Summary

पैदा की, सहज, और लघु Synaptic गतिविधियों के दौरान एफएम रंगों का उपयोग synaptic पुटिका रीसाइक्लिंग के परीक्षा

Published: March 31, 2014
doi:

Summary

हम कार्यात्मक तंत्रिका टर्मिनलों में छवि synaptic पुटिका रीसाइक्लिंग के लिए styryl एफएम रंगों के उपयोग का वर्णन. इस प्रोटोकॉल न केवल पैदा करने के लिए, लेकिन यह भी सहज और लघु synaptic गतिविधियों लागू किया जा सकता है. प्रोटोकॉल को प्रभावी ढंग से मूल्यांकन किया जा सकता है कि synaptic घटनाओं की विविधता बढ़ती है.

Abstract

कार्यात्मक तंत्रिका टर्मिनलों में synaptic vesicles एक्सोसाइटोसिस और endocytosis गुजरना. इस synaptic पुटिका रीसाइक्लिंग प्रभावी ढंग से झिल्ली कारोबार प्रकट जो styryl एफएम रंजक, उपयोग विश्लेषण किया जा सकता है. एफएम रंगों के उपयोग के लिए पारंपरिक प्रोटोकॉल उत्तेजित (पैदा) synaptic गतिविधि निम्नलिखित न्यूरॉन्स का विश्लेषण करने के लिए डिजाइन किए गए थे. हाल ही में, प्रोटोकॉल ऐसे सहज या लघु synaptic घटनाओं के रूप में कमजोर synaptic गतिविधियों, के साथ कि एफएम संकेतों का विश्लेषण करने के लिए उपलब्ध हो गए हैं. एफएम संकेतों में इन छोटे परिवर्तन का विश्लेषण इमेजिंग प्रणाली तीव्रता में छोटे परिवर्तन का पता लगाने के लिए पर्याप्त रूप से संवेदनशील है, अभी तक बड़े आयाम की कि artifactual परिवर्तन दबा रहे हैं कि आवश्यकता है. यहाँ हम पैदा की सहज, और लघु synaptic गतिविधियों, और एक उदाहरण के रूप में संवर्धित hippocampal न्यूरॉन्स उपयोग करने के लिए लागू किया जा सकता है कि एक प्रोटोकॉल का वर्णन. यह एक महत्वपूर्ण है के रूप में इस प्रोटोकॉल, एफएम रंगों की photobleaching की दर का आकलन करने का एक साधन शामिलतीव्रता में छोटे परिवर्तन जब इमेजिंग कलाकृतियों का स्रोत.

Introduction

synaptic vesicles के कार्यक्षमता synaptic प्रसारण का एक महत्वपूर्ण निर्धारक है. वे presynaptic प्लाज्मा झिल्ली (एक्सोसाइटोसिस) के साथ फ्यूज जब इन vesicles न्यूरोट्रांसमीटर जारी है, और वे प्लाज्मा झिल्ली (endocytosis) से पुनर्जीवित और neurotransmitter के साथ पुनः लोड होने के बाद रिहाई का एक और चक्र के लिए तैयार हो जाते हैं. की गतिशीलता और synaptic पुटिका रीसाइक्लिंग अंतर्निहित तंत्र में अनुसंधान काफी styryl एफएम रंजक 1 के लागू होने से त्वरित किया गया है. सकारात्मक (चित्रा 1 ए, चित्रा 1 बी में FM1-43 के stereoview में कई रंगों) हाइड्रोफिलिक सिर समूहों और हाइड्रोफोबिक पूंछ का आरोप लगाया है, जो इन amphipathic अणु, reversibly भरिये और उन्हें permeating बिना लिपिड झिल्ली बाहर कर सकते हैं. एफएम रंगों के समूह कि वे उत्सर्जन प्रकाश की सीमा को प्रभावित है कि इसी तरह की सुविधाओं को साझा करें. उदाहरण के लिए, FM2-10, FM1-43, और FM1-84 दो चक्रीय यौगिकों और थानेदार के बीच एक डबल बांड हैडब्ल्यू हरी उत्सर्जन. उन दोनों के बीच का अंतर अपने hydrophobicity निर्धारित करता है और इसलिए झिल्ली से बाहर निकलने की दर (departitioning) जो हाइड्रोफोबिक पूंछ की लंबाई है. FM5 -95 और FM4-64 के मामलों में, तीन डबल बांड चक्रीय यौगिकों लिंक, और वे लाल उत्सर्जन दिखा. इन रंगों को अपने हाइड्रोफिलिक भागों के संबंध में मतभेद है. वे कारण हाइड्रोफिलिक पर्यावरण के लिए हाइड्रोफोबिक पर्यावरण सापेक्ष में क्वांटम उपज में वृद्धि करने के लिए, जैविक झिल्ली में डाला जाता है जब सभी एफएम रंगों में, प्रतिदीप्ति तीव्रता बढ़ जाती है. इस प्रकार एफएम तीव्रता में परिवर्तन झिल्ली कारोबार में परिवर्तन का प्रतिनिधित्व करते हैं. अलग अलग रंग (उत्सर्जन स्पेक्ट्रा) और hydrophobicities एफएम synaptic पुटिका रीसाइक्लिंग में एक बहुमुखी अनुसंधान उपकरण रंजक बनाने.

