Summary

Verfolgung der miRNA-Freisetzung in extrazelluläre Vesikel mittels Durchflusszytometrie

Published: October 06, 2023
doi:

Summary

Hier beschreiben wir ein einfaches Protokoll, das eine In-vitro-Bewertung der Häufigkeit von fluoreszenzmarkierten microRNAs ermöglicht, um die Dynamik der microRNA-Verpackung und des Exports in extrazelluläre Vesikel (EVs) zu untersuchen.

Abstract

Extrazelluläre Vesikel (EVs) sind wichtige Vermittler der zellulären Kommunikation, die von einer Vielzahl unterschiedlicher Zellen abgesondert werden. Diese EVs transportieren bioaktive Moleküle, einschließlich Proteine, Lipide und Nukleinsäuren (DNA, mRNAs, microRNAs und andere nicht-kodierende RNAs), von einer Zelle zur anderen, was zu phänotypischen Folgen in den Empfängerzellen führt. Von all den verschiedenen EV-Ladungen haben microRNAs (miRNAs) aufgrund ihrer eindeutigen Dysregulation und Häufigkeit in EVs viel Aufmerksamkeit für ihre Rolle bei der Gestaltung der Mikroumgebung und bei der Bildung von Empfängerzellen auf sich gezogen. Weitere Daten deuten darauf hin, dass viele miRNAs aktiv in EVs geladen werden. Trotz dieser eindeutigen Beweise ist die Forschung über die Dynamik des Exports und die Mechanismen der miRNA-Sortierung begrenzt. Hier stellen wir ein Protokoll zur Verfügung, das die durchflusszytometrische Analyse von EV-miRNA verwendet, um die Dynamik der EV-miRNA-Beladung zu verstehen und die am miRNA-Export beteiligten Maschinen zu identifizieren. In diesem Protokoll werden miRNAs, die in EVs angereichert und aus Spenderzellen abgereichert sind, an ein Fluorophor konjugiert und in die Spenderzellen transfiziert. Die fluoreszenzmarkierten miRNAs werden dann mittels qRT-PCR auf das Laden in EVs und die Depletion aus den Zellen überprüft. Sowohl als Transfektionskontrolle als auch als Werkzeug zum Gating der transfizierten Zellpopulation ist eine fluoreszenzmarkierte zelluläre RNA (zellretiniert und EV-depleted) enthalten. Zellen, die sowohl mit der EV-miRNA als auch mit der zellretinierten miRNA transfiziert wurden, werden über einen Zeitraum von 72 h auf Fluoreszenzsignale untersucht. Die für die EV-miRNAs spezifische Fluoreszenzsignalintensität nimmt im Vergleich zur zellretinierten miRNA rapide ab. Mit diesem einfachen Protokoll konnte man nun die Dynamik der miRNA-Beladung beurteilen und verschiedene Faktoren identifizieren, die für das Laden von miRNAs in Elektrofahrzeuge verantwortlich sind.

Introduction

MicroRNAs (miRNAs) sind eine der am besten charakterisierten Untergruppen kleiner nicht-kodierender RNAs, die für ihre entscheidende Rolle bei der posttranskriptionellen Genregulation bekannt sind. Die Expression und Biogenese der meisten miRNAs folgt einer koordinierten Abfolge von Ereignissen, die mit der Transkription der primären miRNAs (pri-miRNAs) im Zellkern beginnt. Nach der Kernprozessierung durch den Mikroprozessorkomplex zu Vorläufer-miRNAs (Prä-miRNAs) werden die Prä-miRNAs in das Zytoplasma exportiert, wo sie von der RNase-III-Endonuklease weiterverarbeitet werden, die zu 21-23 nukleotidreifen miRNA-Duplexen verarbeitet wird1. Einer der Stränge der prozessierten reifen miRNA bindet an Zielboten-RNAs (mRNAs), was zu einem Abbau oder einer translationalen Repression der Ziele führt2. Basierend auf der pleiotropen Rolle von miRNAs bei der gleichzeitigen Regulation mehrerer verschiedener Ziel-mRNAs ist es nicht verwunderlich, dass die miRNA-Expression streng reguliert ist3. In der Tat trägt eine unangemessene Expression zu verschiedenen Krankheitszuständen bei, insbesondere bei Krebs. Die aberrante Expression von miRNAs stellt nicht nur eine krankheitsspezifische Signatur dar, sondern hat sich auch als Ziel für prognostische und therapeutische Potenziale herauskristallisiert 4,5,6. Zusätzlich zu ihren intrazellulären Rollen haben miRNAs auch nicht-autonome Rollen. Zum Beispiel können miRNAs von Spenderzellen selektiv in EVs verpackt und an Empfängerstellen exportiert werden, wo sie verschiedene phänotypische Reaktionen in der normalen und krankheitsphysiologischen Physiologie hervorrufen 7,8,9.

