Summary

제 브라 피쉬 렌즈의 평가 핵 현지화 및 조직 무결성

Published: May 06, 2019
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Summary

이러한 프로토콜은 피 질 렌즈 형태학을 분석 하기 위해 개발 되었으며, 고정 및 라이브 렌즈에서 제 브라 피시 렌즈 봉합 사의 구조적 완전성을 측정 하 고, 전방 후부 축을 따라 제 브라 피시 렌즈 핵의 위치를 측정할 수 있다.

Abstract

Zebrafish는 유전 조작 및 생체 내 이미징에 유일 하 게 적합 하며 역 유전 연구와 생체 내 이미징에 대 한 transgenics 생성을 위한 점점 더 인기 있는 모델입니다. 이러한 독특한 기능은 제 브라 피시 안구 렌즈 개발과 생리학을 연구 하는 이상적인 플랫폼을 만든다. 우리의 최근 발견 된 아쿠아 포린-0, Aqp0a, 전방 렌즈의 안정성을 위해 요구 되는 봉합 사, 뿐만 아니라 렌즈 핵의 시프트에 대 한 렌즈 중심을 나이에 우리는 zebrafish 렌즈의 특성을 분석 하는 데 특히 적합 한 도구를 개발 하기 위해 우리를 이끌었다. 여기에서 우리는 조직 학적 분석, 면역 조직 화학 및 이미징을 위해 준비 하기 위해 애벌레 및 성인용 렌즈 모두에 적용 할 수 있는 렌즈 해 부에 대 한 자세한 방법을 설명 합니다. 우리는 렌즈 봉합 사 무결성 및 대뇌 피 질의 세포 형태학의 분석에 집중 하 고 유전적으로 새로운 형질 전환 zebrafish 라인에 의해 가능 하 게 만든 렌즈 형태학의 생체 내 이미징에서 얻은 데이터로 해 부 렌즈에서 생성 된 데이터를 비교 인코딩된 형광 표식입니다. 광 축에 수직인 해 부 렌즈의 분석을 통해 전방 후부 축을 따라 렌즈 핵의 상대적인 위치를 정량화 할 수 있습니다. 렌즈 핵을 초기 전방 위치에서 중심으로 이동 하는 것은 성인 제 브라 피시의 일반 렌즈 광학에 필요 합니다. 따라서, 렌즈 핵 위치를 정량적으로 측정 하는 것은 광학적 특성과 직접적으로 관련이 있습니다.

Introduction

제 브라 피쉬는 포유류 렌즈에 대 한 해부학 적 유사성, 유전 및 약리 조작의 상대적인 용이성, 배아 눈 발달 속도, 작은 크기 및 투명성으로 인해 렌즈 개발과 생리학을 연구 하는 훌륭한 모델입니다 초기 단계에서 생체 내 이미징에 대 한 허용. 여기에 설명 된 방법은 조직 무결성에 초점을 맞춘 배아 및 성인 단계에서 zebrafish 렌즈 형태학을 분석 하기 위해 개발 되었으며, 체 생체내에서의 대뇌 피 질 막 형태학 및 렌즈 핵 위치의 위치 전방-후부 축 ex 생체 내. 이러한 방법은 렌즈 개발 및 생리학의 기능적 연구를 위한 출발점으로 서, zebrafish의 렌즈 표현 형에 대 한 역 유전 화면 역할을 합니다.

