Summary

Polyakrylamidgeler for Invadopodia og trekkraft Analyser på kreftceller

Published: January 04, 2015
doi:

Summary

Mekanisk stivhet i svulsten mikromiljøet spiller en avgjørende rolle i å drive ondartet oppførsel ved å øke invadopodia aktivitet og actomyosin kontraktilitet. Ved hjelp av polyakrylamidgeler (Paas), kan invadopodia og trekkraft analyser anvendes for å studere de invasive og kontraktile egenskaper av kreftceller i respons til matrise stivhet.

Abstract

Stive tumorvev har vært sterkt implisert i regulering av kreftcelle migrering og invasjon. Invasiv migrasjon gjennom tverrbundet vev er tilrettelagt av aktin rike fremspring kalt invadopodia at proteolytisk forringer ekstracellulære matrise (ECM). Invadopodia aktivitet har vist seg å være avhengig av ECM stivhet og kreftcelle kontraktile krefter som tyder på at stivhet signaler kan regulere disse subcellulære strukturer gjennom actomyosin kontraktilitet. Invasive og kontraktile egenskaper av kreftceller kan være korrelert in vitro ved hjelp invadopodia og trekkraft analyser basert på polyakrylamidgeler (PaaS) av ulike stivheter. Invasive og kontraktile egenskaper av kreftceller kan være korrelert in vitro ved hjelp invadopodia og trekkraft analyser basert på polyakrylamidgeler (PaaS) av ulike stivheter. Mens noen variasjoner mellom de to analysene finnes, protokoll er presentert her tilveiebringer en fremgangsmåte for å lage Paas thpå kan brukes i begge analysene og kan enkelt tilpasses til brukerens spesifikke biologiske og tekniske behov.

Introduction

Stivheten av tumorassosierte ECM har blitt identifisert som en betydelig faktor i å drive malign oppførsel ved å øke actomyosin kontraktilitet 1-3. Selv om denne effekten har primært blitt demonstrert med brystkreftceller, har matriksen stivhet blitt funnet å endre invasive egenskaper av celler avledet fra en rekke forskjellige krefttyper 4-8 som tyder på at tumor stivhet kan spille en rolle i andre typer kreft. Å trenge krysskoblede vev under invasiv migrasjon, kreftceller utnytte aktin rike selvklebende utstikkere kjent som invadopodia at lokalisere proteinaser å fokalt degradere ECM 9. Invadopodia anses et kjennetegn på invasive celler og har vært involvert i tumorcelle invasjon og metastase 10,11. Tidligere arbeid har vist at matrise stivhet kan regulere invadopodia tall og tilhørende ECM degradering 4,12 gjennom myosin II aktivitet og mechanosensitive proteiner 12. GittKorrelasjonen mellom tumor tetthet og kreft aggressivitet 13,14, antyder disse resultatene en mekanisme som kreftceller kan svare til stive tumorvev for å drive invasjon og metastase gjennom actomyosin kontraktilitet.

In vitro ECM stivhet og in vivo vev tetthet er blitt vist å regulere invasiv opptreden av kreftceller 1,15-17. Mens actomyosin kontraktilitet synes å være viktig i denne prosessen, nåværende studier konflikt med hensyn til om metastatisk kapasitet er korrelert til økt eller redusert sammentrekkende krefter 6,18-20. Videre er det fortsatt ukjent om disse kreftene direkte megle invadopodia aktivitet 21. Vi har nylig funnet ut at kreftcelle kontraktile styrker var avhengig matrise stivhet og var prediktiv av ECM degradering av invadopodia 5. Disse resultatene tyder på at celle krefter kan spille en viktig rolle i cancerutvikling ved å mediere invadopodia activitet som reaksjon på de mekaniske egenskapene til tumormikromiljøet.

