Vi beskriver en metod för att generera mättande transposon mutanta bibliotek i Gram-negativa bakterier och efterföljande beredning av DNA-amplikon bibliotek för hög genomströmning sekvensering. Som ett exempel fokuserar vi på ESKAPE-patogenen, Acinetobacter baumannii, men detta protokoll är mottagligt för ett brett spektrum av gramnegativa organismer.
Transposonsekvensering (Tn-seq) är en kraftfull metod som kombinerar transposon mutagenesis och massiv parallell sekvensering för att identifiera gener och vägar som bidrar till bakteriell kondition under en lång rad miljöförhållanden. Tn-seq-tillämpningar är omfattande och har inte bara möjliggjort undersökning av genotyp-fenotypssamband på organismnivå utan även på populations-, samhälls- och systemnivå. Gramnegativa bakterier är starkt förknippade med antimikrobiell resistens fenotyper, som har ökat incidenter av antibiotikabehandling misslyckande. Antimikrobiell resistens definieras som bakterietillväxt i närvaro av annars dödliga antibiotika. Den “sista linjen” antimikrobiella colistin används för att behandla Gramnegativa bakterieinfektioner. Flera gramnegativa patogener, inklusive Acinetobacter baumannii kan dock utveckla colistin resistens genom en rad molekylära mekanismer, av vilka några kännetecknades med hjälp av Tn-seq. Dessutom, signaltransduktion vägar som reglerar colistin resistens varierar inom Gram-negativa bakterier. Här föreslår vi en effektiv metod för transposon mutagenesis i A. baumannii som effektiviserar generering av en mättande transposon infogning bibliotek och amplikon bibliotek konstruktion genom att eliminera behovet av restriktionsenzymer, adapter ligering, och gel rening. De metoder som beskrivs häri kommer att möjliggöra djupgående analys av molekylära determinanter som bidrar till A. baumannii fitness när utmanas med colistin. Protokollet är också tillämpligt på andra gramnegativa ESKAPE-patogener, som i första hand är förknippade med läkemedelsresistenta sjukhusförvärvade infektioner.
Upptäckten av antibiotika är utan tvekan en av de mest effektfullath hälsorelaterade händelserna under 1900-talet. Inte bara antibiotika snabbt lösa allvarliga bakteriella infektioner, de spelar också en central roll i modern medicin. Större operationer, transplantationer och framsteg inom neonatal medicin och kemoterapi lämna patienter mottagliga för livshotande infektioner och dessa behandlingar skulle inte vara möjligt utan antibiotika1,2. Snabb utveckling och spridning av antibiotikaresistens bland humana patogener har dock minskat effekten betydligt av alla kliniskt viktiga klasser av antibiotika3. Många bakteriella infektioner som en gång lätt rensas med antibiotika behandling, inte längre svara på klassisk behandling protokoll, orsakar ett allvarligt hot mot den globala folkhälsan1. Antimikrobiell resistens (ANTIMIKR) är där bakterieceller växer i övrigt dödliga koncentrationer av antibiotika, oavsett behandlingstid4,5. Det finns ett akut behov av att förstå molekylära och biokemiska faktorer som reglerar antis, vilket kommer att hjälpa till att styra alternativ antimikrobiell utveckling. Specifikt är ESKAPE patogener problematiska i kliniska miljöer och i samband med omfattande AMR. Dessa inkluderar Enterococcus faecium, Staphylococcus aureus, Klebsiella pneumoniae, Acinetobacter baumannii, Pseudomonas aeruginosa och Enterobacter spp. Medan flera mekanismer bidrar till AMR i ESKAPE patogener, de fyra sistnämnda organismerna är Gram-negativa.