Trotz eindeutiger Beweise dafür, dass EV-assoziierte miRNAs funktionelle Biomoleküle sind, ist nicht vollständig verstanden, wie bestimmte Untergruppen von miRNAs in Krankheitszuständen wie Krebs fehlreguliert sind und wie die zelluläre Maschinerie miRNAs selektiert und in Evs10,11 sortiert. Angesichts der potenziellen Rolle von EV-miRNAs bei der Modulation der Mikroumgebung ist es von entscheidender Bedeutung, die Mechanismen zu identifizieren, die am Export ausgewählter miRNAs beteiligt sind, um die Rolle von EVs in der interzellulären Kommunikation und der Krankheitspathogenese vollständig aufzuklären. Das Verständnis des Prozesses der miRNA-Freisetzung in EVs wird nicht nur wichtige Mediatoren des miRNA-Exports hervorheben, sondern kann auch Einblicke in potenzielle Therapeutika geben. Um diesen Wissensstand zu erreichen, müssen die Werkzeuge angepasst werden, um diese neuen experimentellen Fragen getreu zu beantworten. In der Tat nehmen Studien, die Elektrofahrzeuge bewerten, aufgrund der Einführung neuer Techniken und Kontrollen exponentiell zu12,13. In Bezug auf die Bewertung der Häufigkeit von exportierten miRNAs in EVs sind die Sequenzierung der nächsten Generation und die quantitative reverse Transkriptase-Polymerase-Kettenreaktion (qRT-PCR) die aktuellen Standardwerkzeuge. Diese Werkzeuge sind zwar nützlich, um die Häufigkeit von miRNAs in Elektrofahrzeugen zu bewerten, aber es gibt Einschränkungen in Bezug auf ihre Sensitivität und Spezifität, und die Verwendung dieser statischen Ansätze zur Bewertung der Dynamik ist unzureichend. Um die Dynamik des miRNA-Exports in Elektrofahrzeuge zu beschreiben, ist eine Kombination spezialisierter Werkzeuge erforderlich. Hier stellen wir ein umfassendes Protokoll vor, das fluoreszenzkonjugierte miRNAs verwendet, um die Dynamik der miRNA-Freisetzung aus Spenderzellen und des Einbaus in EVs zu analysieren. Außerdem gehen wir auf die Vorteile und Grenzen der Methode ein und geben Empfehlungen für den optimalen Einsatz. Die vielseitige Methode, die in dieser Arbeit vorgestellt wird, wird für Forscher nützlich sein, die daran interessiert sind, die miRNA-Freisetzung in EVs und ihre potenzielle Rolle bei zellulärer Kommunikation und Krankheiten zu untersuchen.

