Vi presenterar ett protokoll för att isolera adipos vävnad mikrovaskulära fragment som representerar lovande vaskularisering enheter. De snabbt kan isoleras, inte kräver bearbetning in vitro och sålunda kan användas för ett steg prevaskularise inom olika områden av vävnadsteknik.
En funktionell mikrovaskulära nätverket är av avgörande betydelse för överlevnad och integrering av konstruerade vävnadskonstruktioner. För detta ändamål har flera angiogena och prevaskularisering strategier fastställts. Dock de flesta cellbaserade tillvägagångssätt inkluderar tidskrävande in vitro stegen för bildningen av en mikrovaskulär nätverk. Därför är de inte lämpliga för intraoperativa ett steg förfaranden. Adipos vävnad mikrovaskulära fragment (ad-MVF) representerar lovande vaskularisering enheter. De kan lätt isoleras från fettvävnad och uppvisar en funktionell mikrokärls morfologi. Dessutom är de snabbt ihop till nya mikrovaskulära nätverk efter in vivo implantation. Dessutom har ad-MVF visats inducera lymfangiogenes. Slutligen, de är en rik källa till mesenkymala stamceller, vilket ytterligare kan bidra till deras höga vaskularisering potential. I tidigare studier har vi visat den anmärkningsvärda vascularizatipå kapaciteten hos ad-MVF i manipulerade ben och hud substitut. I den aktuella studien, vi rapporterar om ett standardiserat protokoll för enzymatisk isolering av ad-MVF från mus fettvävnad.
Vävnadsteknik är inriktat på tillverkning av vävnads- och organersättning som upprätthålla, återställa eller förstärker funktionen av inoperabel in vivo motsvarigheter 1, 2. Ödet av konstruerade vävnadskonstrukten beror ytterst på en tillräcklig vaskularisering 3. Mikrovaskulära nätverk inom dessa konstruktioner bör hierarkiskt organiserad med arterioler, kapillärer och venoler att möjliggöra en effektiv blod perfusion efter inosculation till mottagarens kärl 4. Alstringen av sådana nät är bland de viktigaste utmaningarna i vävnadsteknik. För detta ändamål har ett brett spektrum av experimentella vaskularisering strategier införts under de senaste två decennierna 5, 6.
Angiogena metoder stimulera inväxt av mottagande mikrokärl i konstruerade tissUE: er med hjälp av strukturella eller fysikalisk-kemisk scaffold modifiering, såsom inkorporeringen av tillväxtfaktorerna 7. Men för vaskularisering av stora tredimensionella konstruktioner, angiogenesberoende strategier markant begränsas av långsamma tillväxttakten för att utveckla mikrokärl 8.
I kontrast, begreppet prevaskularise syftar för generering av funktionella mikrovaskulära nätverk inom vävnad konstruktioner före deras implantering 9. Konventionell prevaskularise involverar samodling av kärlbildande celler, såsom endotelceller, väggmålning celler eller stamceller 10, inom byggnadsställningar. Efter mikrovaskulära nätverksbildning, kan de prevascularized konstruktioner sedan implanteras i vävnadsdefekter. Anmärkningsvärt är detta prevaskularisering metod svårt att tillämpa i en klinisk miljö, eftersom det bygger på komplexa och tidskrävande in vitro </ em> förfaranden, som är begränsade av stora regleringshinder 9. Följaktligen finns det fortfarande ett behov av utveckling av nya prevaskularisering strategier som är mer lämpade för en bred klinisk tillämpning.
Sådan prevaskularise strategi kan vara appliceringen av adipos vävnad mikrovaskulära fragment (ad-MVf) framåt. ad-MVF representerar potenta vaskularisering heter som kan skördas i stora mängder från fettvävnad hos råttor 11, 12 och möss 13. De består av arteriolär, kapillär, och venular fartygssegment, vilka uppvisar en fysiologisk mikrokärls morfologi med en lumen och stabiliserande perivaskulära celler 14, 15. Denna unika funktion gör det möjligt att omedelbart implantation av ad-MVF-seedade ställningar i vävnadsdefekter utan precultivation. Där ad-MVF snabbt ihop ifunktionella mikrovaskulära nätverk. Vidare ad-MVF representerar en rik källa av mesenkymala stamceller 16, som dessutom kan bidra till deras slående regenerativ kapacitet. Följaktligen är ad-MVF används alltmer inom olika områden av vävnadsteknik 14, 15, 17, 18, 19, 20, 21.
Isoleringen av ad-MVF har ursprungligen etablerats i råttor 11, 12. Häri beskriver vi ett protokoll som gör det möjligt att standardiserade isoleringen av mus ad-MVF från epididymis fettkuddar. Detta kan ge ytterligare insikter i molekylära mekanismerna bakom ad-MVF-funktion genom att använda transgena musmodeller.