Gramnegativa bakterier monterar ett definierande yttre membran som skyddar dem från ogynnsamma miljöförhållanden. Det yttre membranet fungerar som en permeabilitet barriär för att begränsa inträde av giftiga molekyler, såsom antibiotika, i cellen. Till skillnad från andra biologiska membran är det yttre membranet asymmetriskt. Den yttre bipacksedeln är berikad med ytexponerad lipopolysackarid, medan den inre bipacksedeln är en blandning av fosfolipider6. Lipopolysackaridmolekyler förankras i det yttre membranet av en bevarad lipid A moiety inbäddad i lipid bilayer7. Den kanoniska lipid En domän av Escherichia coli lipopolysackarid krävs för tillväxten av de flesta Gram-negativa bakterier och syntetiseras av en nio-stegs enzymatisk väg som är en av de mest grundläggande och bevarade vägar i Gram-negativa organismer6,7,8.
Polymyxiner är katjoniska antimikrobiella peptider som riktar sig mot lipopolysackaridens lipopolysackarids domän för att perturb det yttre membranet och lysa cellen. Den elektrostatiska interaktionen mellan positivt laddade rester av polymyxiner och de negativt laddade lipiden A fosfatgrupper stör bakteriecellmembranet vilket i slutändan leder till celldöd9,10,11,12,13. Colistin (polymyxin E) är en sista utväg antimikrobiell används för att behandla infektioner orsakade av multiresistenta Gram-negativa nosokomiala patogener, såsom Acinetobacter baumannii14,15,16. Först upptäcktes i 1947, polymyxiner produceras av jorden bakterier, Paenibacillus polymyxa17,18,19. Polymyxiner ordinerades för att behandla Gramnegativa infektioner i flera år innan deras kliniska användning var begränsad på grund av rapporter om betydande nefro- och neurotoxicitet20,21.
A. baumannii är en nosokomna Gramnegativ patogen som dramatiskt har ökat sjuklighet och dödlighet av patientens resultat under de senaste decennierna22. Vad som en gång betraktades som en låg hot-patogen, utgör nu en betydande risk för sjukhus-förvärvade infektion i hela världen på grund av dess otroliga förmåga att förvärva AMR och hög risk förepidemiska 23,24. A. baumannii står för mer än 10% av nosokomna infektioner i USA. Sjukdom yttrar sig som lunginflammation, bakteremi, urinvägsinfektioner, hud och mjukdelar infektioner, hjärnhinneinflammation, och endokardit25. Behandlingsalternativ för A. baumannii infektioner har krympt på grund av resistens mot nästan alla antibiotiska klasser, inklusive β-laktamer, fluorokinoloner, tetracyklin, och aminoglykosiderna23,24. Prevalensen av multiresistenta, i stor utsträckning läkemedelsresistenta och pan-resistentA A. baumannii isolat har lett till ett uppsving i colistin behandling, som ansågs vara en av de få återstående terapeutiska alternativ fortfarande effektiv mot multidrug resistenta A. baumannii. Ökat colistinmotstånd bland A. baumannii-isolat har dock ytterligare förstärkt sitt hot mot den globala folkhälsan10,11,12,13,27,30,31.
Den senaste tidens framsteg inom sekvenseringsteknik med hög genomströmning, såsom transponeringssekvensering (Tn-seq), har tillhandahållit viktiga verktyg för att främja vår förståelse av bakteriell kondition in vitro och in vivo. Tn-seq är ett kraftfullt verktyg som kan utnyttjas för att studera genotyp-fenotyp interaktioner i bakterier. Tn-seq är i stort sett tillämpligt över bakteriella patogener, där den kombinerar traditionell transposon mutagenesis med massiv parallell sekvensering för att snabbt kartlägga insättningsplatser, som kan användas för att länka DNA-mutationer till fenotypiska varianter på en genom-bred skala32,33,34,35. Medan transposon mutagenesis metoder har tidigare beskrivits, de allmänna stegen är liknande33. Först genereras ett infogningsbibliotek med hjälp av transposon mutagenes, där varje bakteriecell inom en population begränsas till en enda transposoninfogning inom det genomiska DNA (gDNA). Efter mutagenesis, enskilda mutanter är poolade. gDNA extraheras från infogningsmutsadpoolen och transponeringspunkterna förstärks och utsätts för sekvensering med hög genomströmning. Läsningen representerar infogningsplatser, som kan mappas till genomet. Transposoninfogningar som minskar konditionen faller snabbt ut ur populationen, medan välgörande infogningar berikas. Tn-seq har varit avgörande för att främja vår förståelse av hur gener påverkar bakteriell kondition i stress33.
