Summary

基于 crispr-cas9 的基因组工程, 用于生成 hiv-1 感染与选定的证明病毒整合点的 jurkat 报告模型

Published: November 14, 2018
doi:

Summary

我们提出了一个基因组工程工作流程, 用于生成新的 hiv-1 感染体外模型, 在选定的基因组站点重新构建天际整合。利用 crispr-cas9 介导的、特定地点的基因组操作, 为针对艾滋病毒来源的记者提供了便利。提供了单细胞克隆生成、筛选和正确目标验证的详细协议。

Abstract

人类免疫缺陷病毒 (hiv) 将其非随机 dna 整合到复发地点和基因组热点的宿主细胞基因组中。在这里, 我们提出了一个详细的协议, 以生成新的体外模型的艾滋病毒感染与选定的基因组整合位点使用基于 crispr-cas9 的基因组工程技术。通过这种方法, 可以将选择的报告序列集成到有针对性的、选择的基因组位点中, 反映临床相关的整合位点。

该协议描述了 hiv 衍生记者的设计以及目标站点和 grna 序列的选择。构造了具有同源臂的靶向载体, 并将其转染到 jurkat t 细胞中。记者序列是针对选定的基因组位点的, 由在目标站点上的 cas9 介导的双链断裂促成的同源重组。通过流式细胞仪和 pcr 生成单细胞克隆并筛选靶向事件。然后展开选定的克隆体, 并通过 pcr、测序和南方印迹验证正确的靶向。分析了 crispr-cas9 介导的基因组工程的潜在离目标事件。

通过使用该协议, 可以生成在临床相关整合点模拟艾滋病毒感染的新细胞培养系统。尽管单细胞克隆的生成和正确的报告序列集成的验证是非常耗时的, 但由此产生的克隆线是功能上分析天方集成站点选择的强大工具。

Introduction

感染后将天分 dna 整合到宿主基因组中是人体免疫缺陷病毒 (hiv) 生命周期中的一个关键步骤。整合后, 艾滋病毒持续存在, 在长寿命 cd4+ t 细胞子集 (如记忆 cd4+ t 细胞) 中建立潜伏期。艾滋病毒的整合似乎不是随机的 1,2。通过对急性和慢性感染个体 2, 3,4 整合位点进行测序, 在几项研究中发现了一些具有递归整合天方 dna 的基因组热点,5,6,7,8。有趣的是, 在其中一些整合位点中, 在很大一部分受感染的细胞中检测到相同的位点, 从而导致了在复发位点的整合可能会对克隆扩展 1产生积极影响的想法。

为了提高我们对经常性集成站点意义的认识, 必须探索天方集成站点的选择。然而, 若干技术方面阻碍了研究艾滋病毒整合地点的选择及其后果。广泛使用的用于艾滋病毒潜伏期的细胞培养模型, 如 jlat 细胞系, 并不反映临床相关的反复整合位点9。对初级患者衍生细胞的研究一方面, 可以通过测序来描述整合场地景观, 但不允许进行功能分析。据我们所知, 没有足够的实验模型可用于功能分析选定的临床相关的集成站点。

在这里, 我们提供了一个详细的工作流程, 以生成新的模型的艾滋病毒感染使用基于 crispr-cas9 为基础的基因组工程技术。本文描述的工作流程可用于生成 t 细胞衍生的病毒感染模型的记者细胞系, 在选定的集成站点携带基因整合的天方记者。因此, 它们是新的工具, 探讨天长整合站点如何影响艾滋病毒生物学, 以及天长如何应对不同的治疗策略 (例如,延迟反转剂的诱导性)。我们的方法利用了基于 crispr-cas9 的基因组工程的优势, 在目标位置上通过同源重组促进了记者序列的整合。根据对艾滋病毒感染者的研究和为 cas9 介导的基因组工程提供合适的 pam 图案的情况, 选择了整合的目标地点。

在我们的示范性结果中, 我们重点研究了 bach2 基因位点, 它编码为 btb 和 cnc 同源转录调节器2。在接受抗逆转录病毒治疗的慢性艾滋病毒感染者中, bach2 是显示艾滋病毒-1 综合序列3678、10的丰富情况之一。我们选择了一个最低限度的艾滋病毒衍生的记者组成的 hiv-1-源长终端重复 (ltr), tdTomato 编码序列, 和牛生长激素 (bgh) 多腺苷信号 (pa), 我们已经针对两个特定的地点在 bovine 内含子5。该协议针对 jurkat 细胞进行了优化, jurkat 细胞是人类 cd4+ t 细胞衍生的悬浮细胞系, 但可以使用其他细胞系, 该协议也相应调整。我们提出了一个详细的工作流程, 选择目标地点, 构建目标载体与同源武器, crispr-cas9 介导的目标的记者进入选定的基因组站点, 生成和选择克隆线, 并进行综合验证新生成的、有针对性的记者细胞系。

