Summary

Воображение внутриклеточных торговли АРР с Фотоактивируемые GFP

Published: October 17, 2015
doi:

Summary

В то время как транспортировка белков клеточной поверхности относительно легко изучены, визуализации оборота внутриклеточных белков намного сложнее. Здесь мы используем конструкции, включающие Фотоактивируемые GFP и продемонстрировать метод, чтобы точно следовать белка-предшественника амилоида из Гольджи вниз по течению отсеков и следить за его оформление.

Abstract

Бета-амилоид (Ар) является основным компонентом сенильных бляшек в мозге пациентов с болезнью Альцгеймера. Ар вытекает из последовательного расщепления белка-предшественника амилоида (АРР) по р и у-секретазами. Несмотря на важность Ар к AD патологии, субклеточная локализация этих расколов не установлена. Работа в нашей лаборатории и другие вовлечь систему эндосом / лизосом в обработке APP после интернализации с клеточной поверхности. Тем не менее, внутриклеточный торговля APP относительно изученной.

В то время как поверхности клеток белки исправимо многих методов маркировки, нет простых методов для следующих торговлю мембранных белков из Гольджи. Для этого мы создали APP конструкции, которые были помечены с фото-активируемый GFP (paGFP) на С-конце. После синтеза paGFP имеет низкую базальную флуоресценции, но он может быть стимулированы 413 нм света тО производят сильное, стабильное зеленую флуоресценцию. При использовании Гольджи маркер галактозил трансферазы соединен с голубой флуоресцентный белок (GalT-CFP) в качестве цели, мы можем точно photoactivate АЭС в транс-Гольджи сеть. Фото-активированный АПП-paGFP то можно проследить, как это трафиков для последующих отсеках выявленных с флуоресцентно помечены отсек белки-маркеры для раннего эндосомы (Rab5), покойный ядрышко (Rab9) и лизосом (LAMP1). Кроме того, с помощью ингибиторов обработки АРР, включая хлорохин или γ-секретазы ингибитор L685, 458, мы в состоянии выполнить импульса погони эксперименты, чтобы изучить обработку АРР в одиночных камерах.

Мы считаем, что большая доля АЭС быстро движется к лизосом без появления на поверхности клеток, а затем удаляются из лизосом с секретазой, как расколов. Эта методика демонстрирует полезность paGFP для следующих торговлю и обработку внутриклеточных белков сюдам Гольджи к выходу отсеков.

Introduction

Отличительным признаком болезни Альцгеймера (AD) является наличие сенильных бляшек и нейрофибриллярных клубков (NFTs) в головном мозге. Основным компонентом сенильных бляшек является β-амилоида (Ар). Ар вытекает из ее предшественника; амилоидного белка-предшественника (АРР) 1. Амилоидогенного Расщепление АРР начинается с удаления эктодомена от АРР бета-секретазы 2. Остальные 99-остаток карбоксильной концевой фрагмент (CTF) может быть расщеплен гамма-секретазы, чтобы произвести Ар 3-7. В то время как многие эксперименты документально расщепление клеточной поверхности APP после интернализации с клеточной поверхности в системе эндосом / лизосом, ряд недавних исследований показали, что внутриклеточный торговля APP также важную роль в регуляции его обработку 8-11.

Там было несколько попыток модуляции уровней Ар с гамма-секретазы ингибиторов и Ар Immunotherapies. Однако недавние клинические испытания с этих методов не показали никакой пользы, и, в некоторых случаях, причинение вреда 12. Неиспользованными стратегия модулировать Ар производство является изменение субклеточные локализацию АРР и Г-секретазы взаимодействия. Гольджи, плазматической мембраны, и эндосомы / лизосомы все были предложены в качестве возможных местах для гамма-расщепления APP. Исследования, проведенные в нашей лаборатории предполагает, что приложение и γ-секретазы являются резиденты белки лизосом мембраны 13. Кроме того, мы обнаружили, что лизосомальные γ-секретазы имеет кислотную оптимальный рН 13. Кроме того, подщелачивание эндосом / лизосом системы с хлорохин или NH 4 Cl, как было показано, уменьшают продукцию Ар 14. Г-секретазы ингибирование или нокаут или пресенилин приводит к накоплению АПП-CTFS в лизосом 15-17. Кроме того, нарушая APP эндоцитоз снижает Ар производство 18-20.

