Summary

Métodos de recolección de leche Ratones y Reeves Muntjac Deer

Published: July 19, 2014
doi:

Summary

Milk collection from animal models facilitates various research avenues: understanding passive immunity, identifying pathogens responsible for vertical transmission and, through the use of transgenic mice, even commercial production of proteins found in human breast milk. Here we illustrate a simple method for milk collection in mice and Reeves’ muntjac deer.

Abstract

Animal models are commonly used throughout research laboratories to accomplish what would normally be considered impractical in a pathogen’s native host. Milk collection from animals allows scientists the opportunity to study many aspects of reproduction including vertical transmission, passive immunity, mammary gland biology, and lactation. Obtaining adequate volumes of milk for these studies is a challenging task, especially from small animal models. Here we illustrate an inexpensive and facile method for milk collection in mice and Reeves’ muntjac deer that does not require specialized equipment or extensive training. This particular method requires two researchers: one to express the milk and to stabilize the animal, and one to collect the milk in an appropriate container from either a Muntjac or mouse model. The mouse model also requires the use of a P-200 pipetman and corresponding pipette tips. While this method is low cost and relatively easy to perform, researchers should be advised that anesthetizing the animal is required for optimal milk collection.

Introduction

Los modelos animales proporcionan información sobre la patología de la enfermedad que no puede ser adquirida mediante el análisis in vitro. Para proporcionar los resultados más eficaces, es importante utilizar un modelo animal que está estrechamente relacionado con la enfermedad y de las especies de interés. Por ejemplo, el muntjac Reeves (Muntiacus reevesi), un pequeño ciervo de Asia 1,2, y los ratones transgénicos que expresan la proteína priónica cérvido (CerTgPrP) 3 son los modelos animales útiles para las especies de cérvidos. Ambas especies son poliestro, lo que permite la cría durante todo el año, y por lo tanto una fuente constante de tejidos y fluidos relacionadas con el embarazo para estudiar mecanismos específicos en la biología cérvido. Los estudios de la leche tienen una amplia gama de aplicaciones que son más simplemente (y barata) realizados en modelos animales que en los seres humanos. Los investigadores podrían investigar la leche y el calostro como fuente potencial de 1) la transmisión de enfermedades infecciosas, 2) las inmunoglobulinas transferidos de madre a hijo en el desarrollo de ciertasllo de la inmunidad pasiva 4 y 3) la lactoferrina, una proteína presente en la leche materna humana implicada en la inmunidad pasiva que los investigadores están tratando actualmente para producir comercialmente 5.

La recolección de una cantidad sustancial de la leche de animales pequeños puede llegar a ser una tarea difícil. Rogers propone un enfoque para recoger la leche de ratas 6, que se utilizó posteriormente en ratones. De Peters y Hovey proponen dos métodos para la recogida de leche, uno utilizando un vacío generado manualmente-producida por un bulbo de pipeta de goma en una pipeta Pasteur, y una segunda que requiere la construcción de una unidad de ordeño, que luego se une a una fuente de vacío (tales como un grifo) para cosechar la leche del ratón 7. Aquí proponemos un método simple y económica para la recogida de leche de ambos ratones y ciervos muntjac Reeves, que requiere equipos de laboratorio sólo disponibles y habilidades técnicas básicas. Nuestro método proporciona un volumen suficiente de leche para variosaplicaciones.

Protocol

1. Protocolo de ordeño Ratón Los métodos descritos en este protocolo fue aprobado por el IACUC. 1. Separación de la presa de Offspring Seleccione la presa para ser ordeñadas. Elija una presa con una camada de 4 o más crías que es 8-12 días post parto para proporcionar leche máxima de recogida, aunque la colección es posible en cualquier punto después del parto hasta 21 días. Separe la presa de su camada por lo menos 2 horas antes del…

Representative Results

Ratón Desde nuestros experimentos, hemos determinado que es posible recoger aproximadamente 100-400 l de leche de un ratón de laboratorio, dependen de diversas variables. Estas variables incluyen: 1) la cantidad de tiempo dedicado a la recolección, 2) la dosis de oxitocina administrada, 3) el número de crías de la presa es actualmente de enfermería y 4) el importe de la post parto vez. Nuestros estudios han demostrado que se obtiene el máximo rendimiento cuando las pr…

Discussion

Ratón

Hay varios factores a tener en cuenta en la recogida de leche de un ratón, incluyendo 1) la cantidad de tiempo dedicado a la recolección, 2) la dosis de oxitocina administrada, 3) el número de crías de la presa es actualmente de enfermería y 4) la cantidad de tiempo que ha pasado desde el parto en el momento de la recolección. A partir de estudios anteriores como guía, nos dispusimos a optimizar las condiciones para la producción de leche.

