Summary

Membraanexplantatie van cavia's met rond venster voor ex vivo-onderzoek

Published: February 23, 2024
doi:

Summary

Dit protocol schetst een methode voor de explantatie van het ronde venstermembraan uit slaapbeenderen van cavia’s, wat een waardevolle bron is voor ex vivo-studies .

Abstract

Efficiënte en minimaal invasieve medicijnafgifte aan het binnenoor is een grote uitdaging. Het ronde raammembraan (RWM), een van de weinige toegangspunten tot het binnenoor, is een essentieel aandachtspunt van onderzoek geworden. Vanwege de complexiteit van het isoleren van de RWM blijft ons begrip van de farmacokinetiek ervan echter beperkt. De RWM bestaat uit drie verschillende lagen: het buitenste epitheel, de middelste bindweefsellaag en de binnenste epitheellaag, die elk potentieel unieke afgifte-eigenschappen hebben.

De huidige modellen voor het onderzoeken van transport over de RWM maken gebruik van in vivo diermodellen of ex vivo RWM-modellen die gebaseerd zijn op celculturen of membraanfragmenten. Cavia’s dienen als een gevalideerd preklinisch model voor het onderzoek naar de farmacokinetiek van geneesmiddelen in het binnenoor en zijn een belangrijk diermodel voor de translationele ontwikkeling van toedieningsvoertuigen aan het slakkenhuis. In deze studie beschrijven we een aanpak voor explantatie van een cavia RWM met omringend cochleair bot voor benchtop medicijnafgifte-experimenten. Deze methode maakt het mogelijk om de oorspronkelijke RWM-architectuur te behouden en kan een realistischere weergave geven van transportbarrières dan de huidige benchtop-modellen.

Introduction

Er zijn nieuwe klassen van therapieën ontstaan voor de behandeling van perceptief gehoorverlies. De vertaling van deze therapieën naar klinische populaties wordt beperkt door veilige en effectieve transportroutes naar het binnenoor. De huidige methoden voor in vivo toediening in dierstudies zijn gebaseerd op fenestratie in het binnenoor of diffusie door het ronde venstermembraan (RWM), een niet-botvormige barrière die de middenoorruimte scheidt van het slakkenhuis.

Chirurgische fenestratie en micro-injectie in het binnenoor zijn beide invasief en kunnen risico’s opleveren voor de resterende binnenoorfunctie2. Daarom is de RWM een belangrijke route voor lokale medicijnafgifte, en cavia’s zijn het primaire preklinische diermodel dat wordt gebruikt om de lokale farmacokinetiek van geneesmiddelen in de RWM en in het binnenoor te bestuderen voor farmaceutische ontwikkeling 3,4. Hoewel dunner dan de menselijke RWM, deelt de cavia RWM een identieke drielaagse structuur. Het heeft een diameter van ongeveer 1 mm, is 15-25 μm dik en bestaat uit twee epitheelcellagen die een bindweefsellaag5 omklemmen. De epitheellaag die naar het middenoor is gericht, is dicht opeengepakt en verbonden via krappe verbindingen, terwijl de laag die naar het binnenoor en de scala tympani is gericht, een lossere architectuur heeft en geen significante intercellulaire verklevingen heeft.

Huidige preklinische studies naar de permeabiliteit van geneesmiddelen bij de cavia RWM zijn gebaseerd op in-vivo-injecties in het middenoor, gevolgd door de bemonstering van het perilymfevocht in het binnenoor, waardoor de specifieke studie van RWM-transport niet mogelijk is 6,7. Fragmenten van RWM-explantaten zijn gebruikt in preklinische studies, maar vanwege hun kwetsbaarheid en kleine formaat zijn ze niet geschikt voor systematisch, microfluïdisch onderzoek van het transport van geneesmiddelen en voertuigen waarvoor een waterdichte afsluiting over de RWM2 nodig is. Andere groepen hebben in vitro modellen met gekweekte menselijke epitheelcellen gebruikt om de RWM 8,9,10 te benaderen. De meeste van deze constructen richten zich echter uitsluitend op de buitenste epitheellaag en leggen de complexiteit van de oorspronkelijke weefselarchitectuur niet vast. Voor een gedetailleerder inzicht in de transportmechanismen in het RWM zijn gerichte, ex vivo studies nodig.

In deze studie demonstreren we de explantatie van een RWM van een cavia met omringende benige ondersteuning om de integriteit van het membraan te behouden en illustreren we hun gebruik in een experimenteel paradigma dat is ontworpen voor de specifieke studie van het RWM-transport van voertuigen voor medicijnafgifte.

Protocol

Alle dierproeven zijn goedgekeurd door de Institutional Animal Care and Use Committee (GP18M226). Hartley albino cavia’s (zowel mannetje als vrouwtje, met een gewicht van 500-700 g) werden gebruikt in de huidige studie. 1. Opzet en voorbereiding van de procedure Steriliseer alle instrumenten met ethyleenoxide voordat u met het experiment begint. Euthanaseer de dieren volgens het institutioneel goedgekeurde protocol.OPMERKING: In de huidige studie werd e…

Representative Results

Zoals aangetoond in figuur 3A, maakt deze methode het mogelijk om het intacte ronde venstermembraan van cavia’s met een omringende ring van stijf bot te explanteren. De RWM moet volledig verbonden zijn met de benige annulus in de omtrek. Er mogen geen fracturen van het cochleaire bot worden gewaardeerd. In vergelijking met menselijke exemplaren met ronde vensters heeft cavia RWM geen bovenliggend pseudomembraan. Bovendien is er, in tegenstelling tot mensen, een benige brug tussen de crura va…

