Summary

Isolering av murina adipos vävnad Microvascular Fragment som Vaskularisering Aggregat för Tissue Engineering

Published: April 30, 2017
doi:

Summary

Vi presenterar ett protokoll för att isolera adipos vävnad mikrovaskulära fragment som representerar lovande vaskularisering enheter. De snabbt kan isoleras, inte kräver bearbetning in vitro och sålunda kan användas för ett steg prevaskularise inom olika områden av vävnadsteknik.

Abstract

En funktionell mikrovaskulära nätverket är av avgörande betydelse för överlevnad och integrering av konstruerade vävnadskonstruktioner. För detta ändamål har flera angiogena och prevaskularisering strategier fastställts. Dock de flesta cellbaserade tillvägagångssätt inkluderar tidskrävande in vitro stegen för bildningen av en mikrovaskulär nätverk. Därför är de inte lämpliga för intraoperativa ett steg förfaranden. Adipos vävnad mikrovaskulära fragment (ad-MVF) representerar lovande vaskularisering enheter. De kan lätt isoleras från fettvävnad och uppvisar en funktionell mikrokärls morfologi. Dessutom är de snabbt ihop till nya mikrovaskulära nätverk efter in vivo implantation. Dessutom har ad-MVF visats inducera lymfangiogenes. Slutligen, de är en rik källa till mesenkymala stamceller, vilket ytterligare kan bidra till deras höga vaskularisering potential. I tidigare studier har vi visat den anmärkningsvärda vascularizatipå kapaciteten hos ad-MVF i manipulerade ben och hud substitut. I den aktuella studien, vi rapporterar om ett standardiserat protokoll för enzymatisk isolering av ad-MVF från mus fettvävnad.

Introduction

Vävnadsteknik är inriktat på tillverkning av vävnads- och organersättning som upprätthålla, återställa eller förstärker funktionen av inoperabel in vivo motsvarigheter 1, 2. Ödet av konstruerade vävnadskonstrukten beror ytterst på en tillräcklig vaskularisering 3. Mikrovaskulära nätverk inom dessa konstruktioner bör hierarkiskt organiserad med arterioler, kapillärer och venoler att möjliggöra en effektiv blod perfusion efter inosculation till mottagarens kärl 4. Alstringen av sådana nät är bland de viktigaste utmaningarna i vävnadsteknik. För detta ändamål har ett brett spektrum av experimentella vaskularisering strategier införts under de senaste två decennierna 5, 6.

Angiogena metoder stimulera inväxt av mottagande mikrokärl i konstruerade tissUE: er med hjälp av strukturella eller fysikalisk-kemisk scaffold modifiering, såsom inkorporeringen av tillväxtfaktorerna 7. Men för vaskularisering av stora tredimensionella konstruktioner, angiogenesberoende strategier markant begränsas av långsamma tillväxttakten för att utveckla mikrokärl 8.

I kontrast, begreppet prevaskularise syftar för generering av funktionella mikrovaskulära nätverk inom vävnad konstruktioner före deras implantering 9. Konventionell prevaskularise involverar samodling av kärlbildande celler, såsom endotelceller, väggmålning celler eller stamceller 10, inom byggnadsställningar. Efter mikrovaskulära nätverksbildning, kan de prevascularized konstruktioner sedan implanteras i vävnadsdefekter. Anmärkningsvärt är detta prevaskularisering metod svårt att tillämpa i en klinisk miljö, eftersom det bygger på komplexa och tidskrävande in vitro </ em> förfaranden, som är begränsade av stora regleringshinder 9. Följaktligen finns det fortfarande ett behov av utveckling av nya prevaskularisering strategier som är mer lämpade för en bred klinisk tillämpning.

Sådan prevaskularise strategi kan vara appliceringen av adipos vävnad mikrovaskulära fragment (ad-MVf) framåt. ad-MVF representerar potenta vaskularisering heter som kan skördas i stora mängder från fettvävnad hos råttor 11, 12 och möss 13. De består av arteriolär, kapillär, och venular fartygssegment, vilka uppvisar en fysiologisk mikrokärls morfologi med en lumen och stabiliserande perivaskulära celler 14, 15. Denna unika funktion gör det möjligt att omedelbart implantation av ad-MVF-seedade ställningar i vävnadsdefekter utan precultivation. Där ad-MVF snabbt ihop ifunktionella mikrovaskulära nätverk. Vidare ad-MVF representerar en rik källa av mesenkymala stamceller 16, som dessutom kan bidra till deras slående regenerativ kapacitet. Följaktligen är ad-MVF används alltmer inom olika områden av vävnadsteknik 14, 15, 17, 18, 19, 20, 21.