Protocol

HINWEIS: Als Voraussetzung für die Verwendung dieser Technik ist die Identifizierung und Validierung selektiv exportierter miRNAs erforderlich. Da verschiedene Zelllinien je nach der in ihre EVs einsortierten miRNA-Fracht variieren, wird empfohlen, die interessierende Zelllinie und die zugehörigen EVs vor der Verwendung auf miRNAs zu untersuchen. Darüber hinaus ist die Lipofectamin-basierte Transfektion einer der kritischen Schritte im Protokoll. Es wird empfohlen, die Transfektionseffizienz vor dem Aufbau des Experim…

Representative Results

Hier nutzen wir die Durchflusszytometrie als leistungsfähiges Werkzeug, um die Freisetzung von miRNA aus den Zellen in EVs zu untersuchen. Unter Verwendung dieses Protokolls ergab die Durchflusszytometrie-Analyse von Zellen, die mit Zell-miRNA und EV-miRNA transfiziert wurden, eine sequentielle Abnahme des Fluoreszenzsignals, das der EV-miRNA entspricht, während das Signal, das der Zell-miRNA entspricht, in den Zellen erhalten blieb. Um sicherzustellen, dass die Fluorophor-Konjugation die miRNA-Freisetzung in EVs nicht…

Discussion

Das neu etablierte Protokoll ermöglicht es, die Kinetik der miRNA-Freisetzung in EVs nach der Transfektion von EV-miRNAs zu erfassen. Der Ansatz ermöglicht die gleichzeitige Analyse mehrerer EV-miRNAs und Zell-miRNAs, abhängig von den Fähigkeiten des Zytometers. Darüber hinaus kann die Durchflusszytometrie zwar wertvolle Einblicke in die Biologie von EV-miRNAs liefern, ist aber nicht ohne Einschränkungen. Einige der Einschränkungen können jedoch überwunden werden, wenn sie in Verbindung mit anderen Techniken fü…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wir danken Dr. Jill Hutchcroft, Direktorin der Flow Cytometry Core Facility an der Purdue University, für die Unterstützung und den Rat. Diese Arbeit wurde von R01CA226259 und R01CA205420 an A.L.K., einem American Lung Association Innovation Award (ANALA2023) IA-1059916 an A.L.K., einem Purdue Shared Resource Facility Grant P30CA023168 und einem Flaggschiff-Fulbright-Promotionsstipendium unterstützt, das vom Department of the State, USA, an S.H.

Materials

1.5 mL microcentrifuge tubes Fisher 05-408-129
15 mL Falcon tubes Corning 352097
6-well clear flat bottom surface treated tissue culture plates Fisher Scientific FB012927
ApogeeMix 25 mL, (PS80/110/500 & Si180/240/300/590/880/1300 nm)  Apogee Flow Systems 1527 To set up gating and parameters for particle detection 
Attune Nxt Flow Cytometer ThermoFisher Scientific N/A For fluorescence analysis in EVs
BD Fortessa Cell Analyzer BD Biosciences N/A For fluorescence analysis in cells 
Cell culture incubator N/A N/A Maintaining temperature of 37 °C and 5% CO2
Cell Culture medium N/A N/A specific for the cell-line of interest
Cell line of interest  N/A N/A Any cell line tested and evaluated for EV and cellular abundance of miRNAs on interest.
Cell-miRNA (miRIDIAN microRNA Mimic Red Transfection Control) Horizon discovery CP-004500-01-05 miRNAs predetermined to be retained by the cell-line of interest and not selectively exported out into EVs
EV-miRNA (Fluorophore conjugated miRNAs) Integrated DNA Technologies (IDT) miRNAs predetermined to be selectively sorted into EVs 
Fluorescence microscope N/A N/A
Gibco Opti-MEM Reduced Serum Medium Fisher Scientific 31-985-070
Hausser Scientific Hemocytometer Fisher 02-671-54
Hyclone 1x PBS (for cell culture) Fisher SH30256FS
Lipofectamine RNAimax Fisher Scientific 13-778-150
miRCURY LNA Reverse Transcriptase Qiagen 339340
miRCURY LNA SYBR Green PCR Qiagen  339347
mirVana RNA Isolation Qiagen AM1561
Nuclease free water Fisher Scientific 4387936
Paraformaldehyde, 4% in PBS Fisher AAJ61899AK
Reagent reservoir nonsterile VWR 89094-684
Thermo ABI QuantiStudio DX Real-Time PCR ThermoFisher Scientific N/A
Trypsin 0.25% Fisher  SH3004201
Ultracentrifuge N/A N/A