For å korrelere invasive og kontraktile egenskaper kreftceller 5, endret vi en protokoll for å skape PaaS med ulike stivheter som tidligere ble brukt til å undersøke stivhet avhengig invadopodia aktivitet 4,12,22. Ved kjemisk tverrbinding human plasma fibronektin hele Paas, kan disse modifiserte hydrogeler kan brukes som grunnlag for både invadopodia og trekkraft assays for å sikre at celler opplevde de samme stivheter i begge forsøk 5. I invadopodia analyser, gir fibronektinet en naturlig bindende domene for gelatin å knytte kledde ECM til PaaS å oppdage matriksdegradering. I trekkraft analyser, gir fibronektinet en ligand for direkte cellular heft å påvise mikro forskyvninger som brukes til å beregne cellulære trekkrefter. Denne metoden gir det vi har kalt myk, hard,og stive PaaS som er bundet til glassbunn retter og har elastiske moduli, E, av 1023, 7307 og 22692 Pa 5 som består av alt av mekaniske egenskaper som er rapportert for normale og cancervev 23.

Protocol

1. Utarbeidelse av dekkglass for PaaS Clean 12 mm Dekk med lave lo våtservietter. Flame de 12 mm Dekk og 14 mm dekkglass i mikro av hver 35 mm glassbunn fatet ved å føre dem gjennom en Bunsen-brenner flammen bruker pinsett. Behandle mikrobrønnene med 200 ul 0,1 N NaOH i 5 minutter ved romtemperatur. Aspirer og luft tørke mikrobrønnene i 30 min. Behandle mikrobrønnene med 50-100 ul av 3-aminopropyltrimetoksysilan i 10 minutter ved romtemperatur i avtrekksskap. Den…

Representative Results

I invadopodia assay blir invadopodia vanligvis identifiseres ved colocalization av markører som aktin og cortactin ved punctate strukturer i cellelegemet (figur 1). Både aktivt nedbrytende og ikke-nedbrytende invadopodia kan telles og blir differensiert av om disse strukturene er colocalized sorte områder som mangler fluorescerende signal i FITC-merket fibronektin (figur 1). Invadopodia er manuelt tellet, og ECM nedbrytning per celle bestemmes ved manuelt terskel disse sorte områder…

Discussion

Vi presenterer en metode for å fabrikkere PaaS som kan brukes som grunnlag for invadopodia og trekkraft analyser for å korrelere invasive og kontraktile cellulære atferd. Mens PaaS har lenge vært brukt til å se på stivhet virkninger på celler og beregne trekkrefter 18,24,27, er den første til å utvikle parallelle analyser basert på PaaS med samme stivheter å korrelere invasive og kontraktile cellulære atferd i respons til matrise denne protokollen mekaniske egenskaper. Riktig aktivering glassene a…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne har ingenting å avsløre.

