Summary

الهلام بولي أكريلاميد لInvadopodia وقوة الجر فحوصات على خلايا سرطان

Published: January 04, 2015
doi:

Summary

صلابة الميكانيكية في المكروية الورم تلعب دورا حاسما في سلوك القيادة الخبيث من خلال زيادة النشاط invadopodia وأكتوميوزين انقباض. باستخدام المواد الهلامية بولي أكريلاميد (جزء من الكميات المسندة)، invadopodia وقوة الجر فحوصات يمكن استخدامها لدراسة خصائص الغازية ومقلص من الخلايا السرطانية في الاستجابة إلى matrix صلابة.

Abstract

تم أنسجة الورم جامدة تورط بقوة في تنظيم الهجرة الخلايا السرطانية والغزو. الهجرة الغازية من خلال الأنسجة عبر ربط وتيسره نتوءات الأكتين الغنية دعا invadopodia التي تحط proteolytically المصفوفة خارج الخلية (ECM). وقد تبين النشاط Invadopodia أن تعتمد على صلابة ECM وسرطان الخلايا مقلص القوات مما يوحي بأن إشارات صلابة يمكن تنظيم هذه الهياكل التحت خلوية من خلال أكتوميوزين انقباض. خصائص الغازية ومقلص من الخلايا السرطانية يمكن ربط في المختبر باستخدام فحوصات invadopodia وقوة الجر بناء على المواد الهلامية بولي أكريلاميد (جزء من الكميات المسندة) من الجمود مختلفة. خصائص الغازية ومقلص من الخلايا السرطانية يمكن ربط في المختبر باستخدام فحوصات invadopodia وقوة الجر بناء على المواد الهلامية بولي أكريلاميد (جزء من الكميات المسندة) من الجمود مختلفة. ورغم وجود بعض الاختلافات بين المقايسات، وهما بروتوكول المعروضة هنا يوفر وسيلة لخلق أجزاء من الكميات المخصصة عشرفي ويمكن أن تستخدم في كل من المقايسات ويسهل قابلة للتكيف مع الاحتياجات البيولوجية وتقنية محددة للمستخدم.

Introduction

وقد تم التعرف على صلابة من ECM-المرتبطة ورم باعتبارها عاملا هاما في سلوك القيادة الخبيث من خلال زيادة أكتوميوزين انقباض 1-3. بينما في المقام الأول تجلى هذا التأثير مع خلايا سرطان الثدي، وقد وجد مصفوفة الصلابة لتغيير خصائص الغازية من الخلايا المشتقة من مجموعة متنوعة من السرطانات 4-8 مما يشير إلى أن صلابة الورم قد تلعب دورا في نوع آخر من أنواع السرطان. على اختراق الأنسجة عبر وصلات هنا خلال الهجرة الغازية، وسرطان الخلايا تستخدم نتوءات الأكتين الغنية لاصقة المعروفة باسم invadopodia أن توطين proteinases أن تتحلل الوزراء البريطانى وECM 9. وتعتبر Invadopodia السمة المميزة للخلايا الغازية وقد تورطت في غزو الخلايا السرطانية وورم خبيث 10،11. وقد أظهرت الأعمال السابقة أن مصفوفة الصلابة يمكن تنظيم أرقام invadopodia وما يرتبط بها من تدهور ECM 4،12 من خلال ميوسين II النشاط والبروتينات mechanosensitive 12. نظرا إلىالعلاقة بين كثافة الورم والسرطان العدوانية 13،14، وتشير هذه النتائج إلى الآلية التي الخلايا السرطانية قد يستجيب لأنسجة الورم جامدة لقيادة الغزو والانبثاث من خلال أكتوميوزين انقباض.

في المختبر ECM صلابة وكثافة الأنسجة في الجسم الحي وقد ثبت أن تنظيم السلوك الغازية من الخلايا السرطانية 1،15-17. في حين أكتوميوزين انقباض يبدو أن المهم في هذه العملية، والصراع الدراسات الحالية حول ما إذا كان يرتبط قدرة النقيلي إلى زيادة أو نقصان القوات مقلص 6،18-20. وعلاوة على ذلك، فإنه لا يزال غير معروف ما إذا كانت هذه القوات التوسط مباشرة النشاط invadopodia 21. لقد وجدنا مؤخرا أن القوات مقلص الخلايا السرطانية كانت تعتمد على مصفوفة الصلابة وكانت التنبؤية لتدهور ECM التي كتبها invadopodia 5. وتشير هذه النتائج إلى أن قوات الخلوية قد تلعب دورا هاما في تطور السرطان عن طريق التوسط invadopodia ميلانالناقلية ردا على الخواص الميكانيكية للالمكروية الورم.