Isoleringen av ad-MVF har ursprungligen etablerats i råttor 11, 12. Häri beskriver vi ett protokoll som gör det möjligt att standardiserade isoleringen av mus ad-MVF från epididymis fettkuddar. Detta kan ge ytterligare insikter i molekylära mekanismerna bakom ad-MVF-funktion genom att använda transgena musmodeller.

Protocol

Alla förfaranden utfördes i enlighet med National Institute of Health riktlinjer för användning av försöksdjur och följde institutionella riktlinjer (Landesamt für Soziales, Gesundheit und Verbraucherschutz, Abt. Lebensmittel- und Veterinärwesen, Zentralstelle, Saarbrücken, Tyskland). 1. Framställning av kirurgiska instrument Hålla redo de dissektion sax, kirurgiska pincetter, små framställnings sax, fin pincett och en steril petriskål med 15 ml Dulbeccos modifierad…

Representative Results

I föreliggande studie utförde vi sex ad-MVF isoleringsförfaranden med fettvävnad från 7- till 12-månader gammal hane av vildtyp C57BL / 6-möss (genomsnittlig kroppsvikt: 35 ± 1 g). Figur 1 illustrerar skörd av murina epididymal fettkuddar med efterföljande mekanisk och enzymatisk ad-MVF isolering. Den tid som krävs för skörd av fett var 30 min och för isolering av ad-MVF var 120 min. Totalt tog förfarandet 150 min. <p class="jove_content" fo:keep-toget…

Discussion

I denna studie presenterar vi ett väletablerat protokoll för isolering av ad-MVF. Att få ad-MVF från mus fettvävnad är en enkel procedur med några viktiga steg. Möss uppvisar olika subkutan och intraabdominella fettdepåer. Som tidigare beskrivits för råttor, den mest lämpliga fettkällan för isoleringen av ad-MVF är de epididymala fettkuddarna grund av sin storlek, homogen struktur och minimal förorening med större blodkärl 11, 12. I kontrast, s…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi är tacksamma för det utmärkta teknisk assistans av Janine Becker, Caroline Bickelmann och Ruth Nickels. Denna studie har finansierats av ett bidrag på Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG – German Research Foundation) – LA 2682 / 7-1.