Discussion

Bij lokale medicijnafgifte aan het oor is de RWM de primaire doorgangsroute voor therapieën om het binnenoor te bereiken. Een nauwkeurig en betrouwbaar benchtop-model is nodig om transportmechanismen en permeabiliteit tussen nieuwe leveringsvoertuigen en voor de ontwikkeling van geneesmiddelen beter te begrijpen. In deze studie tonen we aan dat RWM-explantatie bij cavia’s een haalbare en betrouwbare procedure is om systematisch onderzoek naar geneesmiddel-membraaninteracties mogelijk te maken. Lundman et al. en Kelso et…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd gedeeltelijk ondersteund door de NIDCD-subsidies nr. 1K08DC020780 en 5T32DC000027-33, en het Rubenstein Hearing Research Fund.

Materials

1 mm Diamond Ball Drill Bit Anspach 1SD-G1
2 mm Diamond Ball Drill Bit Anspach 2SD-G1
6 mm Diamond Ball Drill Bit Anspach 6D-G1
ANSPACH EMAX 2 Plus System Anspach EMAX2PLUS Any bone cutting drilling system will work
BD Eclipse Needle 27 G x 1/2 in. with detachable 1 mL BD Luer-Lok Syringe Becton, Dickinson, and Co.  382903057894 Any 27-28 G needle
Gorilla Epoxy Gorilla 4200101
Kwik-CAST World Precision Instruments KWIK-CAST

Riferimenti

  1. Duan, M. I., Zhi-qiang, C. Permeability of round window membrane and its role for drug delivery: our own findings and literature review. J Otol. 4 (1), 34-43 (2009).
  2. Kelso, C. M., et al. Microperforations significantly enhance diffusion across round window membrane. Otol Neurotol. 36 (4), 694-700 (2015).
  3. Salt, A. N., Plontke, S. K. Pharmacokinetic principles in the inner ear: Influence of drug properties on intratympanic applications. Hear Res. 368, 28-40 (2018).
  4. Szeto, B., et al. Inner ear delivery: Challenges and opportunities. Laryngoscope Investig Otolaryngol. 5 (1), 122-131 (2020).
  5. Carpenter, A. M., Muchow, D., Goycoolea, M. V. Ultrastructural studies of the human round window membrane. Arch Otolaryngol Head Neck Surg. 115 (5), 585-590 (1989).
  6. Forouzandeh, F., Borkholder, D. A. Microtechnologies for inner ear drug delivery. Curr Opin Otolaryngol Head Neck Surg. 28 (5), 323-328 (2020).
  7. Leong, S., et al. Microneedles facilitate small-volume intracochlear delivery without physiologic injury in guinea pigs. Otol Neurotol. 44 (5), 513-519 (2023).
  8. Singh, R., Birru, B., Veit, J. G. S., Arrigali, E. M., Serban, M. A. Development and characterization of an in vitro round window membrane model for drug permeability evaluations. Pharmaceuticals (Basel). 15 (9), 1105 (2022).
  9. Du, X., et al. Magnetic targeted delivery of dexamethasone acetate across the round window membrane in guinea pigs. Otol Neurotol. 34 (1), 41-47 (2013).
  10. Kopke, R. D., et al. Magnetic nanoparticles: inner ear targeted molecule delivery and middle ear implant. Audiol Neurootol. 11 (2), 123-133 (2006).
  11. AVMA. AVMA Guidelines for the Euthanasia of Animals: 2020 Edition. AVMA. , (2020).
  12. Goksu, N., et al. Anatomy of the guinea pig temporal bone. Ann Otolaryngol. 101 (8), 699-704 (1992).
  13. Wysocki, J. Topographical anatomy of the guinea pig temporal bone. Hear Res. 199 (1), 103-110 (2005).
  14. Veit, J. G. S., et al. An evaluation of the drug permeability properties of human cadaveric in situ tympanic and round window membranes. Pharmaceuticals (Basel). 15 (9), 1037 (2022).
  15. Kansara, V., Mitra, A. K. Evaluation of an ex vivo model implication for carrier-mediated retinal drug delivery). Curr Eye Res. 31 (5), 415-426 (2006).
  16. Lundman, L., Bagger-Sjöbäck, D., Holmquist, L., Juhn, S. Round window membrane permeability. An in vitro model. Acta Otolaryngol Suppl. 457, 73-77 (1989).
  17. Moatti, A., et al. Assessment of drug permeability through an ex vivo porcine round window membrane model. iScience. 26 (6), 106789 (2023).
  18. Lin, Y. C., et al. Ultrasound microbubble-facilitated inner ear delivery of gold nanoparticles involves transient disruption of the tight junction barrier in the round window membrane. Front Pharmacol. 12, 689032 (2021).
  19. Jeong, S. H., et al. Junctional modulation of round window membrane enhances dexamethasone uptake into the inner ear and recovery after NIHL. Int J Mol Sci. 22 (18), 10061 (2021).
check_url/it/65816?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Shen, S. A., Goyal, M. M., Lane, K., Lehar, M., Sun, D. Q. Guinea Pig Round Window Membrane Explantation for Ex Vivo Studies. J. Vis. Exp. (204), e65816, doi:10.3791/65816 (2024).

View Video