इन सुविधाओं के आधार पर, एफएम रंगों ज्यादातर synaptic पुटिका रीसाइक्लिंग विश्लेषण करते समय निम्न योजना (चित्रा 2) के अनुसार किया जाता है. न्यूरॉनवे endocytosis (धुंधला) के माध्यम से फार्म के रूप में है synaptic vesicles (SVs) में शुरू किए जाने वाले इसे सक्रिय करने, एफएम डाई युक्त एक कोशिकी समाधान में स्नान कर रहे हैं. डाई तो एक डाई मुक्त कोशिकी समाधान को लागू करने से बाहर धोया जाता है, इस यानी केवल उन सक्रिय रूप से दौर से गुजर endocytosis डाई (चित्रा 2 नीचे) के साथ लोड कर रहे हैं कि synaptic vesicles के एक क्लस्टर में शामिल होंगे कार्यात्मक तंत्रिका टर्मिनलों, पता चलता है. इसके बाद एक्सोसाइटोसिस बाह्य अंतरिक्ष के लिए एफएम डाई की हानि और प्रतिदीप्ति की एक सहवर्ती नुकसान होता है (destaining; कारण एक हाइड्रोफिलिक पर्यावरण के लिए departitioning और दूर एक्सोसाइटोसिस की साइट से प्रसार करने के लिए दोनों). इसलिए एफएम प्रतिदीप्ति तीव्रता में परिवर्तन synaptic पुटिका Exo और endocytosis के संकेतक हैं.

एफएम रंजक विभिन्न जीवों और तैयारी 2,3 में synaptic vesicles दाग ​​और destain के लिए इस्तेमाल किया गया है. उदाहरण स्तनधारी neur शामिलonal संस्कृतियों 4-9, स्तनधारी मस्तिष्क स्लाइसें 10,11, neuromuscular जंक्शनों 12,13, रेटिना द्विध्रुवी न्यूरॉन्स 14,15, और कोक्लीअ 16 के बालों की कोशिकाओं.