Несмотря на важность Гольджи в сортировочной станции для ранних белков и белков переработанных из системы эндосом / лизосом, внутриклеточный торговля APP не изучен в деталях 21. Недавние работы показали, что приложение может быть возвращен в транс-Гольджи сеть (TGN) через взаимодействие с retromer комплекса. Вниз регулирование retromer комплекса снижает продукцию Ар 8,22-24. Тем не менее, выход из приложения с Гольджи не были хорошо изучены.

В то время как после эндоцитоза белков клеточной поверхности, таких как рецептор трансферрина, легко помечены и последующим, после оборота внутриклеточных белков является более сложным. На самом деле, несколько белков были их внутриклеточной торговля образ. Появление флуоресцентный белок тегов, таких как фото-активируемый-GFP (paGFP), предоставило новые инструменты для изучения внутриклеточного транспорта. Фото-активируемый-GFP является формой GFР, что является почти невидимым после синтеза, но и развивает сильный зеленый (GFP) флуоресценции после активации 413 нм лазерного света, и этот сигнал является стабильным в течение нескольких дней 25,26. Конструкции, использующие paGFP были использованы, чтобы продемонстрировать intralysosomal оборотом белка лизосомальных мембранный белок 1 (ЛАМПА1) 25, доставка клеточной поверхности везикулярного стоматита Касперского гликопротеин (VSVG, маркер секреторной пути) 27, а оборот пероксисом 28 и 29 аутофагосом.

Для того, чтобы визуализировать сортировку приложение из TGN в живых клетках, мы разработали плазмиды выражения последние 112 аминокислот АРР, соединенные с фото-активируемый (paGFP) на С-концевой (именуемые βAPP-paGFP) 30. Мы провели также эти эксперименты с полной длины APP и достигли подобных результатов; ΒAPP используется конструкция здесь, потому что он обеспечивает более яркие изображения. Мы тогда фото активировать и# 946; АПП-paGFP только в TGN, демаркированной TGN маркера галактозилтрансферазу (Galt). Хотя приложение было помечено с paGFP визуализировать быстрое аксонов транспорт АРР и разрешение от околоядерной области, это первая демонстрация торговли APP от одного четко определенной отсека в другой 11,31,32. Здесь мы демонстрируем точную фото-активацию в пределах TGN и выход из них APP в последующих отсеках и последующего расщепления и выведения из лизосом 30. Точное фотоактивация в Гольджи широко применимо к другим системам белка.

Protocol

1. Сотовый покрытие и Трансфекцию В капот культуре клеток, плиты ~ 300000 ~ 500000 SN56 клетки (вид подарка доктора Джейн Rylett) на 35 мм со стеклянным дном конфокальной блюдо и накрыть предварительно трансфекции СМИ (Игла в модификации Дульбекко DMEM, с добавлением 10% FBS). Инкубируйте клетки …

Representative Results

Типичные результаты показывают, βAPP оставляя TGn и, кажется, трафик быстро LAMP1 (рис 1а, б). В период фото-активации, пузырьки можно увидеть вылетающих Гольджи, предназначенный для лизосом (рис 1b). Без лечения ингибитором, флуоресценция paGFP будут видны в лизосомах, а есть фот?…

Discussion

Этот метод описывает точную фото-активацию мембранных белков с меткой paGFP в TGN для визуализации последующее торговлей людьми и расщепление. В то время как paGFP был создан более десяти лет назад 25, это первый пример точного фото-активации следовать торговлей зарождающихся белков ни?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was funded by a grant from the Canadian Institute for Health Research MOP 82890 to SHP. The authors wish to thank G.H. Patterson and J. Lippincott Schwartz for the paGFP construct. SN56 cells were a gift of Dr. Jane Rylett.

Materials

35-mm glass bottom culture dishes  Matek P-35G-1.5-20-C
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline Life Technologies 14190-144
Hanks Balanced Salt Solution Life Technologies 14025-092
Lipofectamine 2000 Life Technologies 11668019
Dulbecco's Modified Eagle Medium Life Technologies 11995-092
Penicilin/Streptomycin Life Technologies 15140-122
dibutyrl cyclic AMP Sigma  D0627
Heat in activated Fetal Bovine Serum Life Technologies 10082147
Heated Microscopy stage insert P PeCon GmbH
Tempcontrol 37–2 digital 2-channel PeCon GmbH
Zeiss LSM-510 META laser- scanning microscope  Carl Zeiss with laser diode, argon laser, and HeNe1 laser
Zeiss 63× 1.4 numerical aperture oil immersion lens  Carl Zeiss
L685, 458  EMD Millipore 565771 dissolved in DMSO
cholorquine  Sigma C6628  dissolved in water
Nocodazole Sigma M1404 dissolved in DMSO
Dimethyl sulphoxide  Sigma 472301
Imaris  Bitplane with colocalization package 

