Wij presenteren een protocol voor vetweefsel afgeleide microvasculaire brokken belovend vascularisatie eenheden vertegenwoordigen isoleren. Ze kunnen snel worden geïsoleerd, vereisen geen in vitro verwerking en kunnen aldus worden gebruikt voor één-stap prevascularization op verschillende gebieden van weefselengineering.
Een functionele microvasculaire netwerk van centraal belang voor de overleving en integratie van gemanipuleerde weefselconstructen. Voor dit doel zijn verscheidene angiogene en prevascularization strategieën vastgesteld. De meeste cel-gebaseerde benaderingen omvatten tijdrovende stappen in vitro voor de vorming van een microvasculaire netwerk. Ze zijn daarom niet geschikt voor intraoperatieve eenstaps werkwijzen. Vetweefsel afgeleide microvasculaire fragmenten (ad-MVF) vertegenwoordigen veelbelovende vascularisatie eenheden. Ze kunnen gemakkelijk worden geïsoleerd uit vetweefsel en vertonen een functionele microvaatje morfologie. Bovendien zijn ze snel weer in elkaar in nieuwe microvasculaire netwerken na implantatie in vivo. Daarnaast zijn er ad-MVF aangetoond dat lymfangiogenese induceren. Tenslotte ze een rijke bron van mesenchymale stamcellen, die verder kunnen bijdragen tot hun hoge vascularisatie potentieel. In eerdere studies hebben we de opmerkelijke vascularizati aangetoondop de capaciteit van de ad-MVF in engineered bot en huid substituten. In de huidige studie, doen we verslag van een gestandaardiseerd protocol voor de enzymatische isolatie van ad-MVF uit muizen vetweefsel.
Weefselmanipulatie is gericht op de vervaardiging van weefsels en organen vervangingsmiddelen die de functie van inoperabele handhaven herstellen of versterken in vivo tegenhangers 1, 2. Het lot van gemanipuleerde weefselconstructen cruciaal afhangt van een adequate vascularisatie 3. Microvasculaire netwerken binnen deze constructies moeten hiërarchisch worden georganiseerd met kleine slagaders, haarvaten en venulen efficiënte doorbloeding na inoculatie aan het vaatstelsel van de ontvanger 4 mogelijk te maken. Het genereren van dergelijke netwerken is een van de belangrijkste uitdagingen in tissue engineering. Voor dit doel heeft een breed spectrum van experimentele vascularisatie strategieën geïntroduceerd in de afgelopen twee decennia 5, 6.
Angiogene benaderingen stimuleren de ingroei van de ontvanger microvaten in gemanipuleerde tissUES via structurele of fysicochemische modificatie stellage, zoals de opname van groeifactoren 7. Echter, voor de vascularisatie van grote driedimensionale constructies, angiogenese-afhankelijke strategieën sterk beperkt door de langzame groei van het ontwikkelen van microvaten 8.
Daarentegen het begrip prevascularization richt voor het genereren van functionele microvasculaire netwerken binnen weefselconstructen vóór de implantatie 9. Gebruikelijke prevascularization omvat de co-kweek van vat vormende cellen, bijvoorbeeld endotheelcellen, mural cellen of stamcellen 10 binnen steigers. Na de vorming microvasculaire netwerk, kan de prevascularized constructen vervolgens worden geïmplanteerd in weefseldefecten. Opmerkelijk, dit prevascularization aanpak is moeilijk toe te passen in een klinische setting, omdat het is gebaseerd op complexe en tijdrovende in vitro </ em>, welke zijn beperkt door grote obstakels in de regelgeving 9. Derhalve is er nog steeds behoefte aan de ontwikkeling van nieuwe prevascularization strategieën die meer geschikt zijn voor een brede klinische toepassing zijn.
Prevascularization dergelijke strategie kan de toepassing van vetweefsel afgeleide microvasculaire fragmenten (ad-MVF) zijn. ad-MVF vertegenwoordigen krachtige vascularisatie eenheden die in grote hoeveelheden uit het vetweefsel van ratten 11, 12 en 13 muizen worden geoogst. Ze bestaan uit arteriolaire, capillaire en venulaire vat segmenten die een fysiologisch microvaatje morfologie vertonen met een lumen en stabiliserende perivasculaire cellen 14, 15. Deze unieke functie kan de onmiddellijke implantatie van ad-MVF geplaatste steigers in het weefsel gebreken zonder precultivation. Er is de ad-MVF snel weer in elkaar inom functionele microvasculaire netwerken. Bovendien ad-MVF vormen een rijke bron van mesenchymale stamcellen 16, die bovendien kunnen bijdragen tot hun opvallende regeneratievermogen. Dienovereenkomstig worden ad-MVF meer gebruikt in verschillende gebieden van weefselengineering 14, 15, 17, 18, 19, 20, 21.