Materials

1.5-mL conical microcentrifuge tube VWR, Kelsterbach, Germany 700-5239
100-µL precision pipette Eppendorf, Hamburg, Germany 4920000059
10-mL measuring pipette Costar, Corning Inc., New York, USA 4488
14-mL PP tubes Greiner bio-one, Frickenhausen, Germany 187261
1-mL precision pipette Eppendorf, Hamburg, Germany 4920000083
500-µm filter (pluriStrainer 500 µm) HISS Diagnostics, Freiburg, Germany 43-50500-03
50-mL conical centrifuge tube Greiner bio-one, Frickenhausen, Germany 227261
50-mL Erlenmeyer flask VWR, Kelsterbach, Germany 214-0211
96-well plate Greiner bio-one, Frickenhausen, Germany 65518
cell detachment solution (Accutase) eBioscience, San Diego, CA USA 00-4555-56
C57BL/6 mice Charles River, Cologne, Germany 027
C57BL/6-Tg(CAG-EGFP)1Osb/J mice The Jackson Laboratory, Bar Harbor, USA 003291
CD117-FITC BD Biosciences, Heidelberg, Germany 553373
CD31-PE BD Biosciences, Heidelberg, Germany 553354
Collagenase NB4G  Serva Electrophoresis GmbH, Heidelberg, Germany 17465.02 Lot tested by manufacturer for enzymatic activity
Dissection scissors Braun Aesculap AG &CoKG, Melsungen, Germany BC 601
DNA-binding dye (Bisbenzimide H33342) Sigma-Aldrich, Taufkirchen, Germany B2261
Dulbecco's modified Eagle medium (DMEM)  PAN Biotech, Rickenbach, Germany P04-03600
Fetal calf serum (FCS) Biochrom GmbH, Berlin, Germany S0615
Fine forceps S&T AG, Neuhausen, Switzerland FRS-15 RM-8
Fine scissors World Precision Instrumets, Sarasota, FL, USA 503261
Dermal skin substitute (Integra) Integra Life Sciences, Sain Priest, France 62021
Ketamine  Serumwerk Bernburg AG, Bernburg, Germany 7005294
M-IgG2akAL488   eBioscience, San Diego, CA USA 53-4724-80
Octeniderm (disinfecting solution) Schülke & Mayer, Norderstedt, Germany 118211
Penicillin/Streptomycin Biochrom, Berlin, Germany A2213
Petri dish Greiner bio-one, Frickenhausen, Germany 664160
Phosphate-buffered saline (PBS) Lonza Group, Basel, Switzerland 17-516F
pluriStrainer 20-µm (20 µm filter) HISS Diagnostics, Freiburg, Germany 43-50020-03
Rat-IgG2akFITC BD Biosciences, Heidelberg, Germany 553988
Rat-IgG2akPE BD Biosciences, Heidelberg, Germany 553930
Small preparation scissors S&T AG, Neuhausen, Switzerland SDC-15 R-8S
Surgical forceps Braun Aesculap AG &CoKG, Melsungen, Germany BD510R
Tape (Heftpflaster Seide) 1.25 cm Fink & Walter GmbH, Mechweiler, Germany 1671801
Xylazine  Bayer Vital GmbH, Leverkusen, Germany 1320422
α-SMA-AL488 eBioscience, San Diego, CA USA 53-9760-82 Intracellular labeling additionally requires Cytofix/Cytoperm (BD Biosciences, Heidelberg, Germany; #554722)

