Summary

Een permanent venster voor het onderzoeken van kankermetastase naar de longen

Published: July 01, 2021
doi:

Summary

Hier presenteren we een protocol voor de chirurgische implantatie van een permanent inwonend optisch venster voor de muriene thorax, dat een hoge resolutie, intravitale beeldvorming van de long mogelijk maakt. De duurzaamheid van het venster maakt het zeer geschikt voor de studie van dynamische cellulaire processen in de longen, vooral die welke langzaam evolueren, zoals gemetastaseerde progressie van verspreide tumorcellen.

Abstract

Metastase, goed voor ~ 90% van de kankergerelateerde mortaliteit, omvat de systemische verspreiding van kankercellen van primaire tumoren naar secundaire plaatsen zoals het bot, de hersenen en de longen. Hoewel uitgebreid bestudeerd, blijven de mechanistische details van dit proces slecht begrepen. Hoewel gemeenschappelijke beeldvormingsmodaliteiten, waaronder computertomografie (CT), positronemissietomografie (PET) en magnetische resonantiebeeldvorming (MRI), verschillende gradaties van grove visualisatie bieden, mist elk de temporele en ruimtelijke resolutie die nodig is om de dynamiek van individuele tumorcellen te detecteren. Om dit aan te pakken, zijn tal van technieken beschreven voor intravitale beeldvorming van gemeenschappelijke metastatische sites. Van deze plaatsen is de long bijzonder moeilijk gebleken om toegang te krijgen voor intravitale beeldvorming vanwege de delicatesse en kritieke rol bij het in stand houden van het leven. Hoewel verschillende benaderingen eerder zijn beschreven voor eencellige intravitale beeldvorming van de intacte long, omvatten ze allemaal zeer invasieve en terminale procedures, waarbij de maximaal mogelijke beeldvormingsduur wordt beperkt tot 6-12 uur. Hier wordt een verbeterde techniek beschreven voor de permanente implantatie van een minimaal invasief thoracale optische venster voor hoge-resolutie beeldvorming van de long (WHRIL). In combinatie met een aangepaste benadering van microcartografie, vergemakkelijkt het innovatieve optische venster seriële intravitale beeldvorming van de intacte long met eencellige resolutie gedurende meerdere beeldvormingssessies en verspreid over meerdere weken. Gezien de ongekende tijdsduur waarover beeldvormingsgegevens kunnen worden verzameld, kan de WHRIL de versnelde ontdekking van de dynamische mechanismen die ten grondslag liggen aan metastatische progressie en tal van aanvullende biologische processen in de longen vergemakkelijken.

Introduction

Verantwoordelijk voor ~ 90% van de sterfgevallen, metastas is de belangrijkste oorzaak van kankergerelateerde sterfte1. Onder de belangrijkste plaatsen van klinisch waargenomen metastase (bot, lever, long, hersenen)2, is de long bijzonder uitdagend gebleken voor in vivo beeldvorming via intravitale microscopie. Dit komt omdat de long een delicaat orgaan is in perpetuum mobile. De continue beweging van de longen, verder verergerd door intrathoracale cardiale beweging, vormt een aanzienlijke barrière voor nauwkeurige beeldvorming. Daarom, vanwege de relatieve ontoegankelijkheid tot modaliteiten voor hoge resolutie intravitale optische beeldvorming, is kankergroei in de longen vaak beschouwd als een occult proces3.

In de klinische setting maken beeldvormingstechnologieën zoals computertomografie (CT), positronemissietomografie (PET) en magnetische resonantiebeeldvorming (MRI) visualisatie diep in intacte vitale organen zoals de longmogelijk 4. Hoewel deze modaliteiten zorgen voor een uitstekend beeld van het grove orgaan (vaak zelfs onthullende pathologie voorafgaand aan het begin van klinische symptomen), zijn ze van onvoldoende resolutie om individuele gedissemineerde tumorcellen te detecteren terwijl ze zich door de vroege stadia van metastase ontwikkelen. Bijgevolg, tegen de tijd dat de bovengenoemde modaliteiten enige indicatie van metastase naar de long geven, zijn gemetastaseerde foci al goed ingeburgerd en prolifererend. Aangezien de tumormicro-omgeving een cruciale rol speelt bij de progressie van kanker en metastasevorming5,6, is er grote interesse in het onderzoeken van de vroegste stappen van gemetastaseerd zaaien in vivo. Deze interesse wordt verder gevoed door de toegenomen waardering dat kankercellen zich verspreiden nog voordat de primaire tumor wordt gedetecteerd7,8 en het toenemende bewijs dat ze overleven als afzonderlijke cellen en in een slapende toestand gedurende jaren tot decennia voordat ze uitgroeien in macro-metastase9.

