/Falcon 356543
50mL falcon tubes BD/Falcon 352070
15mL falcon tubes BD/Falcon 352096
15-cm petri dishes Corning 351058
70-μm filters BD/Falcon 352350
0.22-μm filters Millipore SLGV033RS
1ml Pipette tips Fisherbrand 02-707-401
200ul Pipette tips Fisherbrand 02-707-409
20ml Syringe BD/Medical 309661
Plastic spatula Fisher Scientific 14-245-97 
Plastic weighing boat Fisher Scientific 02-202-102 
Cryo vials Nunc 377267
Equipment
Mr Frosty Fisher Scientific A451-4 
Biohazard Cabinet

References

  1. Murphy, S. V., Wallace, E. M., Jenkin, G., Appasani, K. . Stem Cells and Regenerative Medicine. 1, 243-264 (2011).
  2. Murphy, S. V., Atala, A. Amniotic fluid and placental membranes: unexpected sources of highly multipotent cells. Semin. Reprod. Med. 31 (1), 62-68 (2013).
  3. Parolini, O., et al. Concise review: isolation and characterization of cells from human term placenta: outcome of the first international Workshop on Placenta Derived Stem Cells. Stem Cells. 26 (2), 300-311 (2008).
  4. Lim, R., et al. Preterm human amnion epithelial cells have limited reparative potential. Placenta. 34 (6), 486-492 (2013).
  5. Tamagawa, T., Ishiwata, I., Saito, S. Establishment and characterization of a pluripotent stem cell line derived from human amniotic membranes and initiation of germ layers in vitro. Hum Cell. 17 (3), 125-130 (2004).
  6. Miki, T., Marongiu, F., Ellis, E., Strom, C. S. Isolation of amniotic epithelial stem cells. Curr Protoc Stem Cell Biol. 1, Unit 1E.3 (2007).
  7. Murphy, S., et al. Amnion epithelial cell isolation and characterization for clinical use. Curr Protoc Stem Cell Biol. 1, Unit 1E.6 (2010).
  8. Ilancheran, S., et al. Stem cells derived from human fetal membranes display multilineage differentiation potential. Biol Reprod. 77 (3), 577-588 (2007).
  9. Fliniaux, I., Viallet, J. P., Dhouailly, D., Jahoda, C. A. Transformation of amnion epithelium into skin and hair follicles. Differentiation. 72 (9-10), 558-565 (2004).
  10. Miki, T., Lehmann, T., Cai, H., Stolz, D. B., Strom, S. C. Stem cell characteristics of amniotic epithelial cells. Stem Cells. 23 (10), 1549-1559 (2005).
  11. Avila, M., Espana, M., Moreno, C., Pena, C. Reconstruction of ocular surface with heterologous limbal epithelium and amniotic membrane in a rabbit model. Cornea. 20 (4), 414-420 (2001).
  12. Sankar, V., Muthusamy, R. Role of human amniotic epithelial cell transplantation in spinal cord injury repair research. Neuroscience. 118 (1), 11-17 (2003).
  13. Yuge, I., et al. Transplanted human amniotic epithelial cells express connexin 26 and Na-K-adenosine triphosphatase in the inner ear. Transplantation. 77 (9), 1452-1454 (2004).
  14. Li, H., et al. Immunosuppressive factors secreted by human amniotic epithelial cells. Invest Ophthalmol Vis Sci. 46 (3), 900-907 (2005).
  15. Liu, T., et al. Human amniotic epithelial cells ameliorate behavioral dysfunction and reduce infarct size in the rat middle cerebral artery occlusion model. Shock. 29 (5), 603-611 (2008).
  16. Venkatachalam, S., et al. Novel neurotrophic factor secreted by amniotic epithelial cells. Biocell. 33 (2), 81-89 (2009).
  17. Manuelpillai, U., et al. Human amniotic epithelial cell transplantation induces markers of alternative macrophage activation and reduces established hepatic fibrosis. PLoS One. 7 (6), e38631 (2012).
  18. Wei, J. P., et al. Human amnion-isolated cells normalize blood glucose in streptozotocin-induced diabetic mice. Cell Transplant. 12 (5), 545-552 (2003).
  19. Murphy, S., et al. Human amnion epithelial cells prevent bleomycin-induced lung injury and preserve lung function. Cell Transplant. 20 (6), 909-923 (2011).
  20. Murphy, S. V., et al. Human amnion epithelial cells induced to express functional cystic fibrosis transmembrane conductance regulator. PLoS One. 7 (9), e46533 (2012).
  21. Murphy, S. V., et al. Human amnion epithelial cells do not abrogate pulmonary fibrosis in mice with impaired macrophage function. Cell Transplant. 21 (7), 1477-1492 (2012).
  22. Hodges, R. J., Lim, R., Jenkin, G., Wallace, E. M. Amnion epithelial cells as a candidate therapy for acute and chronic lung injury. Stem cells Int. 2012, 709763 (2012).
  23. Tan, J. L., Chan, S. T., Wallace, E. M., Lim, R. Human amnion epithelial cells mediate lung repair by directly modulating macrophage recruitment and polarization. , (2013).
  24. Litvinov, S. V., et al. Epithelial cell adhesion molecule (Ep-CAM) modulates cell-cell interactions mediated by classic cadherins. J Cell Biol. 139 (5), 1337-1348 (1997).
  25. Winter, M. J., Nagtegaal, I. D., van Krieken, J. H., Litvinov, S. V. The epithelial cell adhesion molecule (Ep-CAM) as a morphoregulatory molecule is a tool in surgical pathology. The American journal of pathology. 163 (6), 2139-2148 (2003).
  26. Musina, R. A., Bekchanova, E. S., Sukhikh, G. T. Comparison of mesenchymal stem cells obtained from different human tissues. Bull Exp Biol Med. 139 (4), 504-509 (2005).
  27. Park, A., et al. . Newborn Stem Cells: Identity, Function, and Clinical Potential. , 119-137 (2013).
check_url/52085?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Murphy, S. V., Kidyoor, A., Reid, T., Atala, A., Wallace, E. M., Lim, R. Isolation, Cryopreservation and Culture of Human Amnion Epithelial Cells for Clinical Applications. J. Vis. Exp. (94), e52085, doi:10.3791/52085 (2014).

View Video