आमतौर पर इस तरह के प्रयोगों में, धुंधला और destaining दोनों बड़े पैमाने पर न्यूरॉन्स (पैदा की गतिविधि) उत्तेजक से शुरू हो रहे. एक बाह्य प्रेरणा (सहज और लघु synaptic गतिविधि) 9,17-19 के अभाव में पुनर्चक्रण के रूप में हाल ही में, हालांकि, कमजोर उत्तेजना के जवाब में synaptic पुटिका रीसाइक्लिंग भी, विश्लेषण किया गया है. सहज और लघु synaptic गतिविधियों कार्रवाई क्षमता का सहज फायरिंग (चित्रा 3) से जुड़े पूर्व के साथ, बाहरी उत्तेजनाओं के अभाव में होते हैं कि उन के रूप में परिभाषित कर रहे हैं. इन कमजोर synaptic गतिविधियों व्यापक उत्तेजना से चालू होने वाले लोगों की तुलना में एफएम संकेतों में छोटे परिवर्तन के साथ जुड़े रहे हैं. माप की आवश्यकता है कि एफएम fluoresc में परिवर्तनखिलाडि़यों तीव्रता सही synaptic पुटिका एक्सोसाइटोसिस या endocytosis लेकिन तीव्रता में artifactual नहीं परिवर्तन को प्रतिबिंबित. विरूपण साक्ष्य का एक कारण एफएम रंगों से प्लाज्मा झिल्ली की अविशिष्ट धुंधला की उपस्थिति है. इस घटक के क्रमिक वार्शआउट ग़लती synaptic गतिविधियों के लिए जिम्मेदार माना जा जाएगा जो मापा प्रतिदीप्ति तीव्रता में एक क्रमिक परिवर्तन हो जाएगा. यह पहलू (प्रोटोकॉल देखें) उचित तरीके से कम किया जा सकता है. विरूपण साक्ष्य की सबसे उल्लेखनीय कारण synaptic vesicles भीतर बनाए रखा एफएम डाई की photobleaching है. एफएम तीव्रता में photobleaching से संबंधित परिवर्तन मापा जाता है कि जैविक (synaptic) परिवर्तन की तुलना में छोटा होना चाहिए. संवेदनशील कैमरों की हाल ही में विकास, जैसे इलेक्ट्रॉन गुणा प्रभारी युग्मित डिवाइस (EMCCD) कैमरा, यह संभव जोखिम समय छोटा और फ्लोरोफोरे उत्तेजित करने के लिए प्रयोग किया जाता प्रकाश की तीव्रता को कमजोर करके photobleaching कम करने के लिए बनाता है. विरूपण साक्ष्य का एक अन्य कारण एक बहाव मैं हैn प्रकाश माइक्रोस्कोप से ध्यान केंद्रित स्तर. एक इमेजिंग सत्र के दौरान ध्यान केंद्रित बहाव यांत्रिक या थर्मल प्रभाव की वजह से हो सकता है, और ग़लती से मापा प्रतिदीप्ति तीव्रता में एक परिवर्तन को बढ़ावा मिलेगा.

यहाँ हम यह संभव विशेष रूप से, लघु synaptic गतिविधि, भी कमजोर या कोई उत्तेजना के संदर्भ में synaptic पुटिका रीसाइक्लिंग का विश्लेषण करने के लिए एफएम रंगों का उपयोग करने के लिए बनाते हैं कि प्रोटोकॉल और उपकरणों का वर्णन. हम सभ्य कृंतक hippocampal न्यूरॉन्स का उपयोग कर, और destaining चरण इमेजिंग, पैदा की और सहज synaptic घटनाओं के दौरान vesicles के धुंधला हो जाना और destaining के उदाहरण दिखाते हैं. हम यह भी कारण synaptic गतिविधियों के लिए किसी भी एफएम डाई नुकसान के अभाव में, एफएम डाई photobleaching की डिग्री का मूल्यांकन करने के लिए कैसे प्रदर्शित करता है.

Protocol

1. स्तनधारी मस्तिष्क से न्यूरॉन्स के प्राथमिक संस्कृति इस अध्ययन में प्रदर्शन सभी पशु प्रक्रियाओं आयोवा विश्वविद्यालय की संस्थागत पशु की देखभाल और उपयोग समिति द्वारा अनुमोदित कर रहे हैं. </p…

Representative Results

एक उदाहरण के रूप में, हम synaptic vesicles के destaining समय कोर्स (चित्रा 4) के लिए प्रतिनिधि परिणाम दिखाते हैं. संवर्धित hippocampal न्यूरॉन्स सहज synaptic गतिविधि (2.3 कदम) का उपयोग FM4-64 के साथ दाग और डाई मुक्त समाधान (2 समाधान rinsing) के…