من أجل ربط خصائص الغازية ومقلص من الخلايا السرطانية ونحن تعديل بروتوكول لإنشاء جزء من الكميات المسندة مع الجمود المختلفة التي كانت تستخدم سابقا للتحقيق التي تعتمد على الصلابة النشاط invadopodia 4،12،22. قبل يشابك كيميائيا فبرونيكتين بلازما الإنسان في جميع أنحاء جزء من الكميات المسندة، وهذه الهلاميات المائية المعدلة ويمكن استخدام كأساس لكلا invadopodia والمقايسات قوة الجر لضمان أن الخلايا شهدت نفس الجمود في كلا التجربتين 5. في المقايسات invadopodia، توفر فبرونيكتين مجال ملزم الطبيعي لالجيلاتين لربط ECM مضافين إلى أجزاء من الكميات المخصصة للكشف عن تدهور المصفوفة. في المقايسات قوة الجر، توفر فبرونيكتين ليجند للالتصاق الخلوي المباشر للكشف عن نزوح المكروية المستخدمة لحساب قوات الجر الخلوية. هذه النتائج الأسلوب في ما طالبنا لينة، من الصعب،وجزء من الكميات المسندة الجامدة التي لا بد أن أطباق أسفل الزجاج ولها معاملات الرجوعية المرنة، E، من 1،023، 7،307، و22692 با 5 التي تغطي مجموعة من الخواص الميكانيكية وذكرت لالأنسجة الطبيعية والسرطانية 23.

Protocol

1. إعداد coverslips الزجاج لجزء من الكميات المسندة نظيفة 12 ملم coverslips مع مناديل الوبر منخفضة. لهب مم coverslips 12 و 14 ملم ساترة في microwell من كل 35 ملم الزجاج طبق أسفل عن طريق تمرير لهم من خلال لهب الموقد بنس?…

Representative Results

في مقايسة invadopodia، وعادة ما حددت invadopodia التي كتبها colocalization من علامات مثل الأكتين وcortactin في الهياكل منقط داخل جسم الخلية (الشكل 1). كلا invadopodia مهينة بنشاط وغير مهينة يمكن الاعتماد، والتفريق عن طريق ما إذا كانت colocalized هذه الهياكل مع المناطق السوداء تفتقر إشارة الف…

Discussion

ونحن نقدم وسيلة لافتعال أجزاء من الكميات المخصصة التي يمكن استخدامها كأساس لinvadopodia وقوة الجر المقايسات لربط السلوكيات الخلوية الغازية ومقلص. بينما جزء من الكميات المسندة منذ فترة طويلة تستخدم للنظر في الآثار صلابة على الخلايا وحساب القوات الجر 18،24،27، وهذا ال?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

الكتاب ليس لديهم ما يكشف.

