Summary

Постоянное окно для исследования метастазирования рака в легкие

Published: July 01, 2021
doi:

Summary

Здесь мы представляем протокол хирургической имплантации постоянно пребывающего оптического окна для грудной клетки мышей, которое позволяет проводить прижизненную визуализацию легких с высоким разрешением. Постоянство окна делает его хорошо подходящим для изучения динамических клеточных процессов в легких, особенно тех, которые медленно развиваются, таких как метастатическое прогрессирование диссеминированных опухолевых клеток.

Abstract

Метастазирование, на которое приходится ~ 90% смертности, связанной с раком, включает системное распространение раковых клеток из первичных опухолей во вторичные участки, такие как кость, мозг и легкие. Несмотря на то, что механистические детали этого процесса широко изучены, они остаются плохо изученными. В то время как общие методы визуализации, включая компьютерную томографию (КТ), позитронно-эмиссионную томографию (ПЭТ) и магнитно-резонансную томографию (МРТ), предлагают различную степень грубой визуализации, каждому из них не хватает временного и пространственного разрешения, необходимого для обнаружения динамики отдельных опухолевых клеток. Чтобы решить эту проблему, были описаны многочисленные методы для прижизненной визуализации общих метастатических участков. Из этих участков легкие оказались особенно сложными для доступа к прижизненной визуализации из-за его деликатности и критической роли в поддержании жизни. Хотя ранее было описано несколько подходов для одноклеточной прижизненной визуализации интактного легкого, все они включают высокоинвазивные и терминальные процедуры, ограничивающие максимально возможную продолжительность визуализации до 6-12 ч. Здесь описана улучшенная методика перманентной имплантации минимально инвазивного грудного оптического окна для визуализации легких с высоким разрешением (WHRIL). В сочетании с адаптированным подходом к микрокартографии инновационное оптическое окно облегчает последовательную прижизненную визуализацию неповрежденного легкого с одноклеточным разрешением в течение нескольких сеансов визуализации и в течение нескольких недель. Учитывая беспрецедентную продолжительность времени, в течение которого данные визуализации могут быть собраны, WHRIL может способствовать ускоренному открытию динамических механизмов, лежащих в основе метастатического прогрессирования и многочисленных дополнительных биологических процессов в легких.

Introduction

Ответственные за ~ 90% смертей, метастазы являются основной причиной смертности, связанной с раком1. Среди основных участков клинически наблюдаемых метастазов (кости, печень, легкие, мозг)2,легкие оказались особенно сложными для визуализации in vivo с помощью прижизненной микроскопии. Это связано с тем, что легкое является тонким органом в вечном движении. Непрерывное движение легких, дополнительно усугубляемое внутригрудным сердечным движением, представляет собой существенный барьер для точной визуализации. Поэтому из-за его относительной недоступности для модальностей для прижизненной оптической визуализации с высоким разрешением рост рака в легких часто считается оккультным процессом3.

В клинических условиях технологии визуализации, такие как компьютерная томография (КТ), позитронно-эмиссионная томография (ПЭТ) и магнитно-резонансная томография (МРТ), позволяют визуализировать глубоко внутри интактных жизненно важных органов, таких как легкие4. Однако, хотя эти модальности обеспечивают превосходный вид грубого органа (часто даже выявляя патологию до появления клинических симптомов), они имеют недостаточное разрешение для обнаружения отдельных диссеминированных опухолевых клеток по мере их продвижения через ранние стадии метастазирования. Следовательно, к тому времени, когда вышеупомянутые модальности дают какие-либо признаки метастазирования в легкие, метастатические очаги уже хорошо укоренились и размножаются. Поскольку микроокружение опухоли играет ключевую роль в прогрессировании рака и образовании метастазов5,6,существует большой интерес к исследованию самых ранних этапов метастатического посева in vivo. Этот интерес дополнительно подпитывается повышенным пониманием того, что раковые клетки распространяются еще до того, как первичная опухоль обнаружена7,8, и растущими доказательствами того, что они выживают как одиночные клетки и находятся в спящем состоянии в течение многих лет или десятилетий, прежде чем перерасти в макрометастаз9.