Protocol

1. 基因组工程的目标策略与定位向量 (tv) 设计 请注意:基因组工程的第一步是选择和生成必要的工具, 以实现 crispr-cas9 介导的目标。在这一步之前, 应选择基因组整合位点, 选择用于定位的细胞类型, 以及设计一个 hiv 衍生的整合记者。该协议描述了针对一个 hiv-ltr _ tdTomato _ bgh-pa 最小记者到 jurkat 目标细胞的目标。基于 crispr-cas9 的克隆线定位、生成、筛选和验证的工…

Representative Results

在这个具有代表性的实验中, 我们选择了一个最小的 hiv-1 衍生的记者, 包括一个 ltr, ttomato 编码序列, 和多 a 信号序列到两个位点内含子5的bach2 基因17。根据在对感染艾滋病毒的患者 2,4, 5,6的原代 t 细胞进行不同研究时发现的已公布的复发整合位点的接近度, 选择了靶向定位位?…

Discussion

在这里, 我们描述了一个协议, 以生成 hiv-1 衍生 jurkat 记者模型与选择的天方集成站点应用基于 crispr-cas9 的基因组工程。

在规划阶段, 议定书的几个要点需要认真注意。首先, 应仔细选择要针对的位点, 因为某些位点可能比其他位点更容易瞄准 (例如,取决于区域的染色质状态和目标序列本身)。重复序列很难克隆到靶向载体中, 在基因组中通常不是唯一的。用 crispr-cas9 系?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

我们感谢 britta wweeloh 和 bettina abel 的技术援助。我们还感谢 arne düsedau 和 jara hennesen (heinrich pette 研究所流式细胞术技术平台) 的技术支持。

Materials

pX330-U6-Chimeric_BB-cBh-hSpCas9 Addgene 42230 vector for expression of SpCas9 and gRNA
pMK GeneArt mammalian expression vector for cloning
cDNA3.1 Invitrogen V79020 mammalian expression vector for cloning
BbsI New England Biolabs R0539S restriction enzyme
NEBuilder Hifi DNA Assembly Cloning Kit New England Biolabs E5520S Assembly cloning kit used for target vector generation
TaqPlus Precision PCR System Agilent Technologies 600210 DNA polymerase with proofreading activity used for amplification of homology arms (step 1.2.2.2), verification of integration site and reporter sequence (step 3.3.3 and 3.3.5), generation of genomic probe for Southern blot (step 3.4.1.5) and analysis of off-target events (step 3.5.4)
96-well tissue culture plate (round-bottom) TPP 92097 tissue culture plates for dilution plating
Phusion High-Fidelity DNA polymerase New England Biolabs M0530 L DNA polymerase used for detection of targeting events (step 2.4.2) and generation ofreporter-specific probe for Southern blot (step 3.4.1.4)
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma-Aldrich D9170 dimethyl sulfoxide as PCR additive
Magnesium Chloride (MgCl2) Solution New England Biolabs B9021S MgCl2 solution as PCR additive
Deoxynucleotide (dNTP) Solution Mix New England Biolabs N0447S dNTP mixture with 10 mM of each nt for PCR reactions
5PRIME HotMasterMix 5PRIME 2200400 ready-to-use PCR mix used for screening PCR (step 3.2.11)
QIAamp DNA blood mini kit Qiagen 51106 DNA isolation and purification kit
QIAquick PCR Purification Kit Qiagen 28106 PCR Purification Kit
RPMI 1640 without glutamine Lonza BE12-167F cell culture medium
Fetal Bovine Serum South Africa Charge PAN Biotech P123002 cell culture medium supplement
L-glutamine Biochrom K 0282 cell culture medium supplement
Penicillin/Streptomycin 10.000 U/ml / 10.000 µg/ml Biochrom A 2212 cell culture medium supplement
Gibco Opti-MEM Reduced Serum Media Thermo Fisher Scientific 31985062 cell culture medium with reduced serum concentration optimized for transfection
TransIT-Jurkat Mirus Bio MIR2125 transfection reagent
phorbol 12-myristate 13-acetate Sigma-Aldrich P8139-1MG cell culture reagent
Ionomycin Sigma-Aldrich I0634-1MG cell culture reagent
Syringe-driven filter unit, PES membrane, 0,22 µm Millex SLGP033RB filter unit for sterile filtration
Heracell 150i incubator Thermo Fisher Scientific 51026280 tissue culture incubator
Amershan Hybond-N+ GE Healthcare RPN1520B positively charged nylon membrane for DNA and RNA blotting
Stratalinker 1800 Stratagene 400072 UV crosslinker
High Prime Roche 11585592001 kit for labeling of DNA with radioactive dCTP using random oligonucleotides as primers
illustra ProbeQuant G-50 Micro Columns GE Healthcare 28-9034-08 chromatography spin-columns for purification of labeled DNA