Materials

3-Aminopropyltrimethoxysilane Sigma-Aldrich 281778
Acrylamide (40%) Bio-Rad 161-0140
Acrylic acid NHS ester Sigma-Aldrich A8060 prepare fresh in fume hood 10 mg/ml in DMSO
Alexa Fluor 546 phalloidin Life Technologies A22283 can also use rhodamine
Ammonium persulfate Bio-Rad 161-0700 prepare fresh 10% solution in 1X PBS
Aqua Poly/Mount Polysciences 18606 use six drops to fill microwells
BIS (2%) Bio-Rad 161-0142
Bovine serum albumin RPI A30075 make 3% for blocking solution in 1X PBS and store in 4 °C
Coverslips (12 mm) Fisher Scientific 12-545-80
dialysis tubing Sigma-Aldrich D9777 pre-equilibrate in borate buffer for 15-30 min
DMEM Cellgro 10-013-CV use to make invadopodia medium
DMSO Sigma-Aldrich D8418 use to make acrylic acid NHS ester solution
Epidermal growth factor Life Technologies PHG0311 use to make invadopodia medium
Ethanol PHARMCO-AAPER E200 dilute with ultrapure water to 70%
FBS Thermo Scientific SH30070.03 use to make invadopodia medium
FITC Sigma-Aldrich F7250 protect from light
Gelatin Polysciences 00639 typically make 10 ml of 1%sucrose/1% gelatin solution in PBS and store at 4 °C (preheat PBS to dissolve gelatin easily)
Glass bottom dishes (35 mm coverslips) MatTek P35G-0-14-C coverslips are uncoated
Glutaraldehyde (25%) Polysciences 01909 dilute with 1X PBS to 0.5%
goat anti-mouse Alexa Fluor 633 antibody  Life Technologies A21050
Human plasma fibronectin Life Technologies 33016-015 add 5 ml of ultrapure water to make 1 mg/ml; aliquot in volumes based on use to avoid excessive freezing and thawing cycles
KH2PO4 EMD Millipore PX-1565-1 use to make 10X PBS stock
mouse anti-cortactin 4F11 antibody  EMD Millipore 05-180
Na2HPO4 EMD Millipore SX-0720-1 use to make 10X PBS stock
NaCl RPI S23020 use to make 10X PBS stock and borate buffer
NaOH (1 N) Sigma-Aldrich S2770 dilute with ultrapure water to 0.1 N
Nu-Serum (low-protein serum) BD Biosciences 355500 use to make invadopodia medium
Paraformaldehyde Acros 416785000 typically make 10% stock in 1X PBS, prepare in fume hood, and add a few ml of strong NaOH to dissolve paraformaldehyde easily then bring back to pH 7.4 with strong HCl)
PBS (sterile) Cellgro 21-040-CV use for cell culture
RPMI 1640 Cellgro 10-040-CV use to make invadopodia medium
Sodium borohydride Sigma-Aldrich 452882 prepare fresh in fume hood 1 mg/ml in 1X PBS 
sodium metaborate tetrahydrate  Sigma-Aldrich S0251 use to make borate buffer
Sucrose RPI S24060 typically make 10 ml of 1%sucrose/1% gelatin solution in PBS and store at 4 °C (preheat PBS to dissolve gelatin easily)
TEMED Bio-Rad 161-0800
Triton X-100 Alfa Aesar A16046 make 10% stock in 1X PBS and use as is for cell removal in traction force assay or dilute with 1X PBS for staining