<p class="jove_c…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

These experiments were funded by the NIH grant #RAI093634A. We express immense gratitude to Jenny Powers, DVM, PhD, for her assistance in muntjac milking.

Materials

Materials-Mouse
Name of Material/Reagent Vendor Catalog Number Comments
Ketamine (KetaVed 100 mg/mL) (dose: 80-100 mg/kg) MWI/Vedco 011075
Xylazine (TranquiVed 100 mg/ml) (dose:5-10 mg/kg) MWI/Vedco NADA 139236
Eye lubricant MWI/Apexa 701013
Oxytocin (2 IU/kg) Vet One 501013
Materials- Muntjac
Name of Material/Reagent Vendor Catalog Number Comments
Midazolam (1-2 mg/kg) Amerisource Bergen Drug Corp 924326 optional: researcher can either use Midazolam on its own or BAM combination as an anesthetic
Butorphanol tartrate (Torbugesic) (0.45 mg/kg) Fort Dodge Animal Health NADA 135-780
Azaperone tartrate (0.25 mg/kg) ZooPharm
Medetomadine HCl (0.07 mg/kg) ZooPharm
Antipamezol hydrochloride (Antisedan) (dose: 0.25 mg/kg) Orion Corporation NADA 141-033
Oxytocin (10 IU/kg) Vet One 501013
Equipment- Mouse
Name of Equipment Vendor Catalog Number Comments
P-200 Pipetman Gilson F123601
200 μL pipette tips Light Labs B-2004-SH
1 ml syringes MWI 005427
27 gauge needles MWI 002031
Equipment- Muntjac
Name of Equipment Vendor Catalog Number Comments
15 ml conical tubes VWR 21008-918
22 gauge needles MWI 873
3 ml luer lock syringes MWI 001377

Referencias

  1. Dueling, S. . Muntiacus reevesi. Animal Diversity Web. , (2004).
  2. Pei, K., Taber, R., O’Gara, B., Wang, Y. Breeding cycle of the Formosan Reeves muntjac (Muntiacus reevesi micrurus) in northern Taiwan, Republic of China. Mammalia. 59 (2), 223-228 (1995).
  3. Browning, S. R. Transmission of prions from mule deer and elk with chronic wasting disease to transgenic mice expressing cervid PrP. J. Virol. 78 (23), 13345-13350 (2004).
  4. Van de perre, P. Transfer of antibody via mother’s milk. Vaccine. 21 (24), 3374-3376 (2003).
  5. Maden, C. Genetically modified mice produce human milk protein. BioNews. , (2009).
  6. Rodgers, C. T. Practical aspects of milk collection in the rat. Lab. Anim. 29 (4), 450-455 (1995).
  7. Depeters, E. J., Hovey, R. C. Methods for collecting milk from mice. J. Mammary Gland Biol. Neoplasia. 14 (4), 397-400 (2009).
  8. Knight, C. H., Maltz, E., Docherty, A. H. Milk yield and composition in mice: effects of litter size and lactation. 84 (1), 127-133 (1986).
  9. Hedrich, H. J., Bullock, G. R. The laboratory mouse. , 735-736 (2004).
  10. Nishimori, K., Young, L. J., Guo, Q., Wang, Z., Insel, T. R., Matzuk, M. M. Oxytocin is required for nursing but is not essential for parturition or reproductive behavior. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 93 (21), 11699-11704 (1996).
  11. Miller, B. F., Osborn, D. A., Lance, W. R., Howze, M. M., Warren, R. J., Miller, K. V. Butorphanol-azaperone-medetomidine for immobilization of captive white-tailed deer. 45 (2), 457-467 (2009).
check_url/es/51007?article_type=t

Play Video

Citar este artículo
Willingham, K., McNulty, E., Anderson, K., Hayes-Klug, J., Nalls, A., Mathiason, C. Milk Collection Methods for Mice and Reeves’ Muntjac Deer. J. Vis. Exp. (89), e51007, doi:10.3791/51007 (2014).

View Video