이미징 제 브라 피시 렌즈 형태학

아쿠아 포린 0(AQP0)은 가장 풍부한 렌즈 멤브레인 단백질 이며 포유류의 여러 필수 기능으로 인해 렌즈 개발과 선명도 모두에 중요 합니다. 제 브라 피쉬는 두 개의 Aqp0s (Aqp0a 및 Aqp0b)를가지고 있으며 배아 및 성인 렌즈 모두에서 기능 상실을 분석 하는 방법을 개발 했습니다. 우리의 연구 결과에 따르면aqp0a-/-돌연변이 체는 전방 봉합 사의 불안정성으로 인해 전방 극성 불투명도를 개발 하 고 aqp0a/b 이중 돌연변이는 핵 불투명도1을 개발 합니다. AQP0는 물 수송2, 접착 력3,4, 세포 골격 고정5 및 굴절률 구배6의 생성에서 역할을 하는 것으로 알려져 있으 나 이러한 연구는 크게 시험관. 제 브라 피쉬는 살아있는 렌즈의 형태와 기능에 영향을 미치는 기능 상실 또는 Aqp0a 또는 Aqp0b의 교란 기능에 대해 연구할 수 있는 독특한 기회를 제공 합니다. 개발 중에 렌즈 셀 형태학 및 조직 무결성을 평가 하기 위해, 우리는 배아 및 성인 렌즈에 사용 하기 위한 시험관 내 면역 세포 화학적 방법7 을 수정 하 고, 생체 내에서이 과정을 모니터링 하기 위해 트랜스 젠 시를 생성 .

면역 조직 화학적 분석은 혈장 막의 구조 및 수 중 무결성을 전체 고정 배아 및 성인 렌즈에서 수행 하였다. 제 브라 피시 렌즈는 매우 작은 (렌즈 직경은 태아에서 ~ 100 µm 및 성인에서 1 mm까지) 그들의 포유류 대조 군과 비교 하 여 점 봉합 사 (8)가 자주 저온 단면에서 포착 됩니다. 따라서 전체 렌즈는 조직 무결성을 분석 하는 데 필수적입니다. 전방 봉합 사 형성 및 정밀한 렌즈 셀 구조의 이미징에 대 한 생체 내 분석을 위해, 우리는 특히 렌즈 멤브레인을 라벨링 mapple을 표현 transgenics를 생성 했습니다.

렌즈 멤브레인 트랜스 젠 시의 라이브 이미징의 장점: 1) 고정 아티팩트를 피하고, 2) 타임 랩 스 영화의 동적 형태학 적 변화를 연구 하 고, 3) 이전 이벤트를 나중에 상호 연관 시킬 수 있는 종단 연구 활성화 고기. 홍 채의 색소 침착은 일반적으로 렌즈 주변부의 선명한 이미징을 방지 합니다. 1-페 닐 2 티 오 요소 (PTU)의 첨가 전에 프리모 르 디 아-5(프림) 단계9 는 멜 라 닌 생성 및 눈 색소 침착을 약 4 일 후에 (dpf)까지 방지 한다. 그러나 4 dpf 이후, 렌즈 주변부는 생체 내, 특히 구형 단계에서 가려집니다. 또한 렌즈 자체의 밀도는 후방 극의 이미징을 모호 하 게 합니다. 따라서 렌즈 주변부의 형태학을 연구 하거나 후부 봉합을 하 여 4 dpf 후에 렌즈를 절제 하 고 고정 시켜야 합니다.

제 브라이 선 형질 전환 체는 생체 내10 배아 렌즈 막 구조를 분석 하는데 사용 되어 왔다. 상기 Q01 형질 전환 체는 렌즈 섬유 세포 (11)에서 DF4 pax6 증강 요소 ubiquitously의 EF1α 프로모터 및 hexamer에 의해 구동 되는 , Gap43의 멤브레인 표적화 서 열에 융합 된 시안 형광 단백질을 표현 한다. Q01 에는 망막의 무 축 삭 세포를 포함 한 추가적인 렌즈 표현이 있어 주요 관심사 인 경우 배경 신호를 추가 합니다. 우리는 여분의 렌즈 모양 신호를 피하는 것을 목표로 하 여 렌즈에 특별히 멤브레인 테더를 표현 하는 새로운 트랜스 제 닉 라인을 개발 했습니다.