Voorheen was beeldvorming van de long met eencellige resolutie noodzakelijkerwijs ex vivo of explantische preparaten10,11,12,13,waarbij analyses werden beperkt tot enkele tijdspunten. Hoewel deze preparaten nuttige informatie bieden, geven ze geen inzicht in de dynamiek van tumorcellen in het orgaan dat is verbonden met een intacte bloedsomloop.

Recente technologische ontwikkelingen in beeldvorming hebben intravitale visualisatie van de intacte long met eencellige resolutie mogelijk gemaakt gedurende perioden van maximaal 12 h14,15,16. Dit werd bereikt in een muizenmodel met behulp van een protocol dat mechanische ventilatie, resectie van de ribbenkast en vacuümondersteunde longimmobilisatie omvatte. Ondanks het aanbieden van de eerste beelden met een enkele celresolutie van de fysiologisch intacte long, is de techniek echter zeer invasief en terminaal, waardoor verdere beeldvormingssessies buiten de indexprocedure worden uitgesloten. Deze beperking voorkomt daarom de toepassing ervan op de studie van gemetastaseerde stappen die langer dan 12 uur duren, zoals rust en het opnieuw initiëren van groei14,15,16. Verder moeten patronen van cellulair gedrag waargenomen met behulp van deze beeldvormingsbenadering voorzichtig worden geïnterpreteerd, aangezien vacuümgeïnduceerde drukverschillen waarschijnlijk afleidingen in de bloedstroom veroorzaken.

Om deze beperkingen te overwinnen, is onlangs een minimaal invasief venster voor beeldvorming van de long met hoge resolutie (WHRIL) ontwikkeld, dat seriële beeldvorming over een langere periode van dagen tot weken mogelijk maakt, zonder de noodzaak van mechanische beademing17. De techniek omvat het creëren van een ‘transparante ribbenkast’ met een afgesloten thoracale holte voor het behoud van een normale longfunctie. De procedure wordt goed verdragen, waardoor de muis kan herstellen zonder zinvolle wijziging van de basislijnactiviteit en -functie. Om precies hetzelfde longgebied bij elke respectieve beeldvormingssessie betrouwbaar te lokaliseren, werd een techniek die bekend staat als microcartografie toegepast op dit venster18. Door dit venster was het mogelijk om beelden van cellen vast te leggen terwijl ze bij het vaatbed van de long aankomen, het endotheel kruisen, celdeling ondergaan en uitgroeien tot micrometastasen.

Hier presenteert de studie een gedetailleerde beschrijving van een verbeterd chirurgisch protocol voor implantatie van de WHRIL, dat de operatie vereenvoudigt en tegelijkertijd de reproduceerbaarheid en kwaliteit ervan verhoogt. Hoewel dit protocol is ontworpen om onderzoek mogelijk te maken naar de dynamische processen die ten grondslag liggen aan metastase, kan de techniek als alternatief worden toegepast op onderzoeken van tal van processen van longbiologie en pathologie.

Protocol

Alle procedures die in dit protocol worden beschreven, zijn uitgevoerd in overeenstemming met richtlijnen en voorschriften voor het gebruik van gewervelde dieren, inclusief voorafgaande goedkeuring door het Albert Einstein College of Medicine Institutional Animal Care and Use Committee. 1. Passivering van ramen Spoel de optische kozijnen(aanvullende figuur 2)af met een 1% (w/v) oplossing van enzymatisch actief reinigingsmiddel. Dompel in een glazen pot de o…

Representative Results

De stappen van de chirurgische ingreep die in dit protocol worden beschreven, zijn samengevat en geïllustreerd in figuur 1. Kortom, voorafgaand aan de operatie worden muizen verdoofd en wordt het haar over de linker thorax verwijderd. Muizen worden geïntubeerd en mechanisch geventileerd om te overleven bij het doorbreken van de thoracale holte. Zacht weefsel boven de ribben wordt weggesneden en er ontstaat een klein cirkelvormig defect, dat de6e en7e ribben overspant…

