Summary

सस्पेंशन कल्चर प्रोडक्शन एंड प्यूरीफिकेशन ऑफ एडेनो-एसोसिएटेड वायरस बाय Iodixanol डेंसिटी ग्रेडिएंट सेंट्रीफ्यूजेशन इन विवो एप्लीकेशंस

Published: February 09, 2024
doi:

Summary

एडेनो-जुड़े वायरस निलंबन सेल संस्कृति में उत्पन्न होते हैं और डबल आयोडिक्सानोल घनत्व ढाल सेंट्रीफ्यूजेशन द्वारा शुद्ध होते हैं। कुल वायरस उपज बढ़ाने, वायरस वर्षा के जोखिम को कम करने और अंतिम वायरस उत्पाद को और अधिक केंद्रित करने के लिए कदम शामिल किए गए हैं। अपेक्षित अंतिम टाइटर्स 1012 वायरल कणों/एमएल तक पहुंचते हैं और विवो उपयोग में पूर्व-नैदानिक के लिए उपयुक्त होते हैं।

Abstract

यह प्रोटोकॉल पुनः संयोजक एडेनो-जुड़े वायरस (आरएएवी) उत्पादन और आयोडिक्सानॉल घनत्व ढाल सेंट्रीफ्यूजेशन द्वारा शुद्धिकरण का वर्णन करता है, जो पहली बार 1999 में वर्णित एएवी को शुद्ध करने की एक सीरोटाइप-अज्ञेयवादी विधि है। आरएएवी वैक्टर का व्यापक रूप से जीन थेरेपी अनुप्रयोगों में विभिन्न मानव कोशिका प्रकारों में ट्रांसजीन देने के लिए उपयोग किया जाता है। इस काम में, पुनः संयोजक वायरस ट्रांसजीन, वेक्टर कैप्सिड और एडेनोवायरल हेल्पर जीन को एन्कोडिंग करने वाले प्लास्मिड के साथ निलंबन संस्कृति में Expi293 कोशिकाओं के अभिकर्मक द्वारा निर्मित होता है। Iodixanol घनत्व ढाल centrifugation कण घनत्व के आधार पर पूर्ण AAV कणों को शुद्ध करता है। इसके अतिरिक्त, कुल वायरस उपज बढ़ाने के लिए इस अब-सर्वव्यापी पद्धति में तीन चरण शामिल हैं, दूषित प्रोटीन के कारण वर्षा के जोखिम को कम करते हैं, और क्रमशः अंतिम वायरस उत्पाद को और अधिक केंद्रित करते हैं: पॉलीथीन ग्लाइकॉल (पीईजी) और सोडियम क्लोराइड के समाधान का उपयोग करके सेल मीडिया से वायरल कणों की वर्षा, आयोडिक्सानॉल घनत्व ढाल सेंट्रीफ्यूजेशन के दूसरे दौर की शुरूआत, और एक केन्द्रापसारक फिल्टर के माध्यम से बफर विनिमय। इस पद्धति का उपयोग करके, विवो उपयोग के लिए असाधारण शुद्धता के 1012 वायरल कणों/एमएल की सीमा में टाइटर्स को लगातार प्राप्त करना संभव है।

Introduction

पुनः संयोजक एडेनो-जुड़े वायरल (आरएएवी) वैक्टर व्यापक रूप से आनुवंशिक रोगों के उपचार के लिए उपकरण का उपयोग किया जाता है, जिसमें रीढ़ की हड्डी पेशी शोष, रेटिना डिस्ट्रोफी, और हीमोफिलिया ए 1,2,3 शामिल हैं। आरएएवी वैक्टर को जंगली-प्रकार एएवी4 में मौजूद वायरल जीन की कमी के लिए इंजीनियर किया जाता है, जो एक रैखिक एकल-फंसे 4.7 केबी डीएनए जीनोम के साथ एक छोटा, गैर-लिफाफा इकोसाहेड्रल वायरस है। एएवी को पहली बार 1960 के दशक में एडेनोवायरसतैयारी 5 के संदूषक के रूप में खोजा गया था। अपने छोटे कैप्सिड आकार के बावजूद, जो ट्रांसजीन के आकार को सीमित करता है जिसे आईटीआर6 को छोड़कर अधिकतम 4.9 केबी तक पैक किया जा सकता है, एएवी ट्रांसजीन डिलीवरी के लिए उपयोगी है क्योंकि यह मनुष्यों में गैर-रोगजनक है, कई विभाजित और गैर-विभाजित सेल प्रकारों में ट्रांसजीन की अभिव्यक्ति की अनुमति देता है, और सीमित इम्युनोजेनिक प्रभाव7.

