Summary

Desenvolvimento e Avaliação de um Modelo de Defeitos Cartilaginosos em Rato

Published: May 19, 2023
doi:

Summary

Este protocolo estabelece um modelo de defeitos de cartilagem de espessura total (FTCD) através da perfuração de orifícios no sulco troclear femoral de ratos e mensuração do comportamento da dor e alterações histopatológicas subsequentes.

Abstract

Defeitos cartilaginosos da articulação do joelho causados por trauma são uma lesão comum na articulação esportiva na clínica, e esses defeitos resultam em dor articular, movimento prejudicado e, eventualmente, osteoartrite do joelho (kOA). No entanto, há pouco tratamento efetivo para defeitos cartilaginosos ou mesmo kOA. Modelos animais são importantes para o desenvolvimento de fármacos terapêuticos, mas os modelos existentes para defeitos cartilaginosos são insatisfatórios. Este trabalho estabeleceu um modelo de defeitos de cartilagem de espessura total (FTCD) através da perfuração de furos no sulco troclear femoral de ratos, e o comportamento da dor e as alterações histopatológicas subsequentes foram usados como experimentos de leitura. Após a cirurgia, o limiar de retirada mecânica foi diminuído, os condrócitos no local lesado foram perdidos, a expressão de MMP13 das metaloproteinases da matriz foi aumentada e a expressão de colágeno tipo II diminuiu, consistente com as alterações patológicas observadas nos defeitos da cartilagem humana. Essa metodologia é de fácil e simples execução e possibilita a observação macroscópica imediatamente após a lesão. Além disso, este modelo pode mimetizar com sucesso defeitos clínicos da cartilagem, fornecendo uma plataforma para o estudo do processo patológico dos defeitos cartilaginosos e desenvolvimento de drogas terapêuticas correspondentes.

Introduction

A cartilagem articular é um tecido altamente diferenciado e denso, constituído por condrócitos e matrizextracelular1. A camada superficial da cartilagem articular é uma forma de cartilagem hialina, que apresenta superfície lisa, baixo atrito, boa resistência e elasticidade e excelente tolerância ao estressemecânico2. A matriz extracelular é composta por proteoglicanos e água, sendo o colágeno tipo II o principal componente estrutural do colágeno, sendo responsável por cerca de 90% do colágeno total3. Como não existem vasos sanguíneos ou nervos no tecido cartilaginoso, este não tem a capacidade de auto-reparação após a lesão4. Portanto, os defeitos cartilaginosos causados por trauma sempre foram uma doença articular intratável na clínica; Além disso, essa doença articular tende a atingir os jovens, e a incidência mundial estáaumentando5,6. A articulação do joelho é o local mais comum de defeitos cartilaginosos, e os defeitos são acompanhados por dor articular, disfunção articular e degeneração da cartilagem articular, eventualmente levando à osteoartrite do joelho (kOA)7. Os defeitos cartilaginosos da articulação do joelho acarretam ônus econômico e fisiológico aos pacientes e afetam seriamente a qualidade de vida dospacientes8. Esta doença representa um grande e urgente desafio clínico sem soluções iminentes. Atualmente, a cirurgia é a base do tratamento dos defeitos da cartilagem, mas seu resultado a longo prazo permaneceinsatisfatório9.

Defeitos clínicos da cartilagem eventualmente levam à kOA e, portanto, modelos animais de kOA são comumente usados para o estudo patológico de defeitos cartilaginosos e desenvolvimento de drogas. O estabelecimento de modelos animais é importante para o entendimento do processo fisiopatológico do reparo do defeito cartilaginoso, que pode ser utilizado para observar a regeneração cartilaginosa e a alteração entre fibrocartilagem e cartilagemhialina10. No entanto, modelos animais comumente utilizados, como modelos cirúrgicos de transecção do ligamento cruzado anterior (LTCA), desestabilização do menisco medial (DMM), ooforectomia (OVX) e Hulth, geralmente necessitam de modelagem em longo prazo e permitem apenas avaliações patológicas e da dor, o que impõe limitações à eficiência do desenvolvimento de fármacos11. Além dos modelos cirúrgicos, modelos químicos, como monoiodoacetato (MIA) e injeção de papaína, também resultam em defeitos cartilaginosos, mas o grau do defeito não pode ser bem manejado e as condições estão distantes da realidade clínica11. A colisão é outra abordagem para modelar defeitos de cartilagem em animais maiores, mas esse método depende do uso de instrumentos específicos e raramente é aplicado12.

Em resumo, os modelos de kOA existentes não são ideais para estudar a patogênese de defeitos cartilaginosos ou desenvolver novas drogas, sendo necessário um modelo específico e padronizado para defeitos cartilaginosos. Este estudo estabeleceu um modelo de defeitos de cartilagem de espessura total (FTCD) através da perfuração de furos no sulco troclear femoral em ratos. Observação macroscópica, testes de comportamento da dor e análise histopatológica foram realizados para avaliação do modelo. Ao contrário de outros modelos animais de kOA, este modelo tem pouco efeito sobre o estado geral dos ratos. Essa abordagem de modelagem é acessível, pode ser bem gerenciada e apoia a compreensão da progressão de defeitos cartilaginosos para kOA e o desenvolvimento de terapêuticas eficazes. Esse modelo também pode ser usado para testar terapias que previnem a kOA por meio da cicatrização de defeitos em articulações pré-osteoartríticas.