Ранее визуализация легких при одноклеточном разрешении обязательно включала ex vivo или эксплант препараты10,11,12,13,ограничивая анализы одиночными временными точками. Хотя эти препараты предоставляют полезную информацию, они не дают никакого представления о динамике опухолевых клеток в органе, связанном с неповрежденной кровеносной системой.

Последние технологические достижения в области визуализации позволили интравитальной визуализации неповрежденного легкого с одноклеточным разрешением в течение периодов до 12 ч14,15,16. Это было достигнуто в мышиной модели с использованием протокола, который включал механическую вентиляцию, резекцию грудной клетки и вакуумную иммобилизацию легких. Однако, несмотря на то, что он предлагает первые изображения физиологически неповрежденного легкого с разрешением одной клетки, этот метод является высокоинвазивным и терминальным, что исключает дальнейшие сеансы визуализации за пределами индексной процедуры. Это ограничение, таким образом, препятствует его применению для изучения метастатических стадий, которые занимают более 12 ч, таких как покоя и реинициация роста14,15,16. Кроме того, паттерны клеточного поведения, наблюдаемые с использованием этого подхода к визуализации, должны быть осторожно интерпретированы, учитывая, что вызванные вакуумом перепады давления, вероятно, вызовут отклонения в кровотоке.

Чтобы преодолеть эти ограничения, недавно было разработано минимально инвазивное окно для визуализации легких с высоким разрешением (WHRIL), облегчающее последовательную визуализацию в течение длительного периода от нескольких дней до недель без необходимости механической вентиляции17. Методика влечет за собой создание «прозрачной грудной клетки» с герметичной грудной полостью для сохранения нормальной функции легких. Процедура хорошо переносится, что позволяет мыши восстанавливаться без значимых изменений в исходной активности и функции. Чтобы надежно локализовать одну и ту же область легких на каждом соответствующем сеансе визуализации, к этому окну18был применен метод, известный как микрокартография. Через это окно можно было захватывать изображения клеток, когда они поступают в сосудистое русло легкого, пересекают эндотелий, проходят деление клеток и превращаются в микрометастазы.

Здесь в исследовании представлено подробное описание улучшенного хирургического протокола имплантации WHRIL, который упрощает операцию, одновременно повышая ее воспроизводимость и качество. Хотя этот протокол был разработан для исследования динамических процессов, лежащих в основе метастазирования, этот метод может быть альтернативно применен к исследованиям многочисленных процессов биологии легких и патологии.

Protocol

Все процедуры, описанные в этом протоколе, были выполнены в соответствии с руководящими принципами и правилами использования позвоночных животных, включая предварительное одобрение Комитета по институциональному уходу и использованию животных Медицинского колледжа Альберта Эйнште…

Representative Results

Этапы хирургической процедуры, описанные в этом протоколе, обобщены и проиллюстрированы на рисунке 1. Вкратце, перед операцией мышей обезболивают и удаляют волосы над левой грудной клеткой. Мышей интубируют и механически вентилируют, чтобы обеспечить выживание при нар…

Discussion

В местах отдаленного метастазирования, таких как легкие, оптическая визуализация с высоким разрешением дает представление о сложной динамике метастазирования опухолевых клеток. Обеспечивая визуализацию in vivo отдельных раковых клеток и их взаимодействия с тканью хозяина, прижизн…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана следующими грантами: CA216248, CA013330, Учебный грант Рут Л. Киршштейн T32 Монтефиоре CA200561, премия METAvivor Early Career Award, Центр биофотоники Грусса-Липпера и его Интегрированная программа визуализации, а также Джейн А. и Майлз. Демпси. Мы хотели бы поблагодарить Центр аналитической визуализации (AIF) в Медицинском колледже Эйнштейна за поддержку визуализации.

