Summary

Stimulering av stamcellsnischer och vävnadsregenerering i mushud genom omkopplingsbar protoporfyrin IX-beroende fotogenerering av reaktiva syreradikaler in situ

Published: May 08, 2020
doi:

Summary

Syftet med detta protokoll är att inducera övergående in vivo-produktion av icke-dödliga nivåer av reaktiva syreradikaler (ROS) i mushud, vilket ytterligare främjar fysiologiska reaktioner i vävnaden.

Abstract

Här beskriver vi ett protokoll för att inducera omkopplingsbar in vivo fotogenerering av endogena reaktiva syreradikaler (ROS) i mushud. Denna övergående produktion av ROS in situ aktiverar effektivt cellproliferation i stamcellsnischer och stimulerar vävnadsregenerering, vilket starkt manifesteras genom accelerationen av brännskadeläkning och hårfollikeltillväxtprocesser. Protokollet är baserat på en reglerbar fotodynamisk behandling som behandlar vävnaden med prekursorer av den endogena fotosensibiliseraren protoporfyrin IX och bestrålar vidare vävnaden med rött ljus under tätt kontrollerade fysikalisk-kemiska parametrar. Sammantaget utgör detta protokoll ett intressant experimentellt verktyg för att analysera ROS-biologi.

Introduction

Reaktiva syreradikaler (ROS) är resultatet av den kemiska reduktionen av molekylärt syre för att bilda vatten och inkluderar singlettsyre, superoxidanjon, väteperoxid och hydroxylradikalen 1,2,3. ROS har en mycket kort livslängd på grund av deras extremt kemiska reaktiva natur. I aeroba organismer bildas ROS för övrigt inuti cellerna som en viktig läckande biprodukt av aerob andning (elektrontransportkedja) i mitokondrierna. Övergående ackumulering av höga nivåer av ROS i cellen resulterar i ett oxidativt stresstillstånd som kan framkalla irreversibel inaktivering av proteiner, lipider och sockerarter och införandet av mutationer i DNA-molekylen 2,3,4,5. Den gradvisa ackumuleringen av oxidativ skada i celler, vävnader och hela organismer ökar stadigt med tiden och har associerats med induktion av celldödsprogram, flera patologier och åldringsprocessen 2,3,4,6.

Aeroba organismer har stadigt utvecklat effektiva molekylära mekanismer för att hantera överskott av ROS-ackumulering i celler och vävnader. Dessa mekanismer innefattar medlemmar av proteinfamiljen superoxiddismutas (SOD), som katalyserar superoxidradikaldismutation till molekylärt syre och väteperoxid, liksom olika katalaser och peroxidaser som använder antioxidantpoolen (glutation, NADPH, peroxiredoxin, thioredoxin 7,8) för att katalysera den efterföljande omvandlingen av väteperoxid till vatten och molekylärt syre.

Flera rapporter stöder dock ROS roll som nyckelkomponenter i molekylära kretsar som reglerar kritiska cellfunktioner, inklusive proliferation, differentiering och rörlighet 2,3,4. Detta koncept stöds ytterligare av den initiala identifieringen och karakteriseringen av dedikerade ROS-producerande mekanismer i aeroba organismer, inklusive lipoxygenaser, cyklooxygenaser och NADPH-oxidaser 9,10. I detta avseende uppvisar ROS en aktiv roll under embryoutveckling av ryggradsdjur 11,12,13 och nyckelroller för dessa molekyler i regleringen av specifika in vivo fysiologiska funktioner har rapporterats i olika experimentella system, inklusive differentieringsprogrammet för hematopoetiska förfäder i Drosophila14, helande induktion i zebrafisk eller svansregenerering i Xenopus grodyngel 15. Hos däggdjur har ROS varit involverat i självförnyelse/differentieringspotentialen hos neurala stamceller i en neurosfärmodell16 och i avregleringen av tarmstamcellsfunktionen under kolorektal cancerinitiering17. I huden har ROS-signalering associerats med epidermal differentiering och reglering av hudens stamcellsnisch och hårsäckens tillväxtcykel18,19.