Protocol

Os experimentos com animais foram aprovados pelo Comitê de Ética e Padrões Médicos da Universidade de Medicina Tradicional Chinesa de Zhejiang, que está em conformidade com a legislação da China sobre o uso e cuidados com animais de laboratório. No presente estudo, ratos Sprague-Dawley (SD) machos com 6 semanas de idade pesando 150-180 g foram utilizados. Os animais foram obtidos de fonte comercial (ver Tabela de Materiais). 1. Estabelecimento de um modelo de def…

Representative Results

Neste trabalho, um modelo de FTCD em ratos foi estabelecido através da perfuração de furos no sulco troclear femoral e detecção do comportamento da dor e alterações histopatológicas subsequentes. Como mostrado na Figura 1, 3 dias após a modelagem, em comparação com o grupo sham, o TCM dos ratos do grupo modelo foi significativamente reduzido, sugerindo hiperalgesia causada pela FTCD. Aos 17 dias após a modelagem, o limiar de retirada mecânica dos ratos do grupo modelo permaneceu…

Discussion

Este estudo descreve um modelo animal para mimetizar defeitos clínicos da cartilagem por meio de furos no sulco troclear femoral de ratos (Figura 1 Suplementar). Após a lesão da cartilagem, a excitabilidade ou responsividade dos nociceptores periféricos é aumentada, o que pode resultar em diminuição do limiar de dor e aumento da responsividade à estimulação18. Em estudos pré-clínicos, a modelagem de defeitos cartilaginosos em diferentes espécies de an…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este estudo foi apoiado pela Fundação de Ciências Naturais de Zhejiang (número de concessão LQ20H270009), a Fundação de Ciências Naturais da China (números de concessão 82074464 e 82104890), a Fundação de Ciências Médicas Chinesas Tradicionais de Zhejiang (números de concessão 2020ZA039, 2020ZA096 e 2022ZB137) e o Projeto de Ciência e Tecnologia em Saúde Médica da Comissão Provincial de Saúde de Zhejiang (número de concessão 2016KYA196).

Materials

3, 3 '-diaminobenzidine   Hangzhou Zhengbo Biotechnology Co., Ltd. ZLI-9019 The dye for IHC staining
Anti-Collagen III antibody Novus NB600-594 Primary antibody for IHC
Anti-Collagen II antibody Abcam (UK) 34712 Primary antibody for IHC
Anti-Collagen I antibody Novus NB600-408 Primary antibody for IHC
Bouin solution Shanghai Yuanye Technology Co., Ltd. R20381 The dye for Masson staining
Celestite blue Shanghai Yuanye Technology Co., Ltd. R20381 The dye for Masson staining
Corncob paddings   Xiaohe Technology Co., Ltd  Bedding for animal 
Eosin Sigma-Aldrich 861006 The dye for HE staining
Fast Green FCF Sigma-Aldrich F7252 The dye for SO staining
Goat anti-mouse antibody ZSGQ-BIO (Beijing, China) PV-9002 Secondary antibody for IHC
Goat anti-rabbit antibody ZSGQ-BIO (Beijing, China) PV-9001 Secondary antibody for IHC
Hematoxylin Sigma-Aldrich H3163 The dye for HE staining
Masson Shanghai Yuanye Technology Co., Ltd. R20381 The dye for Masson staining
Microdrill Rwd Life Science Co., Ltd 78001 Equipment for surgery
MMP13 Cell Signaling Technology, Inc. (Danvers, MA, USA) 69926 Primary antibody for IHC
Modular tissue embedding center Thermo Fisher Scientific (USA) EC 350 Produce paraffin blocks
Neutral resin Hangzhou Zhengbo Biotechnology Co., Ltd. ZLI-9555 Seal for IHC
Nonabsorbable suture Hangzhou Huawei Medical Supplies Co.,Ltd. 4-0 Equipment for surgery
Pentobarbital sodium  Hangzhou Zhengbo Biotechnology Co., Ltd. WBBTN5G Anesthetized animal
phosphomolybdic acid  Shanghai Yuanye Technology Co., Ltd. R20381 The dye for Masson staining
Ponceau fuchsin Shanghai Yuanye Technology Co., Ltd. R20381 The dye for Masson staining
Rotary and Sliding Microtomes Thermo Fisher Scientific (USA) HM325 Precise paraffin sections
Safranin-O Sigma-Aldrich S2255 The dye for SO staining
Scalpel blade Shanghai Lianhui Medical Supplies Co., Ltd. 11 Equipment for surgery
Sodium citrate solution (20x) Hangzhou Haoke Biotechnology Co., Ltd. HK1222 Antigen retrieval for IHC
Sprague Dawley (SD) rats  Shanghai Slake Experimental Animal Co., Ltd. SD Experimental animal
Tissue-Tek VIP 5 Jr Sakura (Japan) Vacuum Infiltration Processor
Toluidine Blue Sigma-Aldrich 89640 The dye for TB staining
Von Frey filament UGO Basile (Italy)  37450-275 Equipment for MWT assay
Wire mesh platform  Shanghai Yuyan Instruments Co.,Ltd. Equipment for MWT assay

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Zhang, H., Bao, R., Xu, J., Ge, Y., Chen, Z., Fan, M., Yu, G., Zhou, L., Guo, L., Shan, L., Bao, H. Development and Evaluation of a Rat Model of Full-Thickness Cartilage Defects. J. Vis. Exp. (195), e64475, doi:10.3791/64475 (2023).

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