Materials

1% (w/v) solution of enzyme-active detergent Alconox Inc N/A  concentrated, anionic detergent with protease enzyme for manual and ultrasonic cleaning
2 µm fluorescent microspheres Invitrogen F8827
5 mm coverslip Electron Microscopy Sciences 72296-05
5% (w/v) solution of sodium hydroxide Sigma-Aldrich S8045
5% Isoflurane Henry Schein, Inc 29405
5-0 braided silk with RB-1 cutting needle Ethicon, Inc. 774B
7% (w/v) solution of citric acid Sigma-Aldrich 251275
8 mm stainless steel window frame N/A N/A Custom made, Supplementary Figure 2
9 cm 2-0 silk tie Ethicon, Inc. LA55G
5 mm disposable biopsy punch Integra  33-35-SH
Blunt micro-dissecting scissors Roboz RS-5980
Buprenorphine Hospira 0409-2012-32
Cautery pen Braintree Scientific GEM 5917
Chlorhexidine gluconate  Becton, Dickinson and Company 260100 ChloraPrep Single swabstick 1.75 mL
Compressed air canister Falcon DPSJB-12
Cyanoacrylate adhesive Henkel Adhesives LOC1363589
Fiber-optic illuminator O.C. White Company FL3000
Bead sterilizer CellPoint Scientific GER 5287-120V Germinator 500
Graefe forceps Roboz RS-5135
Infrared heat lamp Braintree Scientific HL-1
Insulin syringes Becton Dickinson 329424
Isoflurane vaporizer SurgiVet VCT302
Jacobson needle holder with lock Kalson Surgical T1-140
Long cotton tip applicators Medline Industries MDS202055
Nair Church & Dwight Co., Inc. 40002957
Neomycin/polymyxin B/bacitracin Johnson & Johnson 501373005 Antibiotic ointmen
Ophthalmic ointment Dechra Veterinary Products 17033-211-38
Paper tape Fisher Scientific S68702
Murine ventilator Kent Scientific PS-02 PhysioSuite
Rectangular Cover Glass Corning 2980-225
Rodent intubation stand Braintree Scientific RIS 100
Small animal lung inflation bulb Harvard Apparatus 72-9083
Stainless steel cutting tool N/A N/A Custom made, Supplementary Figure 1
Sulfamethoxazole and Trimethoprim oral antibiotic Hi-Tech Pharmacal Co. 50383-823-16
SurgiSuite Multi-Functional Surgical Platform for Mice, with Warming Kent Scientific SURGI-M02 Heated surgical platform
Tracheal catheter Exelint International 26746 22 G catheter
Vacuum pickup system metal probe Ted Pella, Inc. 528-112