Den Himar1 mariner transposon systemet kodade i pJNW684 var särskilt konstruerade och optimerade för syftet med transposon mutagenesis. Det inkluderar en mariner-familj transposon flankerande kanamycin resistens genen, som används för val av transposon insättningsmutanter i A. baumannii. Det kodar också en A. baumannii specifik promotor som driver uttryck för transposas kodning genen36. Den mariner-baserade transposon innehåller också två translationella terminators nedströms kanamycin resistens genen, vilket förhindrar genomläsning nedströms införandet37. pJNW684 bär också en RP4/oriT/oriR6K-villkorligt ursprung replikation som kräver λpir genen bidragit med givaren stam att replikera38. I avsaknad av λpir-genen kommer den pJNW684-vektor som bär på införlivandemaskineriet inte att kunna replikera i A. baumannii-mottagarens stam 10,36,38. Vid bakteriekonjugation förs därför endast transposon in i mottagargenomet utan bakgrundsinsättning av plasmiden, som bär transposasgenen. Detta är signifikant eftersom förlusten av transposasaktivitet tillsammans med plasmiden resulterar i enstaka, stabil införlivande händelse som hindrar transposon från att flytta till olika platser när den sätter in i mottagarens genom.
pJNW648 har också testats för aktivitet i en annan Gramnegativ organism, E. coli. Framgångsrik montering av en mättande Tn-seq bibliotek i E. coli stam W3110 anges systemet är mottagliga för att utföra mutagenesis i ett brett spektrum av patogener, inklusive Enterobacteriaceae. Vidare kan den särskilda promotorn A. baumannii som driver transposasuttryck snabbt utbytas med en artspecifik promotor. Slutligen kan kanamycin resistens genen bytas ut mot andra motstånd kassetter, beroende på AMR fenotyp av organismen studeras.
En faktor som bidrar till kolistinsistens i A. baumannii är administrering av otillräckliga doser, där bakterier utsätts för selektivt tryck vid icke-dödliga nivåer39. Flera rapporter visade att subinhibitory antimikrobiella koncentrationer kan inducera reglerade svar som förändrar cellfysiologi för att minska mottagligheten för helabakteriepopulationen 11,12,30,31. Använda Tn-seq upptäckte vi faktorer som reglerar colistin resistens i A. baumannii stam ATCC 17978 efter exponering förhämmande 10 och subinhibitory koncentrationer av colistin. Det här exemplet beskriver en Tn-seq-metod som effektiviserar konstruktion och berikning av ett mättat transposon mutantbibliotek med hjälp av den mariner-baserade familjen av transposoner40,41. Medan flera Tn-seq protokoll generera 20.000 – 100.000 mutanter35,42,43,44,45,46, protokollet som beskrivs häri kan snabbt generera en transposon bibliotek av 400.000 + mutanter, vilket ungefär motsvarar en transposoninsättning varje 10-baspar i A. baumannii10. Vidare kan bibliotekets storlek skalas upp utan betydande ytterligare ansträngning. Denna metod eliminerar också kravet på begränsning endonucéer, adapter ligering och gel rening, vilket kan minska slutliga biblioteket mångfald.
A. baumannii är ett framväxande hot mot den globala folkhälsan på grund av det snabba förvärvet av ANTIR mot “sista linjen” therapeutics, såsom colistin10,11,12,23,24,30,31. Under de senaste decennierna, Tn-seq har spelat en avgörande roll i att belysa genotyp-fenotyp intera…
The authors have nothing to disclose.
Detta arbete stöddes av finansiering från National Institute of Health (Grant AI146829 till J.M.B.) och är tacksamt erkänt.