जीनस डिपेंडोपार्वोवायरस के सदस्यों के रूप में, आरएएवी का उत्पादन एडेनोवायरस या हर्पीज सिम्प्लेक्स वायरस8 में मौजूद सहायक जीन की अभिव्यक्ति पर निर्भर करता है। आरएएवी का उत्पादन करने के लिए कई रणनीतियों का विकास किया गया है, लेकिन एडेनोवायरल ई 1 ए / ई 1 बी हेल्पर जीन के साथ परिवर्तित एचईके 293 कोशिकाओं में उत्पादन आज इस्तेमाल की जाने वाली सबसे स्थापित विधि है9. आरएएवी उत्पादन का सामान्य दृष्टिकोण क्रमशः उल्टे टर्मिनल रिपीट (आईटीआर), एएवी प्रतिनिधि और कैप जीन, और अतिरिक्त एडेनोवायरल हेल्पर जीन के भीतर ट्रांसजीन युक्त तीन प्लास्मिड के साथ HEK293 कोशिकाओं के अभिकर्मक के साथ शुरू होता है। अभिकर्मक के बहत्तर घंटे बाद, कोशिकाओं को काटा जाता है और ट्रांसजीन युक्त आरएएवी को शुद्ध करने के लिए संसाधित किया जाता है।

चिकित्सीय उद्देश्यों के लिए नए आरएएवी वैक्टर के विकास में, एक प्रमुख लक्ष्य बढ़ी हुई पारगमन दक्षता के साथ वैक्टर का उत्पादन कर रहा है। लक्ष्य कोशिकाओं के पारगमन दक्षता में वृद्धि आरएएवी के आवश्यक नैदानिक खुराक में कमी का मतलब होगा, इस प्रकार तीव्र विषाक्तता10,11 के लिए एंटीबॉडी मध्यस्थता तटस्थता से लेकर प्रतिकूल इम्युनोजेनिक प्रभाव की संभावना कम हो रही है. आरएएवी वैक्टर की पारगमन प्रभावकारिता में सुधार करने के लिए, पैक किए गए जीनोम या कैप्सिड में परिवर्तन किए जा सकते हैं। पैक जीनोम डिजाइन के माध्यम से पारगमन प्रभावकारिता धुन करने के लिए व्यवहार्य तरीकों मजबूत और ऊतक विशिष्ट प्रमोटरों, एमआरएनए प्रसंस्करण तत्वों के विचारशील चयन, और अनुवाद दक्षता12 में सुधार करने के लिए कोडिंग अनुक्रम अनुकूलन के समावेश शामिल हैं. कैप्सिड में परिवर्तन लक्ष्य मानव कोशिका प्रकारों के लिए ट्रोपिज्म बढ़ाने के लक्ष्य के साथ किए जाते हैं। नए आरएएवी ट्रांसजीन डिलीवरी वेक्टर कैप्सिड विकसित करने के प्रयासों को आम तौर पर विशिष्ट सेल रिसेप्टर्स को लक्षित करने वाले विशिष्ट उत्परिवर्तन के साथ एएवी कैप्सिड के तर्कसंगत डिजाइन पर ध्यान केंद्रित करने की विशेषता होती है या एक विशिष्ट रिसेप्टर को लक्षित किए बिना उच्च जटिलता कॉम्बिनेटरियल कैप्सिड पुस्तकालयों से विशिष्ट सेल प्रकारों के लिए ट्रोपिज्म के साथ कैप्सिड की पहचान करने के लिए निर्देशित विकास (हालांकि कुछ समूह इन दृष्टिकोणों को जोड़ते हैं)13, 14,15. निर्देशित विकास दृष्टिकोण में, combinatorial capsid पुस्तकालयों capsid बाहरी16 पर उत्परिवर्तित चर क्षेत्रों के साथ एक विशेष सीरोटाइप रीढ़ का उपयोग कर निर्माण कर रहे हैं. कॉम्बिनेटरियल कैप्सिड पुस्तकालयों का निर्माण अक्सर एएवी सीरोटाइप से किया जाता है जो मनुष्यों में उत्पन्न नहीं होते हैं, नैदानिक उपयोग10 के दौरान पूर्ववर्ती प्रतिरक्षा के जोखिम को कम करते हैं। इसलिए, शुद्धि विधियां जिन्हें किसी भी सीरोटाइप पर लागू किया जा सकता है, इन पुस्तकालयों के लिए रीढ़ के रूप में सेवा करने वाले कम सामान्यतः उपयोग किए जाने वाले सीरोटाइप के लिए सीरोटाइप-विशिष्ट अनुकूलन की आवश्यकता को समाप्त करने के लिए आदर्श हैं।