Discussion

Op plaatsen van verre metastase, zoals de long, geeft optische beeldvorming met hoge resolutie inzicht in de uitgebreide dynamiek van tumorcelmetastase. Door in vivo visualisatie van afzonderlijke kankercellen en hun interacties met het gastheerweefsel mogelijk te maken, is intravitale beeldvorming met hoge resolutie instrumenteel gebleken voor het begrijpen van de mechanismen die ten grondslag liggen aan metastase.

Hier wordt een verbeterd chirurgisch protocol beschreven voor de perm…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door de volgende subsidies: CA216248, CA013330, Montefiore’s Ruth L. Kirschstein T32 Training Grant CA200561, METAvivor Early Career Award, het Gruss-Lipper Biophotonics Center en zijn Integrated Imaging Program, en Jane A. en Myles P. Dempsey. We willen de Analytical Imaging Facility (AIF) van het Einstein College of Medicine bedanken voor de ondersteuning van beeldvorming.

Materials

1% (w/v) solution of enzyme-active detergent Alconox Inc N/A  concentrated, anionic detergent with protease enzyme for manual and ultrasonic cleaning
2 µm fluorescent microspheres Invitrogen F8827
5 mm coverslip Electron Microscopy Sciences 72296-05
5% (w/v) solution of sodium hydroxide Sigma-Aldrich S8045
5% Isoflurane Henry Schein, Inc 29405
5-0 braided silk with RB-1 cutting needle Ethicon, Inc. 774B
7% (w/v) solution of citric acid Sigma-Aldrich 251275
8 mm stainless steel window frame N/A N/A Custom made, Supplementary Figure 2
9 cm 2-0 silk tie Ethicon, Inc. LA55G
5 mm disposable biopsy punch Integra  33-35-SH
Blunt micro-dissecting scissors Roboz RS-5980
Buprenorphine Hospira 0409-2012-32
Cautery pen Braintree Scientific GEM 5917
Chlorhexidine gluconate  Becton, Dickinson and Company 260100 ChloraPrep Single swabstick 1.75 mL
Compressed air canister Falcon DPSJB-12
Cyanoacrylate adhesive Henkel Adhesives LOC1363589
Fiber-optic illuminator O.C. White Company FL3000
Bead sterilizer CellPoint Scientific GER 5287-120V Germinator 500
Graefe forceps Roboz RS-5135
Infrared heat lamp Braintree Scientific HL-1
Insulin syringes Becton Dickinson 329424
Isoflurane vaporizer SurgiVet VCT302
Jacobson needle holder with lock Kalson Surgical T1-140
Long cotton tip applicators Medline Industries MDS202055
Nair Church & Dwight Co., Inc. 40002957
Neomycin/polymyxin B/bacitracin Johnson & Johnson 501373005 Antibiotic ointmen
Ophthalmic ointment Dechra Veterinary Products 17033-211-38
Paper tape Fisher Scientific S68702
Murine ventilator Kent Scientific PS-02 PhysioSuite
Rectangular Cover Glass Corning 2980-225
Rodent intubation stand Braintree Scientific RIS 100
Small animal lung inflation bulb Harvard Apparatus 72-9083
Stainless steel cutting tool N/A N/A Custom made, Supplementary Figure 1
Sulfamethoxazole and Trimethoprim oral antibiotic Hi-Tech Pharmacal Co. 50383-823-16
SurgiSuite Multi-Functional Surgical Platform for Mice, with Warming Kent Scientific SURGI-M02 Heated surgical platform
Tracheal catheter Exelint International 26746 22 G catheter
Vacuum pickup system metal probe Ted Pella, Inc. 528-112

