Summary

Profilierung der H3K4me3-Modifikation in Pflanzen mittels Spaltung unter Targets und Tagmentation

Published: April 22, 2022
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Summary

Cleavage under targets and tagmentation (CUT&Tag) ist eine effiziente Chromatin-Epigenom-Profiling-Strategie. Dieses Protokoll stellt eine verfeinerte CUT&Tag-Strategie für die Profilierung von Histonmodifikationen in Pflanzen dar.

Abstract

Epigenomische Regulation auf chromatischer Ebene, einschließlich DNA- und Histonmodifikationen, Verhalten von Transkriptionsfaktoren und nicht-kodierende RNAs mit ihren rekrutierten Proteinen, führen zu einer zeitlichen und räumlichen Kontrolle der Genexpression. Spaltung unter Targets und Tagmentation (CUT & Tag) ist eine Enzym-Tethering-Methode, bei der das spezifische Chromatinprotein zuerst durch seinen spezifischen Antikörper erkannt wird und dann der Antikörper ein Protein-A-Transposase-Fusionsprotein (pA-Tn5) anbindet, das das gezielte Chromatin in situ durch die Aktivierung von Magnesiumionen spaltet. Hier stellen wir unser zuvor veröffentlichtes CUT&Tag-Protokoll zur Verfügung, das intakte Kerne verwendet, die aus allortetraploiden Baumwollblättern mit Modifikation isoliert wurden. Dieses Schritt-für-Schritt-Protokoll kann für die epigenomische Forschung an Pflanzen verwendet werden. Darüber hinaus werden wesentliche Modifikationen zur Isolierung von Pflanzenkernen mit kritischen Anmerkungen versehen.

Introduction

Transkriptionsfaktor-bindende DNA-Stellen und offenes Chromatin, das mit Histon-Modifikationsmarkierungen assoziiert ist, spielen eine entscheidende funktionelle Rolle bei der Regulierung der Genexpression und sind die Hauptschwerpunkte der epigenetischen Forschung1. Herkömmlicherweise wurde der Chromatin-Immunpräzipitationsassay (ChIP) in Verbindung mit der Tiefensequenzierung (ChIP-seq) für die genomweite Identifizierung spezifischer Chromatin-Histon-Modifikation oder DNA-Ziele mit spezifischen Proteinen verwendet und ist im Bereich der Epigenetik weit verbreitet2. Die CUT&Tag-Technologie (Cleavage under targets and tagmentation) wurde ursprünglich vom Henikoff Lab entwickelt, um die proteinassoziierten DNA-Fragmente im gesamten Genom zu erfassen5. Im Vergleich zu ChIP kann CUT&Tag DNA-Bibliotheken mit hoher Auflösung und außergewöhnlich niedrigem Hintergrund mit einer kleinen Anzahl von Zellen mit einem vereinfachten Verfahren generieren3. Bisher wurden Methoden zur Analyse von Chromatinregionen mit spezifischen Histonmodifikationen mittels CUT&Tag in tierischen Zellen etabliert4,5. Konkret wurde Single-Cell CUT&Tag (scCUT&Tag) auch erfolgreich für menschliche Gewebe und Zellen entwickelt6. Aufgrund der Komplexität der Zellwand und der Sekundärmetaboliten ist CUT&Tag für Pflanzengewebe jedoch immer noch eine technische Herausforderung.

Zuvor berichteten wir über ein CUT&Tag-Protokoll mit intakten Kernen, die aus allotetraploiden Baumwollblättern isoliert wurden4. Um die Effizienz der Nukleisolierung und DNA-Erfassung unter Verwendung von Pflanzengewebe zu demonstrieren, wird hier das Profiling-Verfahren vorgestellt. Zu den wichtigsten Schritten gehören die Isolierung intakter Kerne, die In-situ-Inkubation mit dem Antikörper zur Chromatinmodifikation, die Transposase-Inkubation , die Adapterintegration und die DNA-Bibliotheksvorbereitung . Die Fehlersuche konzentriert sich auf die Vorbereitung der CUT&Tag-Bibliothek für die Isolierung und Qualitätskontrolle der Pflanzenkerne.

