Summary

التفريق بين الأطفال حديثي الولادة ماوس خلايا الجلد الجذعية المشتقة في مثل جرثومة خلايا<em> في المختبر</em

Published: July 16, 2013
doi:

Summary

في السنوات الأخيرة وقد تجلى تشكيل الخلايا الجرثومية باستخدام أساليب الثقافة في المختبر باستخدام عدة أنواع مختلفة من الخلايا الجذعية الجسدية. هذه المادة سوف يقدم بصريا التفريق بين الأطفال حديثي الولادة الماوس الخلايا الجذعية المشتقة إلى أوائل الخلايا الشبيهة البويضة.

Abstract

دراسة تشكيل خلية جرثومية والتمايز تقليديا صعبة للغاية نظرا لانخفاض أعداد الخلايا ومواقعها عميقة داخل الأجنة النامية. توفر "مغلقة" في النظام القائم على المختبر يمكن أن لا تقدر بثمن لفهمنا لعملية تكوين الأمشاج. وقد تجلى تشكيل البويضة تشبه الخلايا (OLCs) من الخلايا الجذعية الجسدية، معزولة عن الجلد الماوس حديثي الولادة، ويمكن تصور في هذا البروتوكول الفيديو. وOLCs الناتجة عن مختلف علامات متسقة مع البويضات مثل Oct4، فاسا، Bmp15، وScp3. ومع ذلك، فإنها لا تزال غير قادر على الخضوع لنضوج أو الإخصاب بسبب الفشل في إتمام الانقسام الاختزالي. سوف يشكل هذا البروتوكول توفير نظام يمكن أن يكون مفيدا لدراسة تشكيل مرحلة مبكرة وتمايز الخلايا الجرثومية إلى أكثر الأمشاج نضجا. أثناء تمايز في وقت مبكر من عدد من الخلايا معربا عن Oct4 (الخلايا الجرثومية مثل المحتملة) تصل ~ 5٪، ولكن في الوقت الراهن جمعةormation الوقود النووي من OLCs لا يزال غير فعال نسبيا. البروتوكول هو نسبيا على التوالي إلى الأمام على الرغم من رعاية خاصة ينبغي اتخاذها لضمان السكان خلية البداية هو صحي وعلى ممر في وقت مبكر.

Introduction

خلال مرحلة التطور الجنيني المبكر، وتحدث عملية تكوين الأمشاج من خلال سلسلة من المراحل بما في ذلك الخلايا الجرثومية البدائية (المؤتمر الشعبي) تشكيل، والهجرة، وأخيرا الاستعمار من التلال الغدد التناسلية. خلال هذا الوقت الخضوع بغتش الانتشار والتمايز في الأمشاج بصورة متزايدة أكثر نضجا 1. حقيقة أن بغتش ترحيل من قاعدة السقاء في المعى المؤخر الجنين وأخيرا على طول الجدار الظهري استعمار في نهاية المطاف التلال الغدد التناسلية يجعل من الصعب للغاية لدراسة 2. على الرغم من التقدم في هذا المجال، وقد أعاق دراسات تحاول فهم تشكيل المؤتمر الشعبي والتمايز بواسطة عددهم محدود، والموقع، وطبيعة المهاجرة 3،4.

في السنوات الأخيرة وقد ثبت الخلايا الجذعية الجنينية لديها القدرة على تشكيل الخلايا الجرثومية في المختبر 5،6. وبالمثل، كما تم عرض العديد من الخلايا الجذعية الجسدية لديها القدرة على تشكيل الخلايا الجرثومية الفلبسبب زراعة في المختبر 7-11. تنبع مؤخرا الخلايا المعزولة من الجلد الماوس الجدد كانت متباينة في المختبر إلى خلايا تشبه الجرثومية والبويضات مرحلة مبكرة 12. أثناء تمايز مجموعة فرعية من الخلايا الجذعية معربا عن Oct4 زيادة وشكلت هياكل تشبه المجمعات قزع-البويضة. البويضة تشبه الخلايا (OLCs) يمكن التقاطها من الثقافات ومقارنة البويضات الطبيعية. باستخدام هذه الثقافة OLCs طريقة قياس 40-45 ميكرون ويتم الحصول على التي تعبر عن علامات مشابهة لالبويضات مثل Gdf9b، فاسا، وDAZL. حتى الآن على OLCs الناتجة تظل غير قادر حتى تنضج أو يتم إخصابها 12.

على الرغم من أن OLCs تزال عاجزة عن العمل البروتوكول المستخدم لتشكيل هذه OLCs قد لا تزال لديها فائدة باعتبارها مقايسة لدراسة تشكيل وتطوير في وقت سابق من الخلايا الجرثومية مرحلة ضمن مغلقة في نظام المختبر. المنشور الأصلي مناقشة تشكيل OLCs من ذلكالخلايا الجذعية ماتيك استخدام الجلد الخنزيري الجنين كمصدر الخلايا الجذعية 8. التوسع في هذه الدراسة عرضت الخلايا PGC مثل شكلت في وقت مبكر خلال التمايز الناجم عن أن تكون السلائف إلى OLCs وصريحة مثل علامات PGC كما OCT4، فاسا، ستيلا، C-KIT، وDAZL 13. تدعم هذه البيانات إمكانية الاستفادة من هذا النظام لدراسة تشكيل خلية جرثومية والتمايز في المختبر. سيظهر بروتوكول يستخدم لتشكيل OLCs من الجلد الماوس حديثي الولادة في هذه المقالة الفيديو. هذا البروتوكول يوفر في نموذج المختبر لدراسة تطور الخلايا الجرثومية التي يمكن أن توفر وسيلة لتوضيح العوامل الهامة لانتشارها وتمايز.