References

  1. Mehlen, P., Puisieux, A. Metastasis: a question of life or death. Nature Reviews Cancer. 6 (6), 449-458 (2006).
  2. Lee, Y. T. Breast carcinoma: pattern of metastasis at autopsy. Journal of Surgical Oncology. 23 (3), 175-180 (1983).
  3. Chambers, A. F., Groom, A. C., MacDonald, I. C. Dissemination and growth of cancer cells in metastatic sites. Nature Reviews Cancer. 2 (8), 563-572 (2002).
  4. Coste, A., Oktay, M. H., Condeelis, J. S., Entenberg, D. Intravital imaging techniques for biomedical and clinical research. Cytometry Part A. 95 (5), 448-457 (2019).
  5. DeClerck, Y. A., Pienta, K. J., Woodhouse, E. C., Singer, D. S., Mohla, S. The tumor microenvironment at a turning point knowledge gained over the last decade, and challenges and opportunities ahead: A white paper from the NCI TME network. Cancer Research. 77 (5), 1051-1059 (2017).
  6. Borriello, L., et al. The role of the tumor microenvironment in tumor cell intravasation and dissemination. European Journal of Cell Biology. 99 (6), 151098 (2020).
  7. Hosseini, H., et al. Early dissemination seeds metastasis in breast cancer. Nature. 540 (7634), 552-558 (2016).
  8. Harper, K. L., et al. Mechanism of early dissemination and metastasis in Her2(+) mammary cancer. Nature. 540, 589-612 (2016).
  9. Risson, E., Nobre, A. R., Maguer-Satta, V., Aguirre-Ghiso, J. A. The current paradigm and challenges ahead for the dormancy of disseminated tumor cells. Nature Cancer. 1 (7), 672-680 (2020).
  10. Qian, B., et al. A distinct macrophage population mediates metastatic breast cancer cell extravasation, establishment and growth. PLoS One. 4 (8), 6562 (2009).
  11. Qian, B. Z., et al. CCL2 recruits inflammatory monocytes to facilitate breast-tumour metastasis. Nature. 475 (7355), 222-225 (2011).
  12. Miyao, N., et al. Various adhesion molecules impair microvascular leukocyte kinetics in ventilator-induced lung injury. American Journal of Physiology-Lung Cellular and Molecular Physiology. 290 (6), 1059-1068 (2006).
  13. Bernal, P. J., et al. Nitric-oxide-mediated zinc release contributes to hypoxic regulation of pulmonary vascular tone. Circulation Research. 102 (12), 1575-1583 (2008).
  14. Entenberg, D., et al. In vivo subcellular resolution optical imaging in the lung reveals early metastatic proliferation and motility. IntraVital. 4 (3), 1-11 (2015).
  15. Rodriguez-Tirado, C., et al. Long-term High-Resolution Intravital Microscopy in the Lung with a Vacuum Stabilized Imaging Window. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (116), e54603 (2016).
  16. Looney, M. R., et al. Stabilized imaging of immune surveillance in the mouse lung. Nature Methods. 8 (1), 91-96 (2011).
  17. Entenberg, D., et al. A permanent window for the murine lung enables high-resolution imaging of cancer metastasis. Nature Methods. 15 (1), 73-80 (2018).
  18. Dunphy, M. P., Entenberg, D., Toledo-Crow, R., Larson, S. M. In vivo microcartography and subcellular imaging of tumor angiogenesis: a novel platform for translational angiogenesis research. Microvascular Research. 78 (1), 51-56 (2009).
  19. Harney, A. S., Wang, Y., Condeelis, J. S., Entenberg, D. Extended time-lapse intravital imaging of real-time multicellular dynamics in the tumor microenvironment. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (112), e54042 (2016).
  20. Seynhaeve, A. L. B., Ten Hagen, T. L. M. Intravital microscopy of tumor-associated vasculature using advanced dorsal skinfold window chambers on transgenic fluorescent mice. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (131), e55115 (2018).
  21. Entenbery, D., et al. Time-lapsed, large-volume, high-resolution intravital imaging for tissue-wide analysis of single cell dynamics. Methods. 128, 65-77 (2017).
  22. Ueki, H., Wang, I. H., Zhao, D., Gunzer, M., Kawaoka, Y. Multicolor two-photon imaging of in vivo cellular pathophysiology upon influenza virus infection using the two-photon IMPRESS. Nature Protocols. 15 (3), 1041-1065 (2020).