10 mM ddCTP, 2’,3’-Dideoxycytidine-5’-Triphosphate | Affymetrix | 77112 | |
100 mM dCTP 2’-Deoxycytidine-5’-Triphosphate | Invitrogen | 10217-016 | |
100bp DNA Ladder Molecular Weight Marker | Promega | PR-G2101 | |
100mm x 15mm Petri Dishes | Corning | 351029 | |
150mm x 15mm Petri Dishes | Corning | 351058 | |
1X B&W | N/A | N/A | Dilute 2X B&W by half to get 1X B&W. |
2,6-Diaminopimelic acid | Alfa Aesar | B2239103 | used at 600 µM |
2X B&W | N/A | N/A | Add 2 M NaCl, 10 mM Tris-HCl, 1 mM EDTA (pH 7.5) in water. Used with Streptavidin beads. Solutions keep at room temperature. |
50mL Conical Sterile Polypropylene Centrifuge Tubes | Fisher Scientific | 12-565-271 | |
9.5 mM dCTP/0.5 mM ddCTP | N/A | N/A | 9.5 ml 100 mM dCTP; 5 ml 10 mM ddCTP; 85.5 ml water. Store at -20°C. |
AccuPrimeTM Pfx DNA Polymerase | Invitrogen | 12344 | |
Acinetobacter baumannii ATCC 17978 | ATCC | N/A | AmpS, KanS |
Ampicillin (100 mg/L) | Fisher Scientific | BP1760 | used at 100 mg/L |
AMPure XP PCR purification system | BECKMAN COULTER | A63881 | |
BioAnalyzer | Agilent | G2939B | |
Bioanalyzer High Sensitivity DNA Analysis | Agilent | 5067-4626 | |
Deoxynucleotide Solution Mix (dNTP) | New England Biolabs (NEB) | N0447L | |
DynaMag-2 Magnetic rack | Invitrogen | 12321D | |
E.coli MFD Dap- | N/A | N/A | DAP Auxotroph, requires 600 mM exogenously added DAP to grow. Contains RP4 machinery for plasmid transfer. Carrier for JNW68 (36). |
Ethanol | Fisher Scientific | A4094 | |
Externally Threaded Cryogenic Vials | Corning | 09-761-71 | |
Glass beads | Corning | 72684 | |
Glycerol | Fisher Scientific | G33 | |
Inoculating loops | Fisher Scientific | 22-363-602 | Scraping tool |
Kanamycin | Fisher Scientific | BP906 | used at 25 mg/L |
LB agar, Miller | Fisher Scientific | BP1425 | |
LB broth, Miller | Fisher Scientific | BP1426 | |
LoTE | N/A | N/A | Add 3 mM Tris-HCl, 0.2 mM EDTA (pH 7.5) in water. Used with Streptavidin beads. Solutions keep at room temperature. |
Lysis buffer | N/A | N/A | 9.34 mL TE buffer; 600 ml of 10% SDS; 60 ml of proteinase K (20 mg/mL) |
Phenol/Chloroform/Isoamyl Alcohol (25:24:1 Mixture, pH 6.7/8.0, Liq.) | Fisher Scientific | BP1752I | |
Phosphate Buffered Saline, 10X Solution | Fisher Scientific | BP39920 | Diluted to 1X |
Qubit 4 Fluorometer | Thermo Fisher | Q33238 | |
Qubit Assay Tubes | Thermo Fisher | Q32856 | |
Qubit dsDNA HS Assay Kit | Thermo Fisher | Q32851 | |
Sonicator with refridgerated waterbath | Qsonica Sonicators | Q2000FCE | |
Streptavidin Magnetic Beads | New England Biolabs (NEB) | S1420S | |
TE buffer | N/A | N/A | 10 mM Tris-HCl (pH 8.0); 1 mM EDTA (pH 8.0) |
Terminal Deoxynucleotidyl Transferase (rTdt) | Promega | PR-M1875 |