References

  1. Paszek, M. J., et al. Tensional homeostasis and the malignant phenotype. Cancer cell. 8, 241-254 (2005).
  2. Jaalouk, D. E., Lammerding, J. Mechanotransduction gone awry. Nature. 10, 63-73 (2009).
  3. Paszek, M. J., Weaver, V. M. The tension mounts: mechanics meets morphogenesis and malignancy. Journal of mammary gland biology and neoplasia. 9, 325-342 (2004).
  4. Parekh, A., et al. Sensing and modulation of invadopodia across a wide range of rigidities. Biophysical. 100, 573-582 (2011).
  5. Jerrell, R. J., Parekh, A. Cellular traction stresses mediate extracellular matrix degradation by invadopodia. Acta biomaterialia. 10, 1886-1896 (2014).
  6. Kraning-Rush, C. M., Califano, J. P., Reinhart-King, C. A. Cellular traction stresses increase with increasing metastatic potential. PLoS ONE. 7, e32572 (2012).
  7. Haage, A., Nam, D. H., Ge, X., Schneider, I. C. Matrix metalloproteinase-14 is a mechanically regulated activator of secreted MMPs and invasion. Biochemical and biophysical research communications. , (2014).
  8. Haage, A., Schneider, I. C. Cellular contractility and extracellular matrix stiffness regulate matrix metalloproteinase activity in pancreatic cancer cells. FASEB J. , (2014).
  9. Weaver, A. M. Invadopodia: specialized cell structures for cancer invasion. Clinical & experimental metastasis. 23, 97-105 (2006).
  10. Weaver, A. M. Invadopodia. Curr Biol. 18, R362-364 (2008).
  11. Bravo-Cordero, J. J., Hodgson, L., Condeelis, J. Directed cell invasion and migration during metastasis. Current opinion in cell biology. 24, 277-283 (2012).
  12. Alexander, N. R., et al. Extracellular matrix rigidity promotes invadopodia activity. Curr Biol. 18, 1295-1299 (2008).
  13. Barlow, W. E., et al. Prospective breast cancer risk prediction model for women undergoing screening mammography. Journal of the National Cancer Institute. 98, 1204-1214 (2006).
  14. Chen, J., et al. Projecting absolute invasive breast cancer risk in white women with a model that includes mammographic density. Journal of the National Cancer Institute. 98, 1215-1226 (2006).
  15. Butcher, D. T., Alliston, T., Weaver, V. M. A tense situation: forcing tumour progression. Nature reviews. Cancer. 9, 108-122 (2009).
  16. Zaman, M. H., et al. Migration of tumor cells in 3D matrices is governed by matrix stiffness along with cell-matrix adhesion and proteolysis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103, 10889-10894 (2006).
  17. Provenzano, P. P., Inman, D. R., Eliceiri, K. W., Keely, P. J. Matrix density-induced mechanoregulation of breast cell phenotype, signaling and gene expression through a FAK-ERK linkage. Oncogene. 28, 4326-4343 (2009).
  18. Munevar, S., Wang, Y., Dembo, M. Traction force microscopy of migrating normal and H-ras transformed 3T3 fibroblasts. Biophysical journal. 80, 1744-1757 (2001).
  19. Rosel, D., et al. Up-regulation of Rho/ROCK signaling in sarcoma cells drives invasion and increased generation of protrusive forces. Mol Cancer Res. 6, 1410-1420 (2008).
  20. Indra, I., et al. An in vitro correlation of mechanical forces and metastatic capacity. Phys Biol. 8, 015015 (2011).
  21. Parekh, A., Weaver, A. M. Regulation of cancer invasiveness by the physical extracellular matrix environment. Cell adhesion & migration. 3, 288-292 (2009).
  22. Weaver, A. M., Page, J. M., Guelcher, S. A., Parekh, A., Coutts, A. S. . Methods in Molecular Biology in Adhesion Protein Protocols. 1046, 171-189 (2013).
  23. Samani, A., Zubovits, J., Plewes, D. Elastic moduli of normal and pathological human breast tissues: an inversion-technique-based investigation of 169 samples). Physics in medicine and biology. 52, 1565-1576 (2007).
  24. Wang, J. H., Lin, J. S. Cell traction force and measurement methods. Biomechanics and modeling in mechanobiology. 6, 361-371 (2007).
  25. Dembo, M., Oliver, T., Ishihara, A., Jacobson, K. Imaging the traction stresses exerted by locomoting cells with the elastic substratum method. Biophysical journal. 70, 2008-2022 (1996).
  26. Dembo, M., Wang, Y. L. Stresses at the cell-to-substrate interface during locomotion of fibroblasts. Biophysical journal. 76, 2307-2316 (1999).
  27. Engler, A. J., Rehfeldt, F., Sen, S., Discher, D. E. Microtissue elasticity: measurements by atomic force microscopy and its influence on cell differentiation. Methods Cell Biol. 83, 521-545 (2007).
  28. Kandow, C. E., Georges, P. C., Janmey, P. A., Beningo, K. A. Polyacrylamide hydrogels for cell mechanics: steps toward optimization and alternative uses. Methods in cell biology. 83, 29-46 (2007).
  29. Leach, J. B., Brown, X. Q., Jacot, J. G., Dimilla, P. A., Wong, J. Y. Neurite outgrowth and branching of PC12 cells on very soft substrates sharply decreases below a threshold of substrate rigidity. J Neural Eng. 4, 26-34 (2007).
  30. Zhou, J., Kim, H. Y., Wang, J. H., Davidson, L. A. Macroscopic stiffening of embryonic tissues via microtubules, RhoGEF and the assembly of contractile bundles of actomyosin. Development. 137, 2785-2794 (2010).
  31. Buxboim, A., Rajagopal, K., Brown, A. E., Discher, D. E. How deeply cells feel: methods for thin gels. J Phys Condens Matter. 22, 194116 (2010).
check_url/52343?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Jerrell, R. J., Parekh, A. Polyacrylamide Gels for Invadopodia and Traction Force Assays on Cancer Cells. J. Vis. Exp. (95), e52343, doi:10.3791/52343 (2015).

View Video