렌즈 핵 현지화

우리는 렌즈 핵이 애벌레 zebrafish의 초기 전방 위치에서 성인 렌즈의 전방 후부 축의 중앙 위치로 이동 한다는 것을 발견 했습니다. 이러한 고 굴절 렌즈 핵의 위치 변화는 제 브라 피시 렌즈 광학1의 정상적인 발달에 요구 되는 것으로 생각 된다. 우리의 방법은 렌즈 반경과 관련 하 여 렌즈 핵 중앙 집중화를 정량화 할 수 있습니다. 이 방법을 사용 하 여, 우리는 Aqp0a가 렌즈 핵 중앙 집중화1에 필요 하다는 것을 보여 주었고,이 간단한 방법은 제 브라 피쉬 모델에서의 렌즈 및이의 광학 특성의 발달 및 생리학에 대 한 다른 연구에도 적용 될 수 있다.

Protocol

이 연구에서 사용 되는 동물 프로토콜은 안과 및 비전 연구에서 동물의 사용에 대 한 ARVO 문을 준수 하 고 기관 동물 관리 및 사용 위원회 (IACUC)에 의해 승인 된 캘리포니아 대학의 어바인. 1. 제 브라 생선 축산 및 안락사 표준 실험실 조건에서 제 브라 피시 (AB 스트레인)를 올리고 유지 합니다12. 배아 배지 (EM)12에서 배아를 올립…

Representative Results

성인 제 브라 피쉬 아이 해부학은 포유류와 밀접 하 게 유사 합니다 (그림 1a). 제 브라 피쉬와 포유동물 눈의 차이에도 불구 하 고, 모양 체 체 (17) 대신에 모양 체 지 대를 갖는 것은 광학적 성질 (18)의 차이, 배아 발달 동안 형태 형성에 있어서의 차이 (19), 제 브라 피시 아이는 눈 발달 및 이해 안?…

Discussion

제 브라 피시 렌즈 형태학의 분석은 돌연변이 체의 표현 형을 이해 하는 초기 단계, 또는 안구 렌즈의 생물학을 연구 하기 위한 약리학 적 개입의 효과입니다. 렌즈 봉합, 대뇌 피 질 섬유 세포 형태학 및 렌즈 핵의 측면을 분석 하는 방법을 설명 합니다. 이러한 접근법은 시험관 내 및 생체 내에서의 조합 ( 1과 비교 하 여) 이다. 시험관 내 방법은 외부 피 질 세포…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

우리는 우리의 자금 출처를 인정 하 고 싶습니다: NIH R01 EY05661에 게 J. H, 네 스 Gehring aqp0a/b 이중 돌연변이와 zebrafish를 생성 하는 것을 돕기 위한, 박사 다니엘 Dranow transgenics의 세대에 이르는 논의를 위해, 브루스 박사 블 룸 베르크와 박사는 하 부 현미경 사용을 위한 연구소와 미 건 스미스 박사는 통계 분석에 도움을 주었습니다.