References

  1. Mehlen, P., Puisieux, A. Metastasis: a question of life or death. Nature Reviews Cancer. 6 (6), 449-458 (2006).
  2. Lee, Y. T. Breast carcinoma: pattern of metastasis at autopsy. Journal of Surgical Oncology. 23 (3), 175-180 (1983).
  3. Chambers, A. F., Groom, A. C., MacDonald, I. C. Dissemination and growth of cancer cells in metastatic sites. Nature Reviews Cancer. 2 (8), 563-572 (2002).
  4. Coste, A., Oktay, M. H., Condeelis, J. S., Entenberg, D. Intravital imaging techniques for biomedical and clinical research. Cytometry Part A. 95 (5), 448-457 (2019).
  5. DeClerck, Y. A., Pienta, K. J., Woodhouse, E. C., Singer, D. S., Mohla, S. The tumor microenvironment at a turning point knowledge gained over the last decade, and challenges and opportunities ahead: A white paper from the NCI TME network. Cancer Research. 77 (5), 1051-1059 (2017).
  6. Borriello, L., et al. The role of the tumor microenvironment in tumor cell intravasation and dissemination. European Journal of Cell Biology. 99 (6), 151098 (2020).
  7. Hosseini, H., et al. Early dissemination seeds metastasis in breast cancer. Nature. 540 (7634), 552-558 (2016).
  8. Harper, K. L., et al. Mechanism of early dissemination and metastasis in Her2(+) mammary cancer. Nature. 540, 589-612 (2016).
  9. Risson, E., Nobre, A. R., Maguer-Satta, V., Aguirre-Ghiso, J. A. The current paradigm and challenges ahead for the dormancy of disseminated tumor cells. Nature Cancer. 1 (7), 672-680 (2020).
  10. Qian, B., et al. A distinct macrophage population mediates metastatic breast cancer cell extravasation, establishment and growth. PLoS One. 4 (8), 6562 (2009).
  11. Qian, B. Z., et al. CCL2 recruits inflammatory monocytes to facilitate breast-tumour metastasis. Nature. 475 (7355), 222-225 (2011).
  12. Miyao, N., et al. Various adhesion molecules impair microvascular leukocyte kinetics in ventilator-induced lung injury. American Journal of Physiology-Lung Cellular and Molecular Physiology. 290 (6), 1059-1068 (2006).
  13. Bernal, P. J., et al. Nitric-oxide-mediated zinc release contributes to hypoxic regulation of pulmonary vascular tone. Circulation Research. 102 (12), 1575-1583 (2008).
  14. Entenberg, D., et al. In vivo subcellular resolution optical imaging in the lung reveals early metastatic proliferation and motility. IntraVital. 4 (3), 1-11 (2015).
  15. Rodriguez-Tirado, C., et al. Long-term High-Resolution Intravital Microscopy in the Lung with a Vacuum Stabilized Imaging Window. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (116), e54603 (2016).
  16. Looney, M. R., et al. Stabilized imaging of immune surveillance in the mouse lung. Nature Methods. 8 (1), 91-96 (2011).
  17. Entenberg, D., et al. A permanent window for the murine lung enables high-resolution imaging of cancer metastasis. Nature Methods. 15 (1), 73-80 (2018).
  18. Dunphy, M. P., Entenberg, D., Toledo-Crow, R., Larson, S. M. In vivo microcartography and subcellular imaging of tumor angiogenesis: a novel platform for translational angiogenesis research. Microvascular Research. 78 (1), 51-56 (2009).
  19. Harney, A. S., Wang, Y., Condeelis, J. S., Entenberg, D. Extended time-lapse intravital imaging of real-time multicellular dynamics in the tumor microenvironment. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (112), e54042 (2016).
  20. Seynhaeve, A. L. B., Ten Hagen, T. L. M. Intravital microscopy of tumor-associated vasculature using advanced dorsal skinfold window chambers on transgenic fluorescent mice. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (131), e55115 (2018).
  21. Entenbery, D., et al. Time-lapsed, large-volume, high-resolution intravital imaging for tissue-wide analysis of single cell dynamics. Methods. 128, 65-77 (2017).
  22. Ueki, H., Wang, I. H., Zhao, D., Gunzer, M., Kawaoka, Y. Multicolor two-photon imaging of in vivo cellular pathophysiology upon influenza virus infection using the two-photon IMPRESS. Nature Protocols. 15 (3), 1041-1065 (2020).