Discussion

हम सहज और लघु synaptic गतिविधि पैदा की, और destaining चरण के दौरान इमेजिंग के लिए के जवाब में synaptic vesicles धुंधला और destaining के लिए प्रोटोकॉल का वर्णन किया है. मौजूदा प्रोटोकॉल के अलावा, हम लघु synaptic गतिविधि पर आधारित एफएम destaining दे…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

लेखक इस कार्य के निष्पादन के दौरान उपयोगी विचार विमर्श के लिए Harata प्रयोगशाला के सदस्यों को धन्यवाद. इस काम अमेरिकन हार्ट एसोसिएशन, Dystonia मेडिकल रिसर्च फाउंडेशन, एडवर्ड Mallinckrodt, जूनियर फाउंडेशन, राष्ट्रीय विज्ञान फाउंडेशन, और एनसीएच को व्हाइटहॉल फाउंडेशन से अनुदान द्वारा वित्त पोषित किया गया

Materials

Pulse generator AMPI Master-8
Isolated stimulator Digitimer DS3
Inverted microscope Nikon Eclipse TS100 This is used for assessing the cell morphology at low magnification.
Inverted microscope Nikon Eclipse TiE This is used for high-resolution fluorescence and transmitted light imaging, with minimal focus drift.
Objective lens Nikon Water-immersion lens is recommended. Oil-immersion lens is usable unless an imaged structure is deep from the coverslip surface (e.g. >10 μm).
Filter cube Nikon 77032509 490/20-nm ex, 510-nm dclp, 520-nm-LP em for FM1-43
Filter cube Nikon 77032809 490/20-nm ex, 510-nm dclp, 650-nm-LP em for FM4-64. 
EMCCD camera Andor Technology iXon EM+ DU-860 This EMCCD camera is used for high-sensitivity detection of fluorescence.
Liquid recirculating chiller Solid State Cooling Systems Oasis 160 This is used for continuously perfusing the camera with chilled water for maintaining a temperature of -80°C, and thereby reducing noise.
LED CoolLED-Custom Interconnect 490 nm  This light source is used for rapid on/off control of fluorescence excitation.
Image acquisition software Andor Technology Solis
Imaging chamber Warner Instruments RC-21BRFS
Fast perfusion system Warner Instruments SF-77B
CNQX Tocris Bioscience 1045
D,L-AP5 Tocris Bioscience 0106
Tetrodotoxin Tocris Bioscience 1069 Caution: toxic reagent. Handle with care.
FM1-43 Invitrogen T35356
Aldehyde-fixable FM1-43 (FM1-43FX) Invitrogen F35355
FM4-64 Invitrogen T13320
Aldehyde-fixable FM4-64 (FM4-64FX) Invitrogen F34653
Ionomycin Sigma-Aldrich I0634
Hanks’ balanced salt Sigma-Aldrich H2387
Minimum Essential Medium Invitrogen 51200-038 This solution does not contain phenol red that will interfere with fluorescence imaging.
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15710 Caution: toxic reagent. Handle with care.
Sucrose Sigma-Aldrich S7903