I detta perspektiv är en viktig experimentell begränsning för att bestämma ROS fysiologiska roller i biologiska system, både under normala eller patologiska förhållanden, bristen på adekvata experimentella verktyg för att inducera kontrollerad produktion av dessa molekyler i celler och vävnader, som exakt liknar deras fysiologiska produktion som andra signalbudbärare. För närvarande innefattar de flesta experimentella tillvägagångssätt administrering av exogen ROS, mestadels i form av väteperoxid. Vi har nyligen implementerat ett experimentellt tillvägagångssätt för att slå på en övergående, icke-dödlig in vivo-produktion av endogen ROS i mushuden, baserat på administrering av prekursorer av den endogena fotosensibiliserande protoporfyrin IX (PpIX; t.ex. aminolaevulinsyra eller dess metylderivatmetylaminolevulinat) och ytterligare bestrålning av provet med rött ljus för att inducera in situ-bildning av ROS från intracellulärt molekylärt syre (figur 1). Denna fotodynamiska procedur kan effektivt användas för att stimulera inhemska stamcellsnischer, vilket aktiverar vävnadens regenerativa program19,20 och öppnar vägen för nya terapeutiska modaliteter inom hudregenerativ medicin. Här presenterar vi en detaljerad beskrivning av protokollet, som visar representativa exempel på stimulering av stamcellsnischer, mätt som en ökning av antalet långsiktiga 5-brom-2′-deoxiuridin (BrdU) etiketthållande celler (LRC) i hårsäckens utbuktningsområde19,21 och efterföljande aktivering av regenereringsprogram (acceleration av hårväxt och brännläkningsprocesser) inducerad av övergående, icke-dödlig ROS-produktion i huden av C57Bl6-musstam.

Protocol

All mushållning och alla försöksförsök måste utföras i enlighet med lokal, nationell, internationell lagstiftning och riktlinjer för djurförsök. 1. Induktion av hårväxt, brännskadeinduktion och identifiering av långsiktiga BrdU LRC i svanshudepitelet OBS: Använd 10-dagars eller 7-veckors gamla C57BL / 6-möss, helst kullkamrater, för de experimentella mönster som beskrivs nedan. I alla experimentella procedurer kommer djuren att bedövas genom 3% isof…

Representative Results

Den topiska administreringen av mALA-prekursorn i musens rygg- och svanshud resulterar i en signifikant ackumulering av PpIX i hela vävnaden och märkbart i hårsäcken, vilket demonstreras av den rödrosa fluorescensen hos denna förening under excitation av blått ljus (407 nm) (figur 2A, C). Efterföljande bestrålning av behandlad vävnad med rött ljus (636 nm) vid en fluens av 2,5−4 J/cm2 främjar övergående produktion av ROS i vävnaden, särskilt i h?…

Discussion

Här presenterar vi en metodik som möjliggör en övergående aktivering av endogen ROS-produktion in vivo i mushud med fysiologiska effekter. Metoden är baserad på en fotodynamisk procedur för att inducera en kontrollerad och lokal stimulering av den endogena fotosensibiliseraren PpIX (figur 1B). Detta experimentella tillvägagångssätt är ett intressant verktyg för att studera ROS-biologi i in vivo-experimentella system som utgör ett betydande framsteg jämfört med metoder som anv…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete har fått stöd från Ministerio de Economía y Competitividad (RTC-2014-2626-1 till JE) och Instituto de Salud Carlos III (PI15/01458 till JE) i Spanien. EG har fått stöd av Atracción de Talento Investigador-bidraget 2017-T2/BMD-5766 (Comunidad de Madrid och UAM).

Materials

2′,7′-Dichlorofluorescin diacetate Sigma Aldrich D6883-50MG
5'-bromo-2'-deoxiuridine Sigma Aldrich B5002-500MG
Anti-Bromodeoxyuridine-Fluorescein Roche 11202693001
Depilatory cream (e.g., Veet) Veet
Dihydroethidium Sigma Aldrich 37291-25MG
In Vivo imaging system, e.g., IVIS Lumina 2 Perkin Elmer
mALA in the form of topical cream, e.g.,METVIX Crema 160 mg/g Galderma
Power energy meter (e.g., ThorLabs Model PM100D) ThorLabs
Red light source, e.g., 636 nm Aktilite LED lamp Photocure ASA