In dieser Studie stellen wir eine verfeinerte CUT&Tag-Strategie für Pflanzen vor. Wir bieten nicht nur ein Schritt-für-Schritt-Protokoll für die H3K4me3-Profilierung in Baumwollblättern, sondern auch eine optimierte Methodik für die Isolierung von Pflanzenkernen, einschließlich der Strategie zur Auswahl der Reinigungsmittelkonzentration für die richtige Zelllyse und der Strategie zur Filterung der Kerne. Detaillierte Schritte mit kritischen Kommentaren sind ebenfalls in diesem aktualisierten Protokoll enthalten.

Protocol

1. Transposase- und Lagerlösungen vorbereiten (Tag 1) HINWEIS: In diesem Teil werden die Oligonukleotidadapter mit Tn5-Transposase komplexiert, um eine aktive Transposase zu erzeugen. Verdünnen Sie Primer (Primer A, Primer B und Primer C) auf 100 μM-Konzentration mit dem Glühpuffer (10 mM Tris pH 8,0, 50 mM NaCl, 1 mM EDTA) (siehe Tabelle 1 für Sequenzinformationen von Primern und Tabelle 2 für die Rezepte für Arbeitslösungen…

Representative Results

Abbildung 1 zeigt den CUT&Tag-Workflow. Abbildung 2 zeigt die DAPI-Färbung der intakten Kerne. Ziel des Schrittes “Nuklei-Isolierung” war es, die intakten Kerne in ausreichender Menge für die anschließende CUT&Tag-Reaktion zu erhalten. Abbildung 3 zeigt die Agarosegelelektrophorese von PCR-Produkten. Die IgG-Negativkontrolle wird parallel zum Aufbau des Experiments benötigt. Im Vergleich zur IgG-Kontrollgruppe reichte der Großt…

Discussion

Hier haben wir CUT & Tag beschrieben, eine Technologie zur Generierung von DNA-Bibliotheken mit hoher Auflösung und außergewöhnlich niedrigem Hintergrund unter Verwendung einer kleinen Anzahl von Zellen mit einem vereinfachten Verfahren im Vergleich zur Chromatin-Immunpräzipitation (ChIP). Unser Erfolg mit der H3K4me3-Profilierung in Baumwollblättern legt nahe, dass CUT&Tag, das ursprünglich für tierische Zellen entwickelt wurde, auch für Pflanzenzellen verwendet werden kann. Sowohl das Tris-Puffersystem, das <su…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Diese Arbeit wurde zum Teil durch Zuschüsse der National Natural Science Foundation of China (NSFC, 31900395, 31971985, 31901430) und Fundamental Research Funds für die Central Universities, das Hainan Yazhou Bay Seed Lab (JBGS, B21HJ0403), die Hainan Provincial Natural Science Foundation of China (320LH002) und das JCIC-MCP-Projekt finanziell unterstützt.