References

  1. Betz, W. J., Bewick, G. S. Optical analysis of synaptic vesicle recycling at the frog neuromuscular junction. Science. 255, 200-203 (1992).
  2. Gaffield, M. A., Betz, W. J. Imaging synaptic vesicle exocytosis and endocytosis with FM dyes. Nat. Protoc. 1, 2916-2921 (2006).
  3. Hoopmann, P., Rizzoli, S. O., Betz, W. J. . Imaging synaptic vesicle recycling by staining and destaining vesicles with FM dyes. , 77-83 (2012).
  4. Newton, J., Murthy, V. Measuring exocytosis in neurons using FM labeling. J. Vis. Exp. , (2006).
  5. Evans, G. J., Cousin, M. A. Simultaneous monitoring of three key neuronal functions in primary neuronal cultures. J. Neurosci. Methods. 160, 197-205 (2007).
  6. Cousin, M. A. Use of FM1-43 and other derivatives to investigate neuronal function. Curr. Protoc. Neurosci. 2, (2008).
  7. Clayton, E. L., Cousin, M. A. Quantitative monitoring of activity-dependent bulk endocytosis of synaptic vesicle membrane by fluorescent dextran imaging. J. Neurosci. Methods. 185, 76-81 (2009).
  8. Cheung, G., Cousin, M. A. Quantitative analysis of synaptic vesicle pool replenishment in cultured cerebellar granule neurons using FM dyes. J. Vis. Exp. , (2011).
  9. Welzel, O., Tischbirek, C. H., Kornhuber, J., Groemer, T. W. Pool-independent labelling of synaptic vesicle exocytosis with single vesicle resolution in rat hippocampal neurons. J. Neurosci. Methods. 205, 258-264 (2012).
  10. Winterer, J., Stanton, P. K., Muller, W. Direct monitoring of vesicular release and uptake in brain slices by multiphoton excitation of the styryl FM 1-43. Biotechniques. 40, 343-351 (2006).
  11. Kay, A. R. Imaging FM dyes in brain slices. Cold Spring Harb. Protoc. , (2007).
  12. Verstreken, P., Ohyama, T., Bellen, H. J. FM 1-43 labeling of synaptic vesicle pools at the Drosophila neuromuscular junction. Methods Mol. Biol. 440, 349-369 (2008).
  13. Amaral, E., Guatimosim, S., Guatimosim, C. Using the fluorescent styryl dye FM1-43 to visualize synaptic vesicles exocytosis and endocytosis in motor nerve terminals. Methods Mol. Biol. 689, 137-148 (2011).
  14. Guatimosim, C., von Gersdorff, H. Optical monitoring of synaptic vesicle trafficking in ribbon synapses. Neurochem. Int. 41, 307-312 (2002).
  15. Joselevitch, C., Zenisek, D. Imaging exocytosis in retinal bipolar cells with TIRF microscopy. J. Vis. Exp. , 1305 (2009).
  16. Griesinger, C. B., Richards, C. D., Ashmore, J. F. FM1-43 reveals membrane recycling in adult inner hair cells of the mammalian cochlea. J. Neurosci. 22, 3939-3952 (2002).
  17. Sara, Y., Virmani, T., Deak, F., Liu, X. An isolated pool of vesicles recycles at rest and drives spontaneous neurotransmission. Neuron. 45, 563-573 (2005).
  18. Wilhelm, B. G., Groemer, T. W., Rizzoli, S. O. The same synaptic vesicles drive active and spontaneous release. Nat. Neurosci. 13, 1454-1456 (2010).
  19. Kakazu, Y., Koh, J. Y., Iwabuchi, S., Gonzalez-Alegre, P., Harata, N. C. Miniature release events of glutamate from hippocampal neurons are influenced by the dystonia-associated protein torsinA. Synapse. 66, 807-822 (2012).
  20. Kakazu, Y., Koh, J. Y., Ho, K. W., Gonzalez-Alegre, P., Harata, N. C. Synaptic vesicle recycling is enhanced by torsinA that harbors the DYT1 dystonia mutation. Synapse. 66, 453-464 (2012).
  21. Kavalali, E. T., Klingauf, J., Tsien, R. W. Activity-dependent regulation of synaptic clustering in a hippocampal culture system. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 96, 12893-12900 (1999).
  22. Willig, K. I., Rizzoli, S. O., Westphal, V., Jahn, R., Hell, S. W. STED microscopy reveals that synaptotagmin remains clustered after synaptic vesicle exocytosis. Nature. 440, 935-939 (2006).