References

  1. Blázquez-Castro, A. Direct 1O2 optical excitation: A tool for redox biology. Redox Biology. 13, 39-59 (2017).
  2. Valko, M., et al. Free radicals and antioxidants in normal physiological functions and human disease. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 39 (1), 44-84 (2007).
  3. Sena, L. A., Chandel, N. S. Physiological Roles of Mitochondrial Reactive Oxygen Species. Molecular Cell. 48 (2), 158-167 (2012).
  4. Bartosz, G. Reactive oxygen species: Destroyers or messengers. Biochemical Pharmacology. 77 (8), 1303-1315 (2009).
  5. Brieger, K., Schiavone, S., Miller, J., Krause, K. Reactive oxygen species: from health to disease. Swiss Medical Weekly. 142, 13659 (2012).
  6. Speakman, J. R., Selman, C. The free-radical damage theory: Accumulating evidence against a simple link of oxidative stress to ageing and lifespan. BioEssays. 33 (4), 255-259 (2011).
  7. Fernandez, V., Videla, L. A. Biochemical aspects of cellular antioxidant systems. Biological Research. 29 (2), 177-182 (1996).
  8. Matés, J. M., Sánchez-Jiménez, F. Antioxidant enzymes and their implications in pathophysiologic processes. Frontiers in Bioscience. 4, 339-345 (1999).
  9. Bedard, K., Krause, K. -. H. The NOX Family of ROS-Generating NADPH Oxidases: Physiology and Pathophysiology. Physiological Reviews. 87 (1), 245-313 (2007).
  10. Leto, T. L., Morand, S., Hurt, D., Ueyama, T. Targeting and Regulation of Reactive Oxygen Species Generation by Nox Family NADPH Oxidases. Antioxidants & Redox Signaling. 11 (10), 2607-2619 (2009).
  11. Hernández-García, D., Wood, C. D., Castro-Obregón, S., Covarrubias, L. Reactive oxygen species: A radical role in development. Free Radical Biology and Medicine. 49 (2), 130-143 (2010).
  12. Covarrubias, L., Hernández-García, D., Schnabel, D., Salas-Vidal, E., Castro-Obregón, S. Function of reactive oxygen species during animal development: Passive or active. Developmental Biology. 320 (1), 1-11 (2008).
  13. Timme-Laragy, A. R., Hahn, M. E., Hansen, J. M., Rastogi, A., Roy, M. A. Redox stress and signaling during vertebrate embryonic development: Regulation and responses. Seminars in Cell & Developmental Biology. 80, 17-28 (2018).
  14. Owusu-Ansah, E., Banerjee, U. Reactive oxygen species prime Drosophila haematopoietic progenitors for differentiation. Nature. 461 (7263), 537-541 (2009).
  15. Love, N. R., et al. Amputation-induced reactive oxygen species are required for successful Xenopus tadpole tail regeneration. Nature Cell Biology. 15 (2), 222-228 (2013).
  16. Le Belle, J. E., et al. Proliferative Neural Stem Cells Have High Endogenous ROS Levels that Regulate Self-Renewal and Neurogenesis in a PI3K/Akt-Dependant Manner. Cell Stem Cell. 8 (1), 59-71 (2011).
  17. Myant, K. B., et al. production and NF-κB activation triggered by RAC1 facilitate WNT-driven intestinal stem cell proliferation and colorectal cancer initiation. Cell Stem Cell. 12 (6), 761-773 (2013).
  18. Hamanaka, R. B., et al. Mitochondrial Reactive Oxygen Species Promote Epidermal Differentiation and Hair Follicle Development. Science Signaling. 6 (261), 8 (2013).
  19. Carrasco, E., et al. Photoactivation of ROS Production in situ Transiently Activates Cell Proliferation in Mouse Skin and in the hair Follicle Stem Cell Niche Promoting Hair Growth and Wound Healing. Journal of Investigative Dermatology. 135 (11), 1-12 (2015).
  20. Carrasco, E., Blázquez-Castro, A., Calvo, M. I., Juarranz, &. #. 1. 9. 3. ;., Espada, J. Switching on a transient endogenous ROS production in mammalian cells and tissues. Methods. , 109 (2016).
  21. Braun, K. M., et al. Manipulation of stem cell proliferation and lineage commitment: visualisation of label-retaining cells in wholemounts of mouse epidermis. Development. 130 (21), 5241-5255 (2003).
  22. Hsu, Y. -. C., Li, L., Fuchs, E. Emerging interactions between skin stem cells and their niches. Nature Medicine. 20 (8), 847-856 (2014).
  23. Plikus, M. V., et al. Epithelial stem cells and implications for wound repair. Seminars in Cell & Developmental Biology. 23 (9), 946-953 (2012).
check_url/60859?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Espada, J., Carrasco, E., Calvo-Sánchez, M. I., Fernández-Martos, S., Montoya, J. J. Stimulation of Stem Cell Niches and Tissue Regeneration in Mouse Skin by Switchable Protoporphyrin IX-Dependent Photogeneration of Reactive Oxygen Species In Situ. J. Vis. Exp. (159), e60859, doi:10.3791/60859 (2020).

View Video