Materials

Antibody
Anti-H3K4me3 Millipore 07-473
Normal rabbit IgG Millipore 12-370
Chemicals
Bovine Serum Albumin (BSA) Make 10 mg/ml BSA stock solution. Store at -20°C
digitonin (~50% (TLC) Sigma-Aldrich D141 Make 5% digitonin stock solution (200 mg digitonin [~50% purity] to 2 mL DMSO). Note: Sterilize using a 0.22- micron filter. Store at -20°C
dimethyl sulfoxide (DMSO)
chloroform
ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Make 0.5 M EDTA (pH = 8.5) stock solution. Note: Making 100 mL of 0.5-M EDTA (pH = 8.5) requires approximately 2 g of sodium hydroxide (NaOH) pellets to adjust the pH
ethanol
GlycoBlue Coprecipitant (15 mg/mL) Invitrogen AM9516
magnesium chloride (MgCl2) Make 1 M MgCl2 stock solution
protease inhibitor cocktail Calbiochem 539133-1SET
potassium chloride (KCl) Make 1 M KCl stock solution
phenol:chloroform:isoamyl alcohol (25:24:1,v:v:v)
sodium chloride (NaCl) Make 5 M NaCl stock solution
spermidine Make 2 M spermidine stock solution, store at -20°C.
sodium dodecyl sulfate (SDS) Make 10% SDS stock solution. Note: Do not autoclave; sterilize using a 0.22-micron filter
Tris base Make 1 M Tris (pH = 8.0) stock solution
Triton X-100 Make 20% Triton X-100 stock solution
Enzyme
Hyperactive pG-Tn5/pA-Tn5 transposase for CUT&Tag Vazyme S602/S603 Check the antibody affinity of the protein A or protein G that is fused with the Tn5. Generally speaking, proteins A and G have broad antibody affinity. However, protein A has a relatively higher affinity to rabbit antibodies and protein G has a relatively higher affinity to mouse antibodies. Select the appropriate transposase products that match your antibody.
TruePrep Amplify Enzyme Vazyme TD601
Equipment
Centrifuge Eppendorf 5424R
PCR machine Applied Biosystems ABI9700
Orbital shaker MIULAB HS-25
NanoDrop One  spectrophotometer Thermo Scientific ND-ONE-W

References

  1. Abascal, F., et al. Perspectives on ENCODE. Nature. 583 (7818), 693-698 (2020).
  2. Park, P. J. ChIP-seq: advantages and challenges of a maturing technology. Nature Reviews Genetics. 10 (10), 669-680 (2009).
  3. Kaya-Okur, H. S., et al. CUT&Tag for efficient epigenomic profiling of small samples and single cells. Nature Communications. 10 (1), 1930 (2019).
  4. Tao, X., Feng, S., Zhao, T., Guan, X. Efficient chromatin profiling of H3K4me3 modification in cotton using CUT&Tag. Plant Methods. 16, 120 (2020).
  5. Kaya-Okur, H. S., Janssens, D. H., Henikoff, J. G., Ahmad, K., Henikoff, S. Efficient low-cost chromatin profiling with CUT&Tag. Nature Protocols. 15 (10), 3264-3283 (2020).
  6. Bartosovic, M., Kabbe, M., Castelo-Branco, G. Single-cell CUT&Tag profiles histone modifications and transcription factors in complex tissues. Nature Biotechnology. , (2021).
  7. Paterson, A. H., Brubaker, C. L., Wendel, J. F. A rapid method for extraction of cotton (Gossypium spp.) genomic DNA suitable for RFLP or PCR analysis. Plant Molecular Biology Reporter. 11 (2), 122-127 (1993).
  8. Haring, M., et al. Chromatin immunoprecipitation: optimization, quantitative analysis and data normalization. Plant Methods. 3 (1), 11 (2007).
  9. Ouyang, W., et al. Rapid and low-input profiling of histone marks in plants using nucleus CUT&Tag. Frontiers in Plant Science. 12, 634679 (2021).
  10. Swift, J., Coruzzi, G. M. A matter of time – How transient transcription factor interactions create dynamic gene regulatory networks. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Gene Regulatory Mechanisms. 1860 (1), 75-83 (2017).
  11. Buenrostro, J. D., Wu, B., Chang, H. Y., Greenleaf, W. J. ATAC-seq: a method for assaying chromatin accessibility genome-wide. Current Protocols in Molecular Biology. 109, 21-29 (2015).
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Cite This Article
Tao, X., Gao, M., Wang, S., Guan, X. Profiling of H3K4me3 Modification in Plants using Cleavage under Targets and Tagmentation. J. Vis. Exp. (182), e62534, doi:10.3791/62534 (2022).

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