References

  1. Masters, C. L., et al. Amyloid plaque core protein in Alzheimer disease and Down syndrome. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 82 (12), 4245-4249 (1985).
  2. Vassar, R., et al. Beta-secretase cleavage of Alzheimer’s amyloid precursor protein by the transmembrane aspartic protease BACE. Science. 286 (5440), 735-741 (1999).
  3. De Strooper, B., et al. Deficiency of presenilin-1 inhibits the normal cleavage of amyloid precursor protein. Nature. 391 (6665), 387-390 (1998).
  4. Xia, W., et al. Presenilin complexes with the C-terminal fragments of amyloid precursor protein at the sites of amyloid beta-protein generation. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 97 (16), 9299-9304 (2000).
  5. Li, Y. M., et al. Presenilin 1 is linked with gamma-secretase activity in the detergent solubilized state. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 97 (11), 6138-6143 (2000).
  6. Kim, W., Hecht, M. H. Sequence determinants of enhanced amyloidogenicity of Alzheimer A{beta}42 peptide relative to A{beta}40. J. Biol. Chem. 280 (41), 35069-35076 (2005).
  7. Pawar, A. P., et al. Prediction of ‘aggregation-prone’ and “aggregation-susceptible. J. Mol. Biol. 350 (2), 379-392 (2005).
  8. Wen, L., et al. VPS35 haploinsufficiency increases Alzheimer’s disease neuropathology. J. Cell Biol. 195 (5), 765-779 (2011).
  9. Rogaeva, E., et al. The neuronal sortilin-related receptor SORL1 is genetically associated with Alzheimer disease. Nat. Genet. 39 (2), 168-177 (2007).
  10. Andersen, O. M., et al. Neuronal sorting protein-related receptor sorLA/LR11 regulates processing of the amyloid precursor protein. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 102 (38), 13461-13466 (2005).
  11. Schmidt, V., et al. SorLA/LR11 regulates processing of amyloid precursor protein via interaction with adaptors GGA and PACS-1. J. Biol. Chem. 282 (45), 32956-32964 (2007).
  12. Moreth, J., Mavoungou, C., Schindowski, K. Passive anti-amyloid immunotherapy in Alzheimer’s disease: What are the most promising targets. Immun Ageing. 10 (1), 18 (2013).
  13. Pasternak, S. H., et al. Presenilin-1, nicastrin, amyloid precursor protein, and gamma-secretase activity are co-localized in the lysosomal membrane. J. Biol. Chem. 278 (29), 26687-26694 (2003).
  14. Schrader-Fischer, G., Paganetti, P. A. Effect of alkalizing agents on the processing of the beta-amyloid precursor protein. Brain Res. 716 (1-2), 91-100 (1996).
  15. Golde, T., Estus, S., Younkin, L., Selkoe, D., Younkin, S. Processing of the amyloid protein precursor to potentially amyloidogenic derivatives. Science. 255 (5045), 728-730 (1992).
  16. Higaki, J., Quon, D., Zhong, Z., Cordell, B. Inhibition of beta-amyloid formation identifies proteolytic precursors and subcellular site of catabolism. Neuron. 14 (3), 651-659 (1995).
  17. Chen, F., et al. Carboxyl-terminal Fragments of Alzheimer beta -Amyloid Precursor Protein Accumulate in Restricted and Unpredicted Intracellular Compartments in Presenilin 1-deficient Cells. J. Biol. Chem. 275 (47), 36794-36802 (2000).
  18. Perez, R. G., et al. Mutagenesis identifies new signals for beta-amyloid precursor protein endocytosis, turnover, and the generation of secreted fragments, including Abeta42. J. Biol. Chem. 274 (27), 18851-18856 (1999).
  19. Cirrito, J. R., et al. Endocytosis Is Required for Synaptic Activity-Dependent Release of Amyloid-β In Vivo. Neuron. 58 (1), 42-51 (2008).
  20. Carey, R. M., Balcz, B. A., Lopez-Coviella, I., Slack, B. E. Inhibition of dynamin-dependent endocytosis increases shedding of the amyloid precursor protein ectodomain and reduces generation of amyloid beta protein. BMC Cell Biol. 6, 30 (2005).