Materials

1-phenyl-2-thiourea (PTU) Sigma P7629 CAUTION – very toxic
4% Paraformaldehyde aqueous solution Electron Microscopy Sciences RT 157-4 CAUTION – health hazard, combustible
Confocal microscope Nikon Eclipse Ti-E
Cryostat Leica CM3050S Objective and chamber temperature set to -21˚C
DAPI Invitrogen D1306 CAUTION – irritating to eyes and skin
Dimethyl Sulfoxide (DMSO) Fisher Scientific D128 CAUTION – combustible, penetrates skin 
Disposable base mold VWR Scientific 15154-631
Disposable Pasteur glass pipets Fisherbrand 13-678-20A
Dumont # 5 forceps Dumont & Fils Keep forceps sharpened
Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate salt (Tricaine) Sigma-Aldrich A5040 CAUTION – toxic
Glass bottom microwell dish (35mm petri dish, 14mm microwell, #1.5 coverglass) MatTek Corporation P35G-1.5-14-C
Glycerol Sigma G2025
huβB1cry:mAppleCAAX DNA construct Addgene ID:122451
ImageJ Wayne Rasband, NIH v1.51n
Low Melt Agarose (LMA) Apex 902-36-6
NIS-Elements Nikon V 4.5
NIS-Elements AR software Nikon
Olympus  with a model 2.1.1.183 controller Olympus Corp DP70
Olympus microscope  Olympus Corp SZX12
Phalloidin-Alexa Flour 546 Thermo Fisher A22283
Phenol Red indicator (1% w/v) Ricca Chemical Company 5725-16
Phosphate buffered saline (PBS) Fisher Scientific BP399
Photoshop Adobe CS5 v12.0
Photoshop software Adobe CS5 v12.0
Plan Apo 60x/1.2 WD objective Nikon
Power source Wild Heerbrugg MTr 22 Or equivalent power source 
Slide warmer model No. 26020FS Fisher Scientific 12-594
Sodium Hydroxide beads Fisher Scientific S612-3 CAUTION – corrosive/irritating to eyes and skin, target organ – respiratory system, corrosive to metals
Superfrost/Plus microscope slide Fisher Scientific 12-550-15
Sylgard 184 silicone Dow Corning World Prevision Instruments SYLG184
Tissue-Tek O.C.T. Compound Sakura Finetek 4583
Triton X-100 BioXtra Sigma T9284 CAUTION – Toxic, hazardous to aquatic environment, corrosive
Vannas micro-dissection scissors Ted Pella Inc 1346 Sharp/sharp straight tips
Vectashield antifade mouting medium Vector laboratories H-1000
Wheat Germ Agglutinin (WGA)-Alexa Flour-594 Life Technologies W11262