Riferimenti

  1. Hughes, S. H., Coffin, J. M. What Integration Sites Tell Us about HIV Persistence. Cell Host and Microbe. 19 (5), 588-598 (2016).
  2. Marini, B., Kertesz-Farkas, A., et al. Nuclear architecture dictates HIV-1 integration site selection. Nature. 521 (7551), 227-231 (2015).
  3. Cesana, D., Santoni de Sio, F. R., et al. HIV-1-mediated insertional activation of STAT5B and BACH2 trigger viral reservoir in T regulatory cells. Nature Communications. 8 (1), 498 (2017).
  4. Cohn, L. B., Silva, I. T., et al. HIV-1 Integration Landscape during Latent and Active Infection. Cell. 160 (3), 420-432 (2015).
  5. Han, Y., Lassen, K., et al. Resting CD4+ T cells from human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1)-infected individuals carry integrated HIV-1 genomes within actively transcribed host genes. Journal of Virology. 78 (12), 6122-6133 (2004).
  6. Ikeda, T., Shibata, J., Yoshimura, K., Koito, A., Matsushita, S. Recurrent HIV-1 integration at the BACH2 locus in resting CD4+ T cell populations during effective highly active antiretroviral therapy. The Journal of Infectious Diseases. 195 (5), 716-725 (2007).
  7. Wagner, T. A., Mclaughlin, S., et al. Proliferation of cells with HIV integrated into cancer genes contributes to persistent infection. Science. 345 (6196), 570-573 (2014).
  8. Maldarelli, F., Wu, X., et al. Specific HIV integration sites are linked to clonal expansion and persistence of infected cells. Science. 345 (6193), 179-183 (2014).
  9. Jordan, A., Bisgrove, D., Verdin, E. HIV reproducibly establishes a latent infection after acute infection of T cells in vitro. The EMBO Journal. 22 (8), 1868-1877 (2003).
  10. Mack, K. D., Jin, X., et al. HIV insertions within and proximal to host cell genes are a common finding in tissues containing high levels of HIV DNA and macrophage-associated p24 antigen expression. Journal of Acquired Immune Deficiency Syndromes. 33 (3), 308-320 (2003).
  11. Byrne, S. M., Ortiz, L., Mali, P., Aach, J., Church, G. M. Multi-kilobase homozygous targeted gene replacement in human induced pluripotent stem cells. Nucleic Acids Research. 43 (3), 1-12 (2014).
  12. CRISPR Genome Engineering Toolbox: Target Sequence Cloning Protocol. Addgene website Available from: https://www.addgene.org/static/cms/filer_public/e6/5a/e65a9ef8-c8ac-4f88-98da-3b7d7960394c/zhang-lab-general-cloning-protocol.pdf (2013)
  13. Gibson Assembly Protocol. Addgene website Available from: https://www.addgene.org/protocols/gibson-assembly/ (2009)
  14. Addgene Plasmid Cloning by PCR. Addgene website Available from: https://www.addgene.org/protocols/pcr-cloning/ (2014)
  15. Addgene Plasmid Cloning by Restriction Enzyme Digest (aka Subcloning). Addgene website Available from: https://www.addgene.org/protocols/subcloning/ (2013)
  16. Stemmer, M., Thumberger, T., Del Sol Keyer, M., Wittbrodt, J., Mateo, J. L. CCTop: An intuitive, flexible and reliable CRISPR-Cas9 target prediction tool. Public Library of Science (PLoS) ONE. 10 (4), (2015).
  17. Lange, U. C., Bialek, J. K., Walther, T., Hauber, J. Pinpointing recurrent proviral integration sites in new models for latent HIV-1 infection. Virus Research. 249, (2018).
  18. Bialek, J. K., Dunay, G. A., et al. Targeted HIV-1 Latency Reversal Using CRISPR-Cas9-Derived Transcriptional Activator Systems. PloS ONE. 11 (6), e0158294 (2016).
  19. Lee, C. M., Davis, T. H., Bao, G. Examination of CRISPR-Cas9 design tools and the effect of target site accessibility on Cas9 activity. Experimental Physiology. 103 (4), 456-460 (2018).
  20. Jensen, K. T., Fløe, L., et al. Chromatin accessibility and guide sequence secondary structure affect CRISPR-Cas9 gene editing efficiency. FEBS Letters. 591 (13), 1892-1901 (2017).
  21. Simonetti, F. R., Sobolewski, M. D., et al. Clonally expanded CD4 + T cells can produce infectious HIV-1 in vivo. Proceedings of the National Academy of Sciences. 113 (7), 1883-1888 (2016).
  22. Chen, H. C., Martinez, J. P., Zorita, E., Meyerhans, A., Filion, G. J. Position effects influence HIV latency reversal. Nature Structural and Molecular Biology. 24 (1), 47-54 (2017).

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Citazione di questo articolo
Bialek, J. K., Walther, T., Hauber, J., Lange, U. C. CRISPR-Cas9-based Genome Engineering to Generate Jurkat Reporter Models for HIV-1 Infection with Selected Proviral Integration Sites. J. Vis. Exp. (141), e58572, doi:10.3791/58572 (2018).

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