De isolatie van ad-MVF is oorspronkelijk opgericht in ratten 11, 12. Hierin beschrijven we een protocol, dat de gestandaardiseerde isolatie van muizen ad-MVF maakt van epididymale vetkussentjes. Dit kan verder inzicht in de moleculaire mechanismen die ten grondslag liggen aan ad-MVF functie door het gebruik van transgene muismodellen te bieden.
In deze studie presenteren we een gevestigde protocol voor de isolatie van ad-MVF. Het verkrijgen van ad-MVF uit muizen vetweefsel is een eenvoudige procedure met een paar kritische stappen. Muizen vertonen verschillende subcutane en intra-abdominale vet. Zoals eerder beschreven voor ratten, de meest geschikte vetbron voor de isolatie van ad-MVF de epididymale vetkussentjes door hun omvang, homogene structuur en minimale verontreiniging met grotere bloedvaten 11, 12.<…
The authors have nothing to disclose.
We zijn dankbaar voor de uitstekende technische ondersteuning van Janine Becker, Caroline Bickelmann en Ruth Nickels. Deze studie werd gefinancierd door een subsidie van de Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG – German Research Foundation) – LA 2682 / 7-1.
1.5-mL conical microcentrifuge tube | VWR, Kelsterbach, Germany | 700-5239 | |
100-µL precision pipette | Eppendorf, Hamburg, Germany | 4920000059 | |
10-mL measuring pipette | Costar, Corning Inc., New York, USA | 4488 | |
14-mL PP tubes | Greiner bio-one, Frickenhausen, Germany | 187261 | |
1-mL precision pipette | Eppendorf, Hamburg, Germany | 4920000083 | |
500-µm filter (pluriStrainer 500 µm) | HISS Diagnostics, Freiburg, Germany | 43-50500-03 | |
50-mL conical centrifuge tube | Greiner bio-one, Frickenhausen, Germany | 227261 | |
50-mL Erlenmeyer flask | VWR, Kelsterbach, Germany | 214-0211 | |
96-well plate | Greiner bio-one, Frickenhausen, Germany | 65518 | |
cell detachment solution (Accutase) | eBioscience, San Diego, CA USA | 00-4555-56 | |
C57BL/6 mice | Charles River, Cologne, Germany | 027 | |
C57BL/6-Tg(CAG-EGFP)1Osb/J mice | The Jackson Laboratory, Bar Harbor, USA | 003291 | |
CD117-FITC | BD Biosciences, Heidelberg, Germany | 553373 | |
CD31-PE | BD Biosciences, Heidelberg, Germany | 553354 | |
Collagenase NB4G | Serva Electrophoresis GmbH, Heidelberg, Germany | 17465.02 | Lot tested by manufacturer for enzymatic activity |
Dissection scissors | Braun Aesculap AG &CoKG, Melsungen, Germany | BC 601 | |
DNA-binding dye (Bisbenzimide H33342) | Sigma-Aldrich, Taufkirchen, Germany | B2261 | |
Dulbecco's modified Eagle medium (DMEM) | PAN Biotech, Rickenbach, Germany | P04-03600 | |
Fetal calf serum (FCS) | Biochrom GmbH, Berlin, Germany | S0615 | |
Fine forceps | S&T AG, Neuhausen, Switzerland | FRS-15 RM-8 | |
Fine scissors | World Precision Instrumets, Sarasota, FL, USA | 503261 | |
Dermal skin substitute (Integra) | Integra Life Sciences, Sain Priest, France | 62021 | |
Ketamine | Serumwerk Bernburg AG, Bernburg, Germany | 7005294 | |
M-IgG2akAL488 | eBioscience, San Diego, CA USA | 53-4724-80 | |
Octeniderm (disinfecting solution) | Schülke & Mayer, Norderstedt, Germany | 118211 | |
Penicillin/Streptomycin | Biochrom, Berlin, Germany | A2213 | |
Petri dish | Greiner bio-one, Frickenhausen, Germany | 664160 | |
Phosphate-buffered saline (PBS) | Lonza Group, Basel, Switzerland | 17-516F | |
pluriStrainer 20-µm (20 µm filter) | HISS Diagnostics, Freiburg, Germany | 43-50020-03 | |
Rat-IgG2akFITC | BD Biosciences, Heidelberg, Germany | 553988 | |
Rat-IgG2akPE | BD Biosciences, Heidelberg, Germany | 553930 | |
Small preparation scissors | S&T AG, Neuhausen, Switzerland | SDC-15 R-8S | |
Surgical forceps | Braun Aesculap AG &CoKG, Melsungen, Germany | BD510R | |
Tape (Heftpflaster Seide) 1.25 cm | Fink & Walter GmbH, Mechweiler, Germany | 1671801 | |
Xylazine | Bayer Vital GmbH, Leverkusen, Germany | 1320422 | |
α-SMA-AL488 | eBioscience, San Diego, CA USA | 53-9760-82 | Intracellular labeling additionally requires Cytofix/Cytoperm (BD Biosciences, Heidelberg, Germany; #554722) |