References

  1. Vorontsova, I., Gehring, I., Hall, J. E., Schilling, T. F. Aqp0a Regulates Suture Stability in the Zebrafish Lens. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 59 (7), 2869-2879 (2018).
  2. Hall, J. E., Mathias, R. T. The Aquaporin Zero Puzzle. Biophysical Journal. 107 (1), 10-15 (2014).
  3. Nakazawa, Y., Oka, M., Funakoshi-Tago, M., Tamura, H., Takehana, M. The Extracellular C-loop Domain Plays an Important Role in the Cell Adhesion Function of Aquaporin 0. Current Eye Research. 42 (4), 617-624 (2017).
  4. Kumari, S. S., Varadaraj, K. Intact AQP0 performs cell-to-cell adhesion. Biochemical and Biophysical Research Communications. 390 (3), 1034-1039 (2009).
  5. Lindsey Rose, K. M., et al. The C Terminus of Lens Aquaporin 0 Interacts with the Cytoskeletal Proteins Filensin and CP49. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 47 (4), 1562-1570 (2006).
  6. Kumari, S. S., Varadaraj, K. Aquaporin 0 plays a pivotal role in refractive index gradient development in mammalian eye lens to prevent spherical aberration. Biochemical and Biophysical Research Communications. 452 (4), 986-991 (2014).
  7. Uribe, R. A., Gross, J. M. Immunohistochemistry on Cryosections from Embryonic and Adult Zebrafish Eyes. Cold Spring Harbor Protocols. 2007 (7), (2007).
  8. Dahm, R., Schonthaler, H. B., Soehn, A. S., van Marle, J., Vrensen, G. F. J. M. Development and adult morphology of the eye lens in the zebrafish. Experimental Eye Research. 85 (1), 74-89 (2007).
  9. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Developmental Dynamics. 203 (3), 253-310 (1995).
  10. Greiling, T. M. S., Clark, J. I. Early lens development in the zebrafish: A three-dimensional time-lapse analysis. Developmental Dynamics. 238 (9), 2254-2265 (2009).
  11. Godinho, L., et al. Targeting of amacrine cell neurites to appropriate synaptic laminae in the developing zebrafish retina. Development. 132 (22), 5069-5079 (2005).
  12. Westerfield, M. . The Zebrafish Book: A Guide for the Laboratory Use of Zebrafish (Danio rerio). , (2002).
  13. Schilling, T. F., Nusslein-Volhard, C., Dahm, R. . Zebrafish. 261, 59-94 (2002).
  14. Brady, J. A simple technique for making very fine, durable dissecting needles by sharpening tungsten wire electrolytically. Bulletin of the World Health Organization. 32 (1), 143-144 (1965).
  15. Kwan, K. M., et al. The Tol2kit: A multisite gateway-based construction kit for Tol2 transposon transgenesis constructs. Developmental Dynamics. 236 (11), 3088-3099 (2007).
  16. Hou, H. H., Kuo, M. Y. P., Luo, Y. W., Chang, B. E. Recapitulation of human βB1-crystallin promoter activity in transgenic zebrafish. Developmental Dynamics. 235 (2), 435-443 (2006).
  17. Soules, K., Link, B. Morphogenesis of the anterior segment in the zebrafish eye. BMC Developmental Biology. 5 (1), 12 (2005).
  18. Greiling, T. M. S., Clark, J. I. The transparent lens and cornea in the mouse and zebra fish eye. Seminars in Cell & Developmental Biology. 19 (2), 94-99 (2008).
  19. Greiling, T. M. S., Aose, M., Clark, J. I. Cell Fate and Differentiation of the Developing Ocular Lens. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 51 (3), 1540-1546 (2010).
  20. Richardson, R., Tracey-White, D., Webster, A., Moosajee, M. The zebrafish eye-a paradigm for investigating human ocular genetics. Eye. 31, 68 (2016).
  21. Gestri, G., Link, B. A., Neuhauss, S. C. F. The Visual System of Zebrafish and its Use to Model Human Ocular Diseases. Developmental Neurobiology. 72 (3), 302-327 (2012).
  22. Chhetri, J., Jacobson, G., Gueven, N. Zebrafish on the move towards ophthalmological research. Eye. 28 (4), 367-380 (2014).
  23. Lim, J. C., Walker, K. L., Sherwin, T., Schey, K. L., Donaldson, P. J. Confocal Microscopy Reveals Zones of Membrane Remodeling in the Outer Cortex of the Human Lens. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 50 (9), 4304-4310 (2009).
  24. Lim, J. C., Vaghefi, E., Li, B., Nye-Wood, M. G., Donaldson, P. J. Characterization of the Effects of Hyperbaric Oxygen on the Biochemical and Optical Properties of the Bovine LensEffects of HBO on the Bovine Lens. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 57 (4), 1961-1973 (2016).
  25. Gold, M. G., et al. AKAP2 anchors PKA with aquaporin-0 to support ocular lens transparency. EMBO Molecular Medicine. 4 (1), 15-26 (2012).
  26. Petrova, R. S., Schey, K. L., Donaldson, P. J., Grey, A. C. Spatial distributions of AQP5 and AQP0 in embryonic and postnatal mouse lens development. Experimental Eye Research. 132, 124-135 (2015).
  27. Chee, K. N., Vorontsova, I., Lim, J. C., Kistler, J., Donaldson, P. J. Expression of the sodium potassium chloride cotransporter (NKCC1) and sodium chloride cotransporter (NCC) and their effects on rat lens transparency. Molecular Vision. 16, 800-812 (2010).
  28. Hayes, J. M., et al. Integrin α5/fibronectin1 and focal adhesion kinase are required for lens fiber morphogenesis in zebrafish. Molecular Biology of the Cell. 23 (24), 4725-4738 (2012).
  29. Imai, F., Yoshizawa, A., Fujimori-Tonou, N., Kawakami, K., Masai, I. The ubiquitin proteasome system is required for cell proliferation of the lens epithelium and for differentiation of lens fiber cells in zebrafish. Development. 137 (19), 3257-3268 (2010).
  30. Biswas, S. K., Lee, J. E., Brako, L., Jiang, J. X., Lo, W. K. Gap junctions are selectively associated with interlocking ball-and-sockets but not protrusions in the lens. Molecular Vision. 16, 2328-2341 (2010).

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Cite This Article
Vorontsova, I., Hall, J. E., Schilling, T. F. Assessment of Zebrafish Lens Nucleus Localization and Sutural Integrity. J. Vis. Exp. (147), e59528, doi:10.3791/59528 (2019).

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