Materials

3-Aminopropyltrimethoxysilane Sigma-Aldrich 281778
Acrylamide (40%) Bio-Rad 161-0140
Acrylic acid NHS ester Sigma-Aldrich A8060 prepare fresh in fume hood 10 mg/ml in DMSO
Alexa Fluor 546 phalloidin Life Technologies A22283 can also use rhodamine
Ammonium persulfate Bio-Rad 161-0700 prepare fresh 10% solution in 1X PBS
Aqua Poly/Mount Polysciences 18606 use six drops to fill microwells
BIS (2%) Bio-Rad 161-0142
Bovine serum albumin RPI A30075 make 3% for blocking solution in 1X PBS and store in 4 °C
Coverslips (12 mm) Fisher Scientific 12-545-80
dialysis tubing Sigma-Aldrich D9777 pre-equilibrate in borate buffer for 15-30 min
DMEM Cellgro 10-013-CV use to make invadopodia medium
DMSO Sigma-Aldrich D8418 use to make acrylic acid NHS ester solution
Epidermal growth factor Life Technologies PHG0311 use to make invadopodia medium
Ethanol PHARMCO-AAPER E200 dilute with ultrapure water to 70%
FBS Thermo Scientific SH30070.03 use to make invadopodia medium
FITC Sigma-Aldrich F7250 protect from light
Gelatin Polysciences 00639 typically make 10 ml of 1%sucrose/1% gelatin solution in PBS and store at 4 °C (preheat PBS to dissolve gelatin easily)
Glass bottom dishes (35 mm coverslips) MatTek P35G-0-14-C coverslips are uncoated
Glutaraldehyde (25%) Polysciences 01909 dilute with 1X PBS to 0.5%
goat anti-mouse Alexa Fluor 633 antibody  Life Technologies A21050
Human plasma fibronectin Life Technologies 33016-015 add 5 ml of ultrapure water to make 1 mg/ml; aliquot in volumes based on use to avoid excessive freezing and thawing cycles
KH2PO4 EMD Millipore PX-1565-1 use to make 10X PBS stock
mouse anti-cortactin 4F11 antibody  EMD Millipore 05-180
Na2HPO4 EMD Millipore SX-0720-1 use to make 10X PBS stock
NaCl RPI S23020 use to make 10X PBS stock and borate buffer
NaOH (1 N) Sigma-Aldrich S2770 dilute with ultrapure water to 0.1 N
Nu-Serum (low-protein serum) BD Biosciences 355500 use to make invadopodia medium
Paraformaldehyde Acros 416785000 typically make 10% stock in 1X PBS, prepare in fume hood, and add a few ml of strong NaOH to dissolve paraformaldehyde easily then bring back to pH 7.4 with strong HCl)
PBS (sterile) Cellgro 21-040-CV use for cell culture
RPMI 1640 Cellgro 10-040-CV use to make invadopodia medium
Sodium borohydride Sigma-Aldrich 452882 prepare fresh in fume hood 1 mg/ml in 1X PBS 
sodium metaborate tetrahydrate  Sigma-Aldrich S0251 use to make borate buffer
Sucrose RPI S24060 typically make 10 ml of 1%sucrose/1% gelatin solution in PBS and store at 4 °C (preheat PBS to dissolve gelatin easily)
TEMED Bio-Rad 161-0800
Triton X-100 Alfa Aesar A16046 make 10% stock in 1X PBS and use as is for cell removal in traction force assay or dilute with 1X PBS for staining