Iodixanol घनत्व ढाल centrifugation उच्च संक्रामकता17 के साथ rAAV के उच्च टाइटर्स शुद्ध करने के लिए प्रयोग किया जाता है. इस प्रोटोकॉल में, आरएएवी के बड़े टाइटर्स का उत्पादन करने के लिए आवश्यक श्रम की मात्रा को कम करने के लिए निलंबन सेल संस्कृति में आरएएवी का उत्पादन किया जाता है। दूषित प्रोटीन की उपस्थिति को कम करने और वायरस वर्षा के जोखिम को कम करने के लिए सेल लाइसेट को साफ करने के लिए एक सेंट्रीफ्यूजेशन कदम भी शामिल है। यह प्रोटोकॉल पूर्व-नैदानिक उपयोग के लिए उपयुक्त उच्च शुद्धता आरएएवी की तैयारी का उत्पादन करने के लिए एक लागत प्रभावी तरीका है।

Protocol

इस प्रोटोकॉल में उपयोग किए जाने वाले समाधान और बफ़र्स की संरचना तालिका 1में प्रदान की जाती है। विलयन संयोजन एएवी lysis बफर <td…

Representative Results

इस विधि का उपयोग एमएल प्रति कम से कम 1012 वायरल कणों के टाइटर्स प्राप्त करने के लिए किया जा सकता है। पूरक तालिका 1 में प्रदान किए गए आईटीआर प्राइमरों का उपयोग करके, डीडीपीसीआर द्वारा, या किसी अन्य…

Discussion

डबल आयोडिक्सानॉल घनत्व ढाल शुद्धि प्रोटोकॉल सार्वभौमिक विधि है क्योंकि यह किसी भी एएवी उत्परिवर्ती वेरिएंट पर लागू होता है, चाहे उनकी रिसेप्टर विशिष्टता कुछ भी हो। एएवी शुद्धि के प्रारंभिक तरीकों क?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