  23. Ritsma, L., Ponsioen, B., van Rheenen, J. Intravital imaging of cell signaling in mice. IntraVital. 1 (1), 2-10 (2012).
  24. Kedrin, D., et al. Intravital imaging of metastatic behavior through a mammary imaging window. Nature Methods. 5 (12), 1019-1021 (2008).
  25. Harney, A. S., et al. Real-time imaging reveals local, transient vascular permeability, and tumor cell intravasation stimulated by TIE2hi macrophage-derived VEGFA. Cancer Discovery. 5 (9), 932-943 (2015).
  26. Karagiannis, G. S., et al. Assessing tumor microenvironment of metastasis doorway-mediated vascular permeability associated with cancer cell dissemination using intravital imaging and fixed tissue analysis. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (148), e59633 (2019).
  27. Karagiannis, G. S., et al. Neoadjuvant chemotherapy induces breast cancer metastasis through a TMEM-mediated mechanism. Science Translational Medicine. 9 (397), (2017).
  28. Dreher, M. R., et al. Tumor vascular permeability, accumulation, and penetration of macromolecular drug carriers. Journal of the National Cancer Institute. 98 (5), 335-344 (2006).
  29. Rizzo, V., Kim, D., Duran, W. N., DeFouw, D. O. Ontogeny of microvascular permeability to macromolecules in the chick chorioallantoic membrane during normal angiogenesis. Microvascular Research. 49 (1), 49-63 (1995).
  30. Hoshino, A., et al. Tumour exosome integrins determine organotropic metastasis. Nature. 527 (7578), 329-335 (2015).
  31. Ueki, H., et al. In vivo imaging of the pathophysiological changes and neutrophil dynamics in influenza virus-infected mouse lungs. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (28), 6622-6629 (2018).
  32. Kornfield, T. E., Newman, E. A. Measurement of retinal blood flow using fluorescently labeled red blood cells. eNeuro. 2 (2), (2015).
  33. Dasari, S., Weber, P., Makhloufi, C., Lopez, E., Forestier, C. L. Intravital microscopy imaging of the liver following leishmania infection: An assessment of hepatic hemodynamics. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (101), e52303 (2015).
  34. Chaigneau, E., Roche, M., Charpak, S. Unbiased analysis method for measurement of red blood cell size and velocity with laser scanning microscopy. Frontiers in Neuroscience. 13, 644 (2019).
  35. Kim, T. N., et al. Line-scanning particle image velocimetry: an optical approach for quantifying a wide range of blood flow speeds in live animals. PLoS One. 7 (6), 38590 (2012).
  36. Presson, R. G., et al. Two-photon imaging within the murine thorax without respiratory and cardiac motion artifact. American Journal of Pathology. 179 (1), 75-82 (2011).
  37. Tabuchi, A., Mertens, M., Kuppe, H., Pries, A. R., Kuebler, W. M. Intravital microscopy of the murine pulmonary microcirculation. Journal of Applied Physiology. 104 (2), 338-346 (2008).
  38. Travis, W. D. Classification of lung cancer. Seminars in Roentgenology. 46 (3), 178-186 (2011).
  39. Scholten, E. T., Kreel, L. Distribution of lung metastases in the axial plane. A combined radiological-pathological study. Radiologica Clinica (Basel). 46 (4), 248-265 (1977).
  40. Braman, S. S., Whitcomb, M. E. Endobronchial metastasis. Archives of Internal Medicine. 135 (4), 543-547 (1975).
  41. Herold, C. J., Bankier, A. A., Fleischmann, D. Lung metastases. European Radiology. 6 (5), 596-606 (1996).
  42. Kimura, H., et al. Real-time imaging of single cancer-cell dynamics of lung metastasis. Journal of Cellular Biochemistry. 109 (1), 58-64 (2010).
  43. Thevenaz, P., Ruttimann, U. E., Unser, M. A pyramid approach to subpixel registration based on intensity. IEEE Transactions on Image Processing: A Publication of the IEEE Signal Processing Society. 7 (1), 27-41 (1998).
  44. Sharma, V. P. ImageJ plugin HyperStackReg V5.6. Zenodo. , (2018).
check_url/62761?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Borriello, L., Traub, B., Coste, A., Oktay, M. H., Entenberg, D. A Permanent Window for Investigating Cancer Metastasis to the Lung. J. Vis. Exp. (173), e62761, doi:10.3791/62761 (2021).

View Video