  23. Nosyreva, E., Kavalali, E. T. Activity-dependent augmentation of spontaneous neurotransmission during endoplasmic reticulum stress. J. Neurosci. 30, 7358-7368 (2010).
  24. Ryan, T. A., Smith, S. J. Vesicle pool mobilization during action potential firing at hippocampal synapses. Neuron. 14, 983-989 (1995).
  25. Ryan, T. A., Smith, S. J., Reuter, H. The timing of synaptic vesicle endocytosis. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 93, 5567-5571 (1996).
  26. Harata, N., et al. Limited numbers of recycling vesicles in small CNS nerve terminals: implications for neural signaling and vesicular cycling. Trends Neurosci. 24, 637-643 (2001).
  27. Klingauf, J., Kavalali, E. T., Tsien, R. W. Kinetics and regulation of fast endocytosis at hippocampal synapses. Nature. 394, 581-585 (1998).
  28. Richards, D. A., Bai, J., Chapman, E. R. Two modes of exocytosis at hippocampal synapses revealed by rate of FM1-43 efflux from individual vesicles. J. Cell Biol. 168, 929-939 (2005).
  29. Kay, A. R., et al. Imaging synaptic activity in intact brain and slices with FM1-43 in C. elegans, lamprey, and rat. Neuron. 24, 809-817 (1999).
  30. Darcy, K. J., Staras, K., Collinson, L. M., Goda, Y. An ultrastructural readout of fluorescence recovery after photobleaching using correlative light and electron. 1, 988-994 (2006).
  31. Moulder, K. L., Jiang, X., Taylor, A. A., Benz, A. M., Mennerick, S. Presynaptically silent synapses studied with light microscopy. J. Vis. Exp. , (2010).
  32. Pyle, J. L., Kavalali, E. T., Choi, S., Tsien, R. W. Visualization of synaptic activity in hippocampal slices with FM1-43 enabled by fluorescence quenching. Neuron. 24, 803-808 (1999).
  33. Harata, N. C., Choi, S., Pyle, J. L., Aravanis, A. M., Tsien, R. W. Frequency-dependent kinetics and prevalence of kiss-and-run and reuse at hippocampal synapses studied with novel quenching methods. Neuron. 49, 243-256 (2006).
  34. Piedras-Renteria, E. S., et al. Presynaptic homeostasis at CNS nerve terminals compensates for lack of a key Ca2+ entry pathway. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 101, 3609-3614 (2004).
  35. Rosenmund, C., Stevens, C. F. Definition of the readily releasable pool of vesicles at hippocampal synapses. Neuron. 16, 1197-1207 (1996).
  36. Pyle, J. L., Kavalali, E. T., Piedras-Renteria, E. S., Tsien, R. W. Rapid reuse of readily releasable pool vesicles at hippocampal synapses. Neuron. 28, 221-231 (2000).
  37. Kawano, H., et al. Long-term culture of astrocytes attenuates the readily releasable pool of synaptic vesicles. PLoS ONE. 8, (2012).
  38. Harata, N., Katayama, J., Takeshita, Y., Murai, Y., Akaike, N. Two components of metabotropic glutamate responses in acutely dissociated CA3 pyramidal neurons of the rat. Brain Res. 711, 223-233 (1996).
  39. Kira, T., Harata, N., Sakata, T., Akaike, N. Kinetics of sevoflurane action on GABA- and glycine-induced currents in acutely dissociated rat hippocampal neurons. Neuroscience. 85, 383-394 (1998).
  40. Harata, N., Katayama, J., Akaike, N. Excitatory amino acid responses in relay neurons of the rat lateral geniculate nucleus. Neuroscience. 89, 109-125 (1999).
  41. Albeanu, D. F., Soucy, E., Sato, T. F., Meister, M., Murthy, V. N. LED arrays as cost effective and efficient light sources for widefield microscopy. PLoS ONE. 3, e2146 (2008).
  42. Neves, G., Lagnado, L. The kinetics of exocytosis and endocytosis in the synaptic terminal of goldfish retinal bipolar cells. J. Physiol. 515, 181-202 (1999).
  43. Mazzone, S. B., et al. Fluorescent styryl dyes FM1-43 and FM2-10 are muscarinic receptor antagonists: intravital visualization of receptor occupancy. J. Physiol. 575, 23-35 (2006).
  44. Gale, J. E., Marcotti, W., Kennedy, H. J., Kros, C. J., Richardson, G. P. FM1-43 dye behaves as a permeant blocker of the hair-cell mechanotransducer channel. J. Neurosci. 21, 7013-7025 (2001).