Protocol

1. وسائل الإعلام إعداد إعداد وسائل الاعلام 2-3 ساعة في وقت مبكر من استخدام ومكان مع قبعة خففت في ثقافة الخلية الحاضنة حيث التجربة ستجرى. وسائل الإعلام المستخدمة في هذا البروتوكول: <li style=";text-align:right…

Representative Results

في البداية الخلايا نعلق على طبق أسفل الثقافة وانتشرت. في 42-72 ساعة في التمايز تشكيل علقت OCT4 الخلايا إيجابية الصغيرة وتتكاثر (الشكل 1A). بعد فترة وجيزة من التصور من هذه الخلايا الأغلبية سوف تختفي والخلايا المرفقة ستشكل المجاميع مستعمرة كثيفة على الجزء السفلي ال…

Discussion

حتى الآن OLCs وظيفية لم يتم تطويرها باستخدام تماما في المختبر فحص. مؤخرا دراسة من قبل هاياشي وآخرون. كان قادرا على إنتاج نسل من PGC تشبه الخلايا شكلت في المختبر ونقل في الجسم الحي لمزيد من التطوير 14. بدءا من خلايا ES أو الخلايا المحفزة التي يسببها ?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

يتم دعم الأشخاص ذوي الإعاقة من قبل المعاهد الكندية لأبحاث الصحة الزمالة (CIHR) ومنحة CIHR لجيرالد M. كيدر في جامعة وسترن. ويود الكاتب أيضا أن نعترف Julang لى فى جامعة جويلف للمساعدة في تطوير بروتوكول المعروضة هنا.

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
DMEM/F12 Invitrogen 12500
B27 Invitrogen 17504044
EGF Invitrogen PHG0311
bFGF Invitrogen PHG0266
ITS Invitrogen 41400-045
BSA Sigma A-6003
Sodium Pyruvate Invitrogen 11360-070
Fetuin Sigma F3385
FSH Sioux Biochemicals 915
LH Sioux Biochemicals 925
M199 Invitrogen 31100-035
24 well plates Nunc 144530
10 cm dishes VWR 25384-088
15 ml tubes BD 352095

References

  1. van den Hurk, R., Zhao, J. Formation of mammalian oocytes and their growth, differentiation and maturation within ovarian follicles. Theriogenology. 63, 1717-1751 (2005).
  2. Molyneaux, K. A., Stallock, J., Schaible, K., Wylie, C. Time-lapse analysis of living mouse germ cell migration. Dev. Biol. 240, 488-498 (2001).
  3. Lawson, K. A., Hage, W. J. Clonal analysis of the origin of primordial germ cells in the mouse. Ciba Found Symp. 182, 68-91 (1994).
  4. Ginsburg, M., Snow, M. H., McLaren, A. Primordial germ cells in the mouse embryo during gastrulation. Development. 110, 521-528 (1990).
  5. Hubner, K., Fuhrmann, G., et al. Derivation of oocytes from mouse embryonic stem cells. Science. 300, 1251-1256 (2003).
  6. Toyooka, Y., Tsunekawa, N., Akasu, R., Noce, T. Embryonic stem cells can form germ cells in vitro. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 100, 11457-11462 (2003).
  7. Wang, L., Cao, J., et al. Oocyte-like Cells Induced from Mouse Spermatogonial Stem Cells. Cell Biosci. 2, 27 (2012).
  8. Dyce, P. W., Wen, L., Li, J. In vitro germline potential of stem cells derived from fetal porcine skin. Nat. Cell Biol. 8, 384-390 (2006).
  9. Danner, S., Kajahn, J., Geismann, C., Klink, E., Kruse, C. Derivation of oocyte-like cells from a clonal pancreatic stem cell line. Mol. Hum. Reprod. 13, 11-20 (2007).
  10. Cheng, X., Chen, S., Yu, X., Zheng, P., Wang, H. BMP15 gene is activated during human amniotic fluid stem cell differentiation into oocyte-like cells. DNA Cell Biol. 31, 1198-1204 (2012).
  11. Song, S. H., Kumar, B. M., et al. Characterization of porcine multipotent stem/stromal cells derived from skin, adipose, and ovarian tissues and their differentiation in vitro into putative oocyte-like cells. Stem Cells Dev. 20, 1359-1370 (2011).
  12. Dyce, P. W., Liu, J., et al. In vitro and in vivo germ line potential of stem cells derived from newborn mouse skin. PLoS One. 6, e20339 (2011).
  13. Linher, K., Dyce, P., Li, J. Primordial germ cell-like cells differentiated in vitro from skin-derived stem cells. PLoS One. 4, e8263 (2009).
  14. Hayashi, K., Ogushi, S., et al. Offspring from Oocytes Derived from in Vitro Primordial Germ Cell-Like Cells in Mice. Science. , (2012).
check_url/fr/50486?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Dyce, P. W. Differentiation of Newborn Mouse Skin Derived Stem Cells into Germ-like Cells In vitro. J. Vis. Exp. (77), e50486, doi:10.3791/50486 (2013).

View Video