References

  1. Langer, R., Vacanti, J. P. Tissue engineering. Science. 260 (5110), 920-926 (1993).
  2. Khademhosseini, A., Langer, R. A decade of progress in tissue engineering. Nat Protoc. 11 (10), 1775-1781 (2016).
  3. Novosel, E. C., Kleinhans, C., Kluger, P. J. Vascularization is the key challenge in tissue engineering. Adv Drug Deliv Rev. 63 (4-5), 300-311 (2011).
  4. Rouwkema, J., Khademhosseini, A. Vascularization and Angiogenesis in Tissue Engineering: Beyond Creating Static Networks. Trends Biotechnol. 34 (9), 733-745 (2016).
  5. Laschke, M. W., Menger, M. D. Vascularization in tissue engineering: angiogenesis versus inosculation. Eur Surg Res. 48 (2), 85-92 (2012).
  6. Sarker, M., Chen, X. B., Schreyer, D. J. Experimental approaches to vascularisation within tissue engineering constructs. J Biomater Sci Polym Ed. 26 (12), 683-734 (2015).
  7. Frueh, F. S., Menger, M. D., Lindenblatt, N., Giovanoli, P., Laschke, M. W. Current and emerging vascularization strategies in skin tissue engineering. Crit Rev Biotechnol. 20, 1-13 (2016).
  8. Utzinger, U., Baggett, B., Weiss, J. A., Hoying, J. B., Edgar, L. T. Large-scale time series microscopy of neovessel growth during angiogenesis. Angiogenesis. 18 (3), 219-232 (2015).
  9. Laschke, M. W., Menger, M. D. Prevascularization in tissue engineering: Current concepts and future directions. Biotechnol Adv. 34 (2), 112-121 (2016).
  10. Baiguera, S., Ribatti, D. Endothelialization approaches for viable engineered tissues. Angiogenesis. 16 (1), 1-14 (2013).
  11. Wagner, R. C., Kreiner, P., Barrnett, R. J., Bitensky, M. W. Biochemical characterization and cytochemical localization of a catecholamine-sensitive adenylate cyclase in isolated capillary endothelium. Proc Natl Acad Sci U S A. 69 (11), 3175-3179 (1972).
  12. Wagner, R. C., Matthews, M. A. The isolation and culture of capillary endothelium from epididymal fat. Microvasc Res. 10 (3), 286-297 (1975).
  13. Laschke, M. W., Menger, M. D. Adipose tissue-derived microvascular fragments: natural vascularization units for regenerative medicine. Trends Biotechnol. 33 (8), 442-448 (2015).
  14. Laschke, M. W., et al. Vascularisation of porous scaffolds is improved by incorporation of adipose tissue-derived microvascular fragments. Eur Cell Mater. 24, 266-277 (2012).
  15. Frueh, F. S., et al. Adipose tissue-derived microvascular fragments improve vascularization, lymphangiogenesis and integration of dermal skin substitutes. J Invest Dermatol. 137 (1), 217-227 (2017).
  16. McDaniel, J. S., Pilia, M., Ward, C. L., Pollot, B. E., Rathbone, C. R. Characterization and multilineage potential of cells derived from isolated microvascular fragments. J Surg Res. 192 (1), 214-222 (2014).
  17. Nakano, M., et al. Effect of autotransplantation of microvessel fragments on experimental random-pattern flaps in the rat. Eur Surg Res. 30 (3), 149-160 (1998).
  18. Nakano, M., et al. Successful autotransplantation of microvessel fragments into the rat heart. Eur Surg Res. 31 (3), 240-248 (1999).
  19. Shepherd, B. R., Hoying, J. B., Williams, S. K. Microvascular transplantation after acute myocardial infarction. Tissue Eng. 13 (12), 2871-2879 (2007).
  20. Pilia, M., et al. Transplantation and perfusion of microvascular fragments in a rodent model of volumetric muscle loss injury. Eur Cell Mater. 28, 11-23 (2014).
  21. Laschke, M. W., et al. Adipose tissue-derived microvascular fragments from aged donors exhibit an impaired vascularisation capacity. Eur Cell Mater. 28, 287-298 (2015).
  22. Okabe, M., Ikawa, M., Kominami, K., Nakanishi, T., Nishimune, Y. ‘Green mice’ as a source of ubiquitous green cells. FEBS Lett. 407 (3), 313-319 (1997).
  23. Honek, J., et al. Modulation of age-related insulin sensitivity by VEGF-dependent vascular plasticity in adipose tissues. Proc Natl Acad Sci U S A. 111 (41), 14906-14911 (2014).
  24. Cho, C. H., et al. Angiogenic role of LYVE-1-positive macrophages in adipose tissue. Circ Res. 100 (4), e47-e57 (2007).
  25. Han, S., Sun, H. M., Hwang, K. C., Kim, S. W. Adipose-Derived Stromal Vascular Fraction Cells: Update on Clinical Utility and Efficacy. Crit Rev Eukaryot Gene Expr. 25 (2), 145-152 (2015).
  26. Chen, Y. J., et al. Isolation and Differentiation of Adipose-Derived Stem Cells from Porcine Subcutaneous Adipose Tissues. J Vis Exp. (109), e53886 (2016).
  27. Guillaume-Jugnot, P., et al. Autologous adipose-derived stromal vascular fraction in patients with systemic sclerosis: 12-month follow-up. Rheumatology (Oxford). 55 (2), 301-306 (2016).
  28. Tissiani, L. A., Alonso, N. A Prospective and Controlled Clinical Trial on Stromal Vascular Fraction Enriched Fat Grafts in Secondary Breast Reconstruction. Stem Cells Int. , 2636454 (2016).
  29. Calcagni, M., et al. The novel treatment of SVF-enriched fat grafting for painful end-neuromas of superficial radial nerve. Microsurgery. , (2016).
  30. Hoying, J. B., Boswell, C. A., Williams, S. K. Angiogenic potential of microvessel fragments established in three-dimensional collagen gels. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 32 (7), 409-419 (1996).
  31. Kirkpatrick, N. D., Andreou, S., Hoying, J. B., Utzinger, U. Live imaging of collagen remodeling during angiogenesis. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 292 (6), H3198-H3206 (2007).
check_url/55721?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Frueh, F. S., Später, T., Scheuer, C., Menger, M. D., Laschke, M. W. Isolation of Murine Adipose Tissue-derived Microvascular Fragments as Vascularization Units for Tissue Engineering. J. Vis. Exp. (122), e55721, doi:10.3791/55721 (2017).

View Video