Summary

Forenklet omvendt genetikk metode for å gjenopprette rekombinant rotavirus uttrykke reporter proteiner

Published: April 17, 2020
doi:

Summary

Generering av rekombinant rotavirus fra plasmid DNA gir et viktig verktøy for studiet av rotavirusreplikasjon og patogenese, og utvikling av rotavirusuttrykksvektorer og vaksiner. Her beskriver vi en forenklet omvendt genetikk tilnærming for å generere rekombinant rotavirus, inkludert stammer som uttrykker fluorescerende reporter proteiner.

Abstract

Rotavirus er en stor og utviklende populasjon av segmenterte dobbeltstrandede RNA-virus som forårsaker alvorlig gastroenteritt hos unge av mange pattedyr og fugleiske vertsarter, inkludert mennesker. Med den nylige advent av rotavirus omvendt genetikk systemer, Det har blitt mulig å bruke rettet mutagenesis å utforske rotavirus biologi, endre og optimalisere eksisterende rotavirus vaksiner, og utvikle rotavirus multitarget vaksine vektorer. I denne rapporten beskriver vi et forenklet omvendt genetikksystem som gjør det mulig å effektiv og pålitelig gjenoppretting av rekombinant rotavirus. Systemet er basert på kotransfection av T7 transkripsjon vektorer uttrykker full lengde rotavirus (+)RNAs og en CMV vektor koding en RNA capping enzym i BHK celler konstitutivt produsere T7 RNA polymerase (BHK-T7). Rekombinant rotavirus forsterkes ved å overvåke de transinfiserte BHK-T7-cellene med MA104-celler, en apenyrecellelinje som er svært tillatt for virusvekst. I denne rapporten beskriver vi også en tilnærming for å generere rekombinant rotavirus som uttrykker et eget fluorescerende reporterprotein gjennom innføringen av et 2A translasjonell stop-restart-element i genomsegment 7 (NSP3). Denne tilnærmingen unngår å slette eller modifisere noen av de virale åpne leserammene, slik at produksjonen av rekombinant rotavirus som beholder fullt funksjonelle virale proteiner samtidig som de uttrykker et fluorescerende protein.

Introduction

Rotavirus er hovedårsakene til alvorlig gastroenteritt hos spedbarn og små barn, samt de unge av mange andre pattedyr og fuglearter1. Som medlemmer av Reoviridae-familien har rotavirus et segmentert dobbeltstrandet RNA (dsRNA) genom. Genomsegmentene finnes i en ikke-omsluttet icosahedral virion dannet av tre konsentriske lag av protein2. Basert på sekvensering og fylogenetisk analyse av genomsegmentene, er ni arter av rotavirus (A−D, F-J) definert3. Disse stammene bestående av rotavirus arter A er ansvarlig for det store flertallet av menneskelig sykdom4. Innføringen av rotavirusvaksiner i barnevaksinasjonsprogrammer som begynner i det siste tiåret, er korrelert med betydelige reduksjoner i rotavirusdødelighet og sykelighet. Spesielt har antall rotavirus-tilknyttede barnedødsfall gått ned fra ca. 528 000 i 2000 til 128 500 i 20164,5. Rotavirusvaksiner er formulert fra levende attenuerte stammer av viruset, med 2 til 3 doser administrert til barn med 6 måneders alder. Det store antallet genetisk varierte rotavirusstammer som sirkulerer hos mennesker og andre pattedyrarter, kombinert med deres evne til raskt å utvikle seg gjennom mutagenesis og reassortment, kan føre til antigene endringer i typer rotavirus som smitter barn6,7,8. Slike endringer kan undergrave effekten av eksisterende vaksiner, som krever erstatning eller modifikasjon.