कोई नहीं।

Materials

5810 R benchtop centrifuge Eppendorf 22625501
8-channel peristaltic pump  Watson-Marlow 020.3708.00A
Automated cell counter  NanoEntek EVE-MC
Avanti J-E high-speed centrifuge Beckman Coulter 369001
Benzonase Thermo Scientific 88701
Biological safety cabinet Labconco 322491101
CO2 incubator with shaker  Set at 8% CO2 and 37 °C
Conical centrifuge tubes Thermo Scientific 339652 50 mL
Conical centrifuge tubes Thermo Scientific 339650 15 mL
Disposable micro-pipets Fisherbrand 21-164-2G Capillaries
Dulbecco's phosphate buffered saline without CaCl2 and MgCl2  (DPBS) (10x) Sigma-Aldrich D1408
ECLIPSE Ts2R-FL inverted microscope Nikon
Expi293 Expression Medium Gibco A1435101
Expi293F cells Gibco A14527
Filter tips USA Scientific 1126-7810 1000 µL
Filter tips USA Scientific 1120-8810 200 µL
Filter tips USA Scientific 1120-1810 20 µL
Filter tips USA Scientific 1121-3810 10 µL
Hypodermic needles Tyco Healthcare 820112 20 GA x 1-1/2 A
Ice bucket with lid VWR 10146-184
JS-5.3 rotor Beckman Coulter 368690
Magnesium chloride solution (1 M) Millipore Sigma M1028-100ML
Metal stand and clamp  Fisherbrand 05-769-6Q
Microcentrifuge tubes Eppendorf 22600028 1.5 mL
Needle nose pliers
Optima XE-90 ultracentrifuge Beckman Coulter A94471
Opti-MEM I Reduced-Serum Medium Gibco 31985062
OptiPrep density gradient media (iodixanol) Serumwerk AXS-1114542 60% iodixanol solution
P1000 Pipet Gilson F144059M
P2 Pipet Gilson F144054M
P20 Pipet Gilson F144056M
P200 Pipet Gilson F144058M
Phenol red solution Sigma-Aldrich P0290
Phosphate buffered saline (PBS) Sigma-Aldrich P4474
Pipet-Aid XP pipette controller Drummond Scientific 4-000-101
Plasmid pCapsid De novo or Addgene, etc.  N/A We used pACGrh74. 
Plasmid pHelper Addgene 112867
Plasmid pTransgene De novo or Addgene, etc.  N/A We used pdsAAV-GFP.
Pluronic F-68 polyol solution (10%) Mp Biomedicals 92750049
Polyethylene glycol 8000 Research Products International P48080-500.0
Polyethylenimine HCl Max (PEI-Max) Polysciences NC1038561 Dilute in water to 40 μM
Polypropylene centrifuge tubes, sterile Corning 431123 500 mL
Polypropylene centrifuge tubes, sterile Corning 430776 250 mL
Polypropylene Optiseal tubes Beckman Coulter 361625
Serological pipettes Alkali Scientific SP250-B 50 mL
Serological pipettes Alkali Scientific SP225-B 25 mL
Serological pipettes Alkali Scientific SP210-B 10 mL
Serological pipettes Alkali Scientific SP205-B 5 mL
Shaker flasks Fisherbrand PBV1000 1 L
Shaker flasks Fisherbrand PBV50-0 500 mL
Shaker flasks Fisherbrand PBV250 250 mL
Shaker flasks Fisherbrand PBV12-5 125 mL
Sodium chloride solution (5 M) Fisher Scientific NC1752640
Sterile syringes Fisherbrand 14-955-458 5 mL
Syringe filter Millipore SLGV013SL 0.22 micron
Tris-HCl pH 8.5 (1 M) Kd Medical RGE3363
Trypan blue solution Gibco 15250061
Tube rack assembly Beckman Coulter 361646
Tube spacers (x4) Beckman Coulter 361669
Tubing for peristaltic pump Fisher Scientific 14190516
Type 70 Ti fixed-angle titanium rotor Beckman Coulter 337922
Ultra low temperature freezer Set at -70 °C
Vivaspin 20 centrifugal concentrator Sartorius VS2041
Water bath  Set at 37 °C

References

  1. Strauss, K. A., et al. Onasemnogene abeparvovec for presymptomatic infants with three copies of SMN2 at risk for spinal muscular atrophy: the Phase III SPR1NT trial. Nat Med. 28 (7), 1390-1397 (2022).
  2. Fuller-Carter, P. I., Basiri, H., Harvey, A. R., Carvalho, L. S. Focused update on AAV-based gene therapy clinical trials for inherited retinal degeneration. BioDrugs. 34 (6), 763-781 (2020).
  3. George, L. A., et al. Multiyear factor VIII expression after AAV gene transfer for hemophilia A. N Engl J Med. 385 (21), 1961-1973 (2021).
  4. Naso, M. F., Tomkowicz, B., Perry, W. L., Strohl, W. R. Adeno-Associated Virus (AAV) as a vector for gene therapy. Biodrugs. 31 (4), 317-334 (2017).
  5. Atchison, R. W., Casto, B. C., Hammon, W. M. c. D. Adenovirus-associated defective virus particles. Science. 149 (3685), 754-756 (1965).
  6. Wu, Z., Yang, H., Colosi, P. Effect of genome size on AAV vector packaging. Mol Ther. 18 (1), 80-86 (2010).
  7. Samulski, R. J., Muzyczka, N. AAV-mediated gene therapy for research and therapeutic purposes. Annu Rev Virol. 1 (1), 427-451 (2014).
  8. Zolotukhin, S. Production of recombinant adeno-associated virus vectors. Hum Gene Ther. 16 (5), 551-557 (2005).
  9. Penaud-Budloo, M., François, A., Clément, N., Ayuso, E. Pharmacology of recombinant adeno-associated virus production. Mol Ther – Methods Clin Dev. 8, 166-180 (2018).
  10. Costa-Verdera, H., et al. Understanding and Tackling immune responses to adeno-associated viral vectors. Hum Gene Ther. 34 (17-18), 836-852 (2023).
  11. Ertl, H. C. J. Mitigating serious adverse events in gene therapy with AAV Vectors: Vector dose and immunosuppression. Drugs. 83 (4), 287-298 (2023).
  12. Pupo, A., et al. AAV vectors: The Rubik’s cube of human gene therapy. Mol Ther. 30 (12), 3515-3541 (2022).
  13. Marsic, D., et al. Vector design tour de force: Integrating combinatorial and rational approaches to derive novel adeno-associated virus variants. Mol Ther. 22 (11), 1900-1909 (2014).
  14. Grimm, D., Zolotukhin, S. E Pluribus Unum: 50 Years of research, millions of viruses, and one goal-tailored acceleration of AAV evolution. Mol Ther. 23 (12), 1819-1831 (2015).
  15. Biswas, M., et al. Engineering and in vitro selection of a novel AAV3B variant with high hepatocyte tropism and reduced seroreactivity. Mol Ther – Methods Clin Dev. 19, 347-361 (2020).
  16. Perabo, L., et al. In vitro selection of viral vectors with modified tropism: the adeno-associated virus display. Mol Ther. 8 (1), 151-157 (2003).
  17. Crosson, S. M., Dib, P., Smith, J. K., Zolotukhin, S. Helper-free production of laboratory grade AAV and purification by iodixanol density gradient centrifugation. Mol Ther – Methods Clin Dev. 10, 1-7 (2018).
  18. Chan, C., Harris, K. K., Zolotukhin, S., Keeler, G. D. Rational design of AAV-rh74, AAV3B, and AAV8 with limited liver targeting. Viruses. 15 (11), 2168 (2023).
  19. Schmidt, O. W., Cooney, M. K., Foy, H. M. Adeno-associated virus in adenovirus type 3 conjunctivitis. Infect Immun. 11 (6), 1362-1370 (1975).
  20. Grimm, D., Kern, A., Rittner, K., Kleinschmidt, J. A. Novel tools for production and purification of recombinant adenoassociated virus vectors. Hum Gene Ther. 9 (18), 2745-2760 (1998).
  21. Zolotukhin, S., et al. Recombinant adeno-associated virus purification using novel methods improves infectious titer and yield. Gene Ther. 6 (6), 973-985 (1999).
  22. Clark, K. R., Liu, X., Mcgrath, J. P., Johnson, P. R. Highly purified recombinant adeno-associated virus vectors are biologically active and free of detectable helper and wild-type viruses. Hum Gene Ther. 10 (6), 1031-1039 (1999).
  23. Debelak, D., et al. Cation-exchange high-performance liquid chromatography of recombinant adeno-associated virus type 2. J Chromatogr B Biomed Sci App. 740 (2), 195-202 (2000).
  24. Burova, E., Ioffe, E. Chromatographic purification of recombinant adenoviral and adeno-associated viral vectors: methods and implications. Gene Ther. 12 (1), S5-S17 (2005).
  25. Adams, B., Bak, H., Tustian, A. D. Moving from the bench towards a large scale, industrial platform process for adeno-associated viral vector purification. Biotechnol Bioeng. 117 (10), 3199-3211 (2020).
  26. Grieger, J. C., Choi, V. W., Samulski, R. J. Production and characterization of adeno-associated viral vectors. Nat Protoc. 1 (3), 1412-1428 (2006).
  27. Florea, M., et al. High-efficiency purification of divergent AAV serotypes using AAVX affinity chromatography. Mol Ther Methods Clin Dev. 28, 146-159 (2022).
  28. Chamberlain, K., Riyad, J. M., Weber, T. Expressing transgenes that exceed the packaging capacity of adeno-associated virus capsids. Hum Gene Ther Methods. 27 (1), 1-12 (2016).
  29. Green, E. A., Hamaker, N. K., Lee, K. H. Comparison of vector elements and process conditions in transient and stable suspension HEK293 platforms using SARS-CoV-2 receptor binding domain as a model protein. BMC Biotechnol. 23 (1), 7 (2023).
  30. Erbacher, P., Zou, S., Bettinger, T., Steffan, A. M., Remy, J. S. Chitosan-based vector/DNA complexes for gene delivery: Biophysical characteristics and transfection ability. Pharm Res. 15 (9), 1332-1339 (1998).
  31. Vandenberghe, L. H., et al. Efficient serotype-dependent release of functional vector into the culture medium during adeno-associated virus manufacturing. Hum Gene Ther. 21 (10), 1251-1257 (2010).
  32. Summerford, C., Samulski, R. J. Membrane-associated heparan sulfate proteoglycan is a receptor for adeno-associated virus type 2 virions. J Virol. 72 (2), 1438-1445 (1998).
  33. Wright, J. F., et al. Identification of factors that contribute to recombinant AAV2 particle aggregation and methods to prevent its occurrence during vector purification and formulation. Mol Ther. 12 (1), 171-178 (2005).
  34. Gruntman, A. M., et al. Stability and compatibility of recombinant adeno-associated virus under conditions commonly encountered in human gene therapy trials. Hum Gene Ther Methods. 26 (2), 71-76 (2015).
  35. Srivastava, A. Rationale and strategies for the development of safe and effective optimized AAV vectors for human gene therapy. Mol Ther Nucleic Acids. 32, 949-959 (2023).
  36. Mullard, A. FDA approves first gene therapy for Duchenne muscular dystrophy, despite internal objections. Nat Rev Drug Discov. 22 (8), 610-610 (2023).
  37. Center for Biologics Evaluation and Research. Approved Cellular and Gene Therapy Products. US Food Drug Adm. , (2023).
  38. Kang, L., et al. AAV vectors applied to the treatment of CNS disorders: Clinical status and challenges. J Control Release Off J Control Release Soc. 355, 458-473 (2023).
  39. De Wolf, D., Singh, K., Chuah, M. K., VandenDriessche, T. Hemophilia gene therapy: The end of the beginning. Hum Gene Ther. 34 (17-18), 782-792 (2023).
  40. Simons, E. J., Trapani, I. The opportunities and challenges of gene therapy for treatment of inherited forms of vision and hearing loss. Hum Gene Ther. 34 (17-18), 808-820 (2023).
check_url/66460?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Harris, K. K., Kondratov, O., Zolotukhin, S. Suspension Culture Production and Purification of Adeno-Associated Virus by Iodixanol Density Gradient Centrifugation for In Vivo Applications. J. Vis. Exp. (204), e66460, doi:10.3791/66460 (2024).

View Video