  23. Ritsma, L., Ponsioen, B., van Rheenen, J. Intravital imaging of cell signaling in mice. IntraVital. 1 (1), 2-10 (2012).
  24. Kedrin, D., et al. Intravital imaging of metastatic behavior through a mammary imaging window. Nature Methods. 5 (12), 1019-1021 (2008).
  25. Harney, A. S., et al. Real-time imaging reveals local, transient vascular permeability, and tumor cell intravasation stimulated by TIE2hi macrophage-derived VEGFA. Cancer Discovery. 5 (9), 932-943 (2015).
  26. Karagiannis, G. S., et al. Assessing tumor microenvironment of metastasis doorway-mediated vascular permeability associated with cancer cell dissemination using intravital imaging and fixed tissue analysis. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (148), e59633 (2019).
  27. Karagiannis, G. S., et al. Neoadjuvant chemotherapy induces breast cancer metastasis through a TMEM-mediated mechanism. Science Translational Medicine. 9 (397), (2017).
  28. Dreher, M. R., et al. Tumor vascular permeability, accumulation, and penetration of macromolecular drug carriers. Journal of the National Cancer Institute. 98 (5), 335-344 (2006).
  29. Rizzo, V., Kim, D., Duran, W. N., DeFouw, D. O. Ontogeny of microvascular permeability to macromolecules in the chick chorioallantoic membrane during normal angiogenesis. Microvascular Research. 49 (1), 49-63 (1995).
  30. Hoshino, A., et al. Tumour exosome integrins determine organotropic metastasis. Nature. 527 (7578), 329-335 (2015).
  31. Ueki, H., et al. In vivo imaging of the pathophysiological changes and neutrophil dynamics in influenza virus-infected mouse lungs. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (28), 6622-6629 (2018).
  32. Kornfield, T. E., Newman, E. A. Measurement of retinal blood flow using fluorescently labeled red blood cells. eNeuro. 2 (2), (2015).
  33. Dasari, S., Weber, P., Makhloufi, C., Lopez, E., Forestier, C. L. Intravital microscopy imaging of the liver following leishmania infection: An assessment of hepatic hemodynamics. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (101), e52303 (2015).
  34. Chaigneau, E., Roche, M., Charpak, S. Unbiased analysis method for measurement of red blood cell size and velocity with laser scanning microscopy. Frontiers in Neuroscience. 13, 644 (2019).
  35. Kim, T. N., et al. Line-scanning particle image velocimetry: an optical approach for quantifying a wide range of blood flow speeds in live animals. PLoS One. 7 (6), 38590 (2012).
  36. Presson, R. G., et al. Two-photon imaging within the murine thorax without respiratory and cardiac motion artifact. American Journal of Pathology. 179 (1), 75-82 (2011).
  37. Tabuchi, A., Mertens, M., Kuppe, H., Pries, A. R., Kuebler, W. M. Intravital microscopy of the murine pulmonary microcirculation. Journal of Applied Physiology. 104 (2), 338-346 (2008).
  38. Travis, W. D. Classification of lung cancer. Seminars in Roentgenology. 46 (3), 178-186 (2011).
  39. Scholten, E. T., Kreel, L. Distribution of lung metastases in the axial plane. A combined radiological-pathological study. Radiologica Clinica (Basel). 46 (4), 248-265 (1977).
  40. Braman, S. S., Whitcomb, M. E. Endobronchial metastasis. Archives of Internal Medicine. 135 (4), 543-547 (1975).
  41. Herold, C. J., Bankier, A. A., Fleischmann, D. Lung metastases. European Radiology. 6 (5), 596-606 (1996).
  42. Kimura, H., et al. Real-time imaging of single cancer-cell dynamics of lung metastasis. Journal of Cellular Biochemistry. 109 (1), 58-64 (2010).
  43. Thevenaz, P., Ruttimann, U. E., Unser, M. A pyramid approach to subpixel registration based on intensity. IEEE Transactions on Image Processing: A Publication of the IEEE Signal Processing Society. 7 (1), 27-41 (1998).
  44. Sharma, V. P. ImageJ plugin HyperStackReg V5.6. Zenodo. , (2018).
check_url/62761?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Borriello, L., Traub, B., Coste, A., Oktay, M. H., Entenberg, D. A Permanent Window for Investigating Cancer Metastasis to the Lung. J. Vis. Exp. (173), e62761, doi:10.3791/62761 (2021).

View Video