  21. Traub, L. M., Kornfeld, S. The trans-Golgi network: a late secretory sorting station. Curr. Opin. Cell Biol. 9 (4), 527-533 (1997).
  22. Vieira, S. I., et al. Retrieval of the Alzheimer’s amyloid precursor protein from the endosome to the TGN is S655 phosphorylation state-dependent and retromer-mediated. Mol Neurodegener. 5 (1), 40 (2010).
  23. Sullivan, C. P., et al. Retromer disruption promotes amyloidogenic APP processing. Neurobiol. Dis. 43 (2), 338-3345 (2011).
  24. Fjorback, A. W., et al. Retromer binds the FANSHY sorting motif in SorLA to regulate amyloid precursor protein sorting and processing. J. Neurosci. 32 (4), 1467-1480 (2012).
  25. Patterson, G. H., Lippincott-Schwartz, J. A Photoactivatable GFP for Selective Photolabeling of Proteins and Cells. Science. 297 (5588), 1873-1877 (2002).
  26. Patterson, G. H., Lippincott-Schwartz, J. Selective photolabeling of proteins using photoactivatable GFP. Methods. 32 (4), 445-450 (2004).
  27. Hirschberg, K., et al. Kinetic analysis of secretory protein traffic and characterization of golgi to plasma membrane transport intermediates in living cells. J. Cell Biol. 143 (6), 1485-1503 (1998).
  28. Kim, P. K., Mullen, R. T., Schumann, U., Lippincott-Schwartz, J. The origin and maintenance of mammalian peroxisomes involves a de novo PEX16-dependent pathway from the ER. J. Cell Biol. 173 (4), 521-532 (2006).
  29. Hailey, D. W., et al. Mitochondria supply membranes for autophagosome biogenesis during starvation. Cell. 141 (4), 656-667 (2010).
  30. Tam, J. H. K., Seah, C., Pasternak, S. H. The Amyloid Precursor Protein is rapidly transported from the Golgi apparatus to the lysosome and where it is processed into beta-amyloid. Mol. Brain. 7 (1), 54 (2014).
  31. Scott, D. A., Das, U., Tang, Y., Roy, S. Mechanistic logic underlying the axonal transport of cytosolic proteins. Neuron. 70 (3), 441-454 (2011).
  32. Herl, L., et al. Mutations in amyloid precursor protein affect its interactions with presenilin/gamma-secretase. Mol. Cell. Neurosci. 41 (2), 166-174 (2009).
  33. Lorenzen, A., et al. Rapid and Direct Transport of Cell Surface APP to the Lysosome defines a novel selective pathway. Mol. Brain. 3 (1), 11 (2010).
  34. Thinakaran, G., Teplow, D. B., Siman, R., Greenberg, B., Sisodia, S. S. Metabolism of the ‘Swedish’ amyloid precursor protein variant in neuro2a (N2a) cells. Evidence that cleavage at the beta-secretase”;site occurs in the golgi apparatus. J. Biol. Chem. 271 (16), 9390-9397 (1996).
  35. Thinakaran, G., Koo, E. H. Amyloid Precursor Protein Trafficking, Processing, and Function. J. Biol. Chem. 283 (44), 29615-29619 (2008).
  36. Schneider, M., Barozzi, S., Testa, I., Faretta, M., Diaspro, A. Two-Photon Activation and Excitation Properties of PA-GFP in the 720-920-nm Region. Biophys. J. 89 (2), 1346-1352 (2005).
  37. Sevier, C. S., Weisz, O. A., Davis, M., Machamer, C. E. Efficient export of the vesicular stomatitis virus G protein from the endoplasmic reticulum requires a signal in the cytoplasmic tail that includes both tyrosine-based and di-acidic. 11 (1), 13-22 (2000).
  38. Muresan, V., Varvel, N. H., Lamb, B. T., Muresan, Z. The cleavage products of amyloid-beta precursor protein are sorted to distinct carrier vesicles that are independently transported within neurites. J. Neurosci. 29, 3565-3578 (2009).
check_url/53153?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Tam, J. H. K., Pasternak, S. H. Imaging the Intracellular Trafficking of APP with Photoactivatable GFP. J. Vis. Exp. (104), e53153, doi:10.3791/53153 (2015).

View Video