Referencias

  1. Kasinski, A. L., Slack, F. J. MicroRNAs en route to the clinic: Progress in validating and targeting microRNAs for cancer therapy. Nature Reviews Cancer. 11 (12), 849-864 (2011).
  2. Treiber, T., Treiber, N., Meister, G. Regulation of microRNA biogenesis and its crosstalk with other cellular pathways. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 20 (1), 5-20 (2019).
  3. Lu, J., et al. MicroRNA expression profiles classify human cancers. Nature. 435 (7043), 834-838 (2005).
  4. Orellana, E., Tenneti, S., Rangasamy, L., Lyle, L., Low, P., Kasinski, A. FolamiRs: Ligand-targeted, vehicle-free delivery of microRNAs for the treatment of cancer. Science Translational Medicine. 9 (401), eaam9327 (2017).
  5. Orellana, E., et al. Enhancing microRNA activity through increased endosomal release mediated by nigericin. Molecular Therapy- Nucleic Acids. 16, 505-518 (2019).
  6. Abdelaal, A. M., et al. A first-in-class fully modified version of miR-34a with outstanding stability, activity, and anti-tumor efficacy. Oncogene. , (2023).
  7. Crescitelli, R., et al. Distinct RNA profiles in subpopulations of extracellular vesicles: Apoptotic bodies, microvesicles and exosomes. Journal of Extracellular Vesicles. 2, (2013).
  8. Hasan, H., et al. Extracellular vesicles released by non-small cell lung cancer cells drive invasion and permeability in non-tumorigenic lung epithelial cells. Scientific Reports. 12 (1), 972 (2022).
  9. Costa-Silva, B., et al. Pancreatic cancer exosomes initiate pre-metastatic niche formation in the liver. Nature Cell Biology. 17 (6), 816-826 (2015).
  10. Villarroya-Beltri, C., et al. Sumoylated hnRNPA2B1 controls the sorting of miRNAs into exosomes through binding to specific motifs. Nature Communications. 4, 2980 (2013).
  11. Cha, D., et al. KRAS-dependent sorting of miRNA to exosomes. elife. 4, e07197 (2015).
  12. Gandham, S., et al. Technologies and standardization in research on extracellular vesicles. Trends in Biotechnology. 38 (10), 1066-1098 (2020).
  13. Théry, C., et al. Minimal information for studies of extracellular vesicles 2018 (MISEV2018): a position statement of the International Society for Extracellular Vesicles and update of the MISEV2014 guidelines. Journal of Extracellular Vesicles. 7 (1), 1535750 (2018).
  14. Kowal, J., et al. Proteomic comparison defines novel markers to characterize heterogeneous populations of extracellular vesicle subtypes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (8), E968-E977 (2016).
  15. Sork, H., et al. Heterogeneity and interplay of the extracellular vesicle small RNA transcriptome and proteome. Scientific Reports. 8 (1), 10813 (2018).
  16. Mittelbrunn, M., et al. Unidirectional transfer of microRNA-loaded exosomes from T cells to antigen-presenting cells. Nature Communications. 2, 282 (2011).
  17. Chiou, N. T., Kageyama, R., Ansel, K. M. Selective export into extracellular vesicles and function of tRNA fragments during T cell activation. Cell Reports. 25 (12), 3356-3370 (2018).
  18. Guzewska, M. M., Witek, K. J., Karnas, E., Rawski, M., Zuba-Surma, E., Kaczmarek, M. M. miR-125b-5p impacts extracellular vesicle biogenesis, trafficking, and EV subpopulation release in the porcine trophoblast by regulating ESCRT-dependent pathway. The FASEB Journal. 37 (8), e23054 (2023).
check_url/es/65759?article_type=t

Play Video

Citar este artículo
Hasan, H., Kasinski, A. L. Tracking miRNA Release into Extracellular Vesicles using Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (200), e65759, doi:10.3791/65759 (2023).

View Video