I denna studie presenterar vi ett väletablerat protokoll för isolering av ad-MVF. Att få ad-MVF från mus fettvävnad är en enkel procedur med några viktiga steg. Möss uppvisar olika subkutan och intraabdominella fettdepåer. Som tidigare beskrivits för råttor, den mest lämpliga fettkällan för isoleringen av ad-MVF är de epididymala fettkuddarna grund av sin storlek, homogen struktur och minimal förorening med större blodkärl 11, 12. I kontrast, s…
The authors have nothing to disclose.
Vi är tacksamma för det utmärkta teknisk assistans av Janine Becker, Caroline Bickelmann och Ruth Nickels. Denna studie har finansierats av ett bidrag på Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG – German Research Foundation) – LA 2682 / 7-1.
1.5-mL conical microcentrifuge tube | VWR, Kelsterbach, Germany | 700-5239 | |
100-µL precision pipette | Eppendorf, Hamburg, Germany | 4920000059 | |
10-mL measuring pipette | Costar, Corning Inc., New York, USA | 4488 | |
14-mL PP tubes | Greiner bio-one, Frickenhausen, Germany | 187261 | |
1-mL precision pipette | Eppendorf, Hamburg, Germany | 4920000083 | |
500-µm filter (pluriStrainer 500 µm) | HISS Diagnostics, Freiburg, Germany | 43-50500-03 | |
50-mL conical centrifuge tube | Greiner bio-one, Frickenhausen, Germany | 227261 | |
50-mL Erlenmeyer flask | VWR, Kelsterbach, Germany | 214-0211 | |
96-well plate | Greiner bio-one, Frickenhausen, Germany | 65518 | |
cell detachment solution (Accutase) | eBioscience, San Diego, CA USA | 00-4555-56 | |
C57BL/6 mice | Charles River, Cologne, Germany | 027 | |
C57BL/6-Tg(CAG-EGFP)1Osb/J mice | The Jackson Laboratory, Bar Harbor, USA | 003291 | |
CD117-FITC | BD Biosciences, Heidelberg, Germany | 553373 | |
CD31-PE | BD Biosciences, Heidelberg, Germany | 553354 | |
Collagenase NB4G | Serva Electrophoresis GmbH, Heidelberg, Germany | 17465.02 | Lot tested by manufacturer for enzymatic activity |
Dissection scissors | Braun Aesculap AG &CoKG, Melsungen, Germany | BC 601 | |
DNA-binding dye (Bisbenzimide H33342) | Sigma-Aldrich, Taufkirchen, Germany | B2261 | |
Dulbecco's modified Eagle medium (DMEM) | PAN Biotech, Rickenbach, Germany | P04-03600 | |
Fetal calf serum (FCS) | Biochrom GmbH, Berlin, Germany | S0615 | |
Fine forceps | S&T AG, Neuhausen, Switzerland | FRS-15 RM-8 | |
Fine scissors | World Precision Instrumets, Sarasota, FL, USA | 503261 | |
Dermal skin substitute (Integra) | Integra Life Sciences, Sain Priest, France | 62021 | |
Ketamine | Serumwerk Bernburg AG, Bernburg, Germany | 7005294 | |
M-IgG2akAL488 | eBioscience, San Diego, CA USA | 53-4724-80 | |
Octeniderm (disinfecting solution) | Schülke & Mayer, Norderstedt, Germany | 118211 | |
Penicillin/Streptomycin | Biochrom, Berlin, Germany | A2213 | |
Petri dish | Greiner bio-one, Frickenhausen, Germany | 664160 | |
Phosphate-buffered saline (PBS) | Lonza Group, Basel, Switzerland | 17-516F | |
pluriStrainer 20-µm (20 µm filter) | HISS Diagnostics, Freiburg, Germany | 43-50020-03 | |
Rat-IgG2akFITC | BD Biosciences, Heidelberg, Germany | 553988 | |
Rat-IgG2akPE | BD Biosciences, Heidelberg, Germany | 553930 | |
Small preparation scissors | S&T AG, Neuhausen, Switzerland | SDC-15 R-8S | |
Surgical forceps | Braun Aesculap AG &CoKG, Melsungen, Germany | BD510R | |
Tape (Heftpflaster Seide) 1.25 cm | Fink & Walter GmbH, Mechweiler, Germany | 1671801 | |
Xylazine | Bayer Vital GmbH, Leverkusen, Germany | 1320422 | |
α-SMA-AL488 | eBioscience, San Diego, CA USA | 53-9760-82 | Intracellular labeling additionally requires Cytofix/Cytoperm (BD Biosciences, Heidelberg, Germany; #554722) |