References

  1. Paszek, M. J., et al. Tensional homeostasis and the malignant phenotype. Cancer cell. 8, 241-254 (2005).
  2. Jaalouk, D. E., Lammerding, J. Mechanotransduction gone awry. Nature. 10, 63-73 (2009).
  3. Paszek, M. J., Weaver, V. M. The tension mounts: mechanics meets morphogenesis and malignancy. Journal of mammary gland biology and neoplasia. 9, 325-342 (2004).
  4. Parekh, A., et al. Sensing and modulation of invadopodia across a wide range of rigidities. Biophysical. 100, 573-582 (2011).
  5. Jerrell, R. J., Parekh, A. Cellular traction stresses mediate extracellular matrix degradation by invadopodia. Acta biomaterialia. 10, 1886-1896 (2014).
  6. Kraning-Rush, C. M., Califano, J. P., Reinhart-King, C. A. Cellular traction stresses increase with increasing metastatic potential. PLoS ONE. 7, e32572 (2012).
  7. Haage, A., Nam, D. H., Ge, X., Schneider, I. C. Matrix metalloproteinase-14 is a mechanically regulated activator of secreted MMPs and invasion. Biochemical and biophysical research communications. , (2014).
  8. Haage, A., Schneider, I. C. Cellular contractility and extracellular matrix stiffness regulate matrix metalloproteinase activity in pancreatic cancer cells. FASEB J. , (2014).
  9. Weaver, A. M. Invadopodia: specialized cell structures for cancer invasion. Clinical & experimental metastasis. 23, 97-105 (2006).
  10. Weaver, A. M. Invadopodia. Curr Biol. 18, R362-364 (2008).
  11. Bravo-Cordero, J. J., Hodgson, L., Condeelis, J. Directed cell invasion and migration during metastasis. Current opinion in cell biology. 24, 277-283 (2012).
  12. Alexander, N. R., et al. Extracellular matrix rigidity promotes invadopodia activity. Curr Biol. 18, 1295-1299 (2008).
  13. Barlow, W. E., et al. Prospective breast cancer risk prediction model for women undergoing screening mammography. Journal of the National Cancer Institute. 98, 1204-1214 (2006).
  14. Chen, J., et al. Projecting absolute invasive breast cancer risk in white women with a model that includes mammographic density. Journal of the National Cancer Institute. 98, 1215-1226 (2006).
  15. Butcher, D. T., Alliston, T., Weaver, V. M. A tense situation: forcing tumour progression. Nature reviews. Cancer. 9, 108-122 (2009).
  16. Zaman, M. H., et al. Migration of tumor cells in 3D matrices is governed by matrix stiffness along with cell-matrix adhesion and proteolysis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103, 10889-10894 (2006).
  17. Provenzano, P. P., Inman, D. R., Eliceiri, K. W., Keely, P. J. Matrix density-induced mechanoregulation of breast cell phenotype, signaling and gene expression through a FAK-ERK linkage. Oncogene. 28, 4326-4343 (2009).
  18. Munevar, S., Wang, Y., Dembo, M. Traction force microscopy of migrating normal and H-ras transformed 3T3 fibroblasts. Biophysical journal. 80, 1744-1757 (2001).
  19. Rosel, D., et al. Up-regulation of Rho/ROCK signaling in sarcoma cells drives invasion and increased generation of protrusive forces. Mol Cancer Res. 6, 1410-1420 (2008).
  20. Indra, I., et al. An in vitro correlation of mechanical forces and metastatic capacity. Phys Biol. 8, 015015 (2011).
  21. Parekh, A., Weaver, A. M. Regulation of cancer invasiveness by the physical extracellular matrix environment. Cell adhesion & migration. 3, 288-292 (2009).
  22. Weaver, A. M., Page, J. M., Guelcher, S. A., Parekh, A., Coutts, A. S. . Methods in Molecular Biology in Adhesion Protein Protocols. 1046, 171-189 (2013).
  23. Samani, A., Zubovits, J., Plewes, D. Elastic moduli of normal and pathological human breast tissues: an inversion-technique-based investigation of 169 samples). Physics in medicine and biology. 52, 1565-1576 (2007).
  24. Wang, J. H., Lin, J. S. Cell traction force and measurement methods. Biomechanics and modeling in mechanobiology. 6, 361-371 (2007).
  25. Dembo, M., Oliver, T., Ishihara, A., Jacobson, K. Imaging the traction stresses exerted by locomoting cells with the elastic substratum method. Biophysical journal. 70, 2008-2022 (1996).
  26. Dembo, M., Wang, Y. L. Stresses at the cell-to-substrate interface during locomotion of fibroblasts. Biophysical journal. 76, 2307-2316 (1999).
  27. Engler, A. J., Rehfeldt, F., Sen, S., Discher, D. E. Microtissue elasticity: measurements by atomic force microscopy and its influence on cell differentiation. Methods Cell Biol. 83, 521-545 (2007).
  28. Kandow, C. E., Georges, P. C., Janmey, P. A., Beningo, K. A. Polyacrylamide hydrogels for cell mechanics: steps toward optimization and alternative uses. Methods in cell biology. 83, 29-46 (2007).
  29. Leach, J. B., Brown, X. Q., Jacot, J. G., Dimilla, P. A., Wong, J. Y. Neurite outgrowth and branching of PC12 cells on very soft substrates sharply decreases below a threshold of substrate rigidity. J Neural Eng. 4, 26-34 (2007).
  30. Zhou, J., Kim, H. Y., Wang, J. H., Davidson, L. A. Macroscopic stiffening of embryonic tissues via microtubules, RhoGEF and the assembly of contractile bundles of actomyosin. Development. 137, 2785-2794 (2010).
  31. Buxboim, A., Rajagopal, K., Brown, A. E., Discher, D. E. How deeply cells feel: methods for thin gels. J Phys Condens Matter. 22, 194116 (2010).

Play Video

Cite This Article
Jerrell, R. J., Parekh, A. Polyacrylamide Gels for Invadopodia and Traction Force Assays on Cancer Cells. J. Vis. Exp. (95), e52343, doi:10.3791/52343 (2015).

View Video