  45. Li, D., Herault, K., Oheim, M., Ropert, N. FM dyes enter via a store-operated calcium channel and modify calcium signaling of cultured astrocytes. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 21960-21965 (2009).
  46. Crumling, M. A., et al. P2X antagonists inhibit styryl dye entry into hair cells. Neuroscience. 161, 1144-1153 (2009).
  47. Zhu, Y., Stevens, C. F. Probing synaptic vesicle fusion by altering mechanical properties of the neuronal surface membrane. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 18018-18022 (2008).
  48. Thiagarajan, T. C., Lindskog, M., Tsien, R. W. Adaptation to synaptic inactivity in hippocampal neurons. Neuron. 47, 725-737 (2005).
  49. Miesenböck, G., De Angelis, D. A., Rothman, J. E. Visualizing secretion and synaptic transmission with pH-sensitive green fluorescent proteins. Nature. 394, 192-195 (1998).
  50. Li, H., et al. Concurrent imaging of synaptic vesicle recycling and calcium dynamics. Front. Mol. Neurosci. 4, 34 (2011).
  51. Raingo, J., et al. VAMP4 directs synaptic vesicles to a pool that selectively maintains asynchronous neurotransmission. Nat. Neurosci. 15, 738-745 (2012).
  52. Martens, H., et al. Unique luminal localization of VGAT-C terminus allows for selective labeling of active cortical GABAergic synapses. J. Neurosci. 28, 13125-13131 (2008).
  53. Hua, Y., Sinha, R., Martineau, M., Kahms, M., Klingauf, J. A common origin of synaptic vesicles undergoing evoked and spontaneous fusion. Nat. Neurosci. 13, 1451-1453 (2010).
  54. Hua, Y., et al. A readily retrievable pool of synaptic vesicles. Nat. Neurosci. 14, 833-839 (2011).
  55. Groemer, T. W., Klingauf, J. Synaptic vesicles recycling spontaneously and during activity belong to the same vesicle. 10, 145-147 (2007).
  56. Moulder, K. L., et al. A specific role for Ca2+-dependent adenylyl cyclases in recovery from adaptive presynaptic silencing. J. Neurosci. 28, 5159-5168 (2008).
  57. Crawford, D. C., Jiang, X., Taylor, A., Moulder, K. L., Mennerick, S. Differential requirement for protein synthesis in presynaptic unmuting and muting in hippocampal glutamate terminals. PLoS ONE. 7, (2012).
  58. Henkel, A. W., Lubke, J., Betz, W. J. FM1-43 dye ultrastructural localization in and release from frog motor nerve terminals. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 93, 1918-1923 (1996).
  59. Harata, N., Ryan, T. A., Smith, S. J., Buchanan, J., Tsien, R. W. Visualizing recycling synaptic vesicles in hippocampal neurons by FM 1- 43 photoconversion. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 98, 12748-12753 (2001).
  60. Opazo, F., Rizzoli, S. O. Studying synaptic vesicle pools using photoconversion of styryl dyes. J. Vis. Exp. , (2010).
  61. Schikorski, T. Monitoring rapid endocytosis in the electron microscope via photoconversion of vesicles fluorescently labeled with FM1-43. Methods Mol. Biol. 657, 329-346 (2010).
  62. Hoopmann, P., Rizzoli, S. O., Betz, W. J. FM dye photoconversion for visualizing synaptic vesicles by electron microscopy. Cold Spring Harb. Protoc. 2012, 84-86 (2012).
  63. Schote, U., Seelig, J. Interaction of the neuronal marker dye FM1-43 with lipid membranes. Thermodynamics and lipid ordering. Biochim. Biophys. Acta. 1415, 135-146 (1998).
  64. Harata, N. C., Aravanis, A. M., Tsien, R. W. Kiss-and-run and full-collapse fusion as modes of exo-endocytosis in neurosecretion. J. Neurochem. 97, 1546-1570 (2006).
check_url/50557?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Iwabuchi, S., Kakazu, Y., Koh, J., Goodman, K. M., Harata, N. C. Examination of Synaptic Vesicle Recycling Using FM Dyes During Evoked, Spontaneous, and Miniature Synaptic Activities. J. Vis. Exp. (85), e50557, doi:10.3791/50557 (2014).

View Video