Utviklingen av fullt plasmidbaserte revers genetikk systemer slik at manipulering av noen av de 11 rotavirus genom segmenter ble bare nylig oppnådd9. Med tilgjengeligheten av disse systemene har det blitt mulig å avdekke molekylære detaljer om rotavirusreplikasjon og patogenese, for å utvikle forbedrede screeningmetoder for høy gjennomstrømning for antirotavirusforbindelser, og for å skape nye potensielt mer effektive klasser av rotavirusvaksiner. Under rotavirus replikering, avkortet viral (+)RNAs ikke bare veilede syntesen av virale proteiner, men også tjene som maler for syntese av avkom dsRNA genom segmenter10,11. Alle rotavirus omvendt genetikk systemer beskrevet til dags dato stole på transfection av T7 transkripsjon vektorer i pattedyr celle linjer som en kilde til cDNA-avledet (+)RNAs brukes i å gjenopprette rekombinant virus9,12,13. Innenfor transkripsjonsvektorene er virale cDNAer i full lengde plassert mellom en oppstrøms T7-promoter og nedstrøms hepatitt deltavirus (HDV) ribozyme slik at virale (+)RNAer syntetiseres av T7 RNA polymerase som inneholder autentisk 5′ og 3′-termini (figur 1A). I første generasjons omvendt genetikk system, rekombinant virus ble gjort ved å transfecting baby hamster nyreceller uttrykker T7 RNA polymerase (BHK-T7) med 11 T7 (pT7) transkripsjon vektorer, hver reketisering av en unik (+)RNA av simian SA11 virus stamme, og tre CMV promotor-stasjonen uttrykk plasmids, en koding avian reovirus p10FAST fusjon protein og to koding underenheter av vaccinia virus D1R-D12L capping enzym kompleks9. Rekombinant SA11 virus generert i transfected BHK-T7 celler ble forsterket ved å overvåke med MA104 celler, en cellelinje tillatt for rotavirus vekst. En modifisert versjon av første generasjons omvendt genetikk system har blitt beskrevet som ikke lenger bruker støtte plasmids12. I stedet genererer det modifiserte systemet rekombinant rotavirus ganske enkelt ved å transfecting BHK-T7 celler med 11 SA11 T7 transkripsjon vektorer, med forbehold om at vektorer for viral fabrikken (viroplasm) byggeblokker (ikke-strukturelle proteiner NSP2 og NSP5) legges til på nivåer 3 ganger høyere enn de andre vektorer14,15. Modifiserte versjoner av det omvendte genetikksystemet er også utviklet som støtter utvinning av den menneskelige KU og Odelia stammer av rotavirus16,17. Rotavirusgenomet er bemerkelsesverdig mottagelig for manipulering av omvendt genetikk, med rekombinantvirus generert til dags dato med mutasjoner introdusert i VP418, NSP19, NSP219, NSP320,21, og NSP522,23. Blant de mest nyttige virusgenerert så langt er de som har blitt utviklet for å uttrykke fluorescerende reporter proteiner (FPs)9,12,21,24,25.

I denne publikasjonen gir vi protokollen for det omvendte genetikksystemet som vi bruker i laboratoriet vårt for å generere rekombinante stammer av SA11 rotavirus. Nøkkelfunksjonen i vår protokoll er co-transfection av BHK-T7 celler med 11 pT7 transkripsjon vektorer (modifisert til å inkludere 3x nivåer av pT7/NSP2SA11 og pT7/NSP5SA11 vektorer) og en CMV uttrykk vektor koding afrikanske svinefeber virus (ASFV) NP868R capping enzym21 (Figur 2). I våre hender fører tilstedeværelsen av NP868R plasmid til produksjon av høyere titers av rekombinantvirus av transinfiserte BHK-T7-celler. I denne publikasjonen gir vi også en protokoll for endring av pT7/NSP3SA11 plasmid slik at rekombinantvirus kan genereres som ikke bare uttrykker segment 7 proteinproduktet NSP3, men også en egen FP. Dette oppnås ved å re-engineering NSP3 åpen avlesningramme (ORF) i pT7/NSP3SA11 plasmid å inneholde en nedstrøms 2A translational stop-restart element etterfulgt av en FP ORF (Figur 1B)24,26. Gjennom denne tilnærmingen har vi generert rekombinant rotavirus som uttrykker ulike FPs: UnaG (grønn), mKate (langt rød), mRuby (rød), TagBFP (blå), CFP (cyan) og YFP (gul)24,27,28. Disse FP-uttrykkende rotavirusene er laget uten å slette NSP3 ORF, og dermed gi virus som forventes å kode et komplett komplement av fungerende virusproteiner.

Protocol

1. Vedlikehold av medieforberedelse og cellekultur Få baby hamster nyreceller konstitutivt uttrykker T7 RNA polymerase (BHK-T7) og afrikanske grønne ape nyre MA104 celler.MERK: BHK-T7 (eller BSR-T7) celler er ikke kommersielt tilgjengelige, men er en vanlig cellelinje av laboratorier som bruker omvendt genetikk for å studere RNA-virusbiologi. BHK-T7 cellelinjen som brukes i denne protokollen ble hentet fra Dr. Ursula J. Buchholz (National Institutes of Health, Bethesda, MD, USA), en medutvikler av den op…

Representative Results

Den omvendte genetikkprotokollen som er beskrevet i denne artikkelen, fortsetter gjennom flere forskjellige trinn: (1) co-transfection av BHK-T7-celler med rotavirus pT7 transkripsjonsvektorer og en pCMV/NP868R-uttrykkplasmid, (2) tilsyn med transinfiserte BHK-T7-celler med MA104-celler, (3) forsterkning av rekombinantvirus som finnes i BHK-T7/MA104-celler ved hjelp av MA104-celler, og (4) plakkisolering av rekombinantvirus ved bruk av MA104-celler (Figur 2). I våre hender er protokollen ef…

Discussion

I vårt laboratorium er vi rutinemessig avhengige av den omvendte genetikkprotokollen som er beskrevet her for å produsere rekombinant SA11 rotavirus. Med denne tilnærmingen gjenoppretter personer med liten erfaring i molekylærbiologiteknikker eller arbeider med rotavirus rekombinantvirus selv på deres første forsøk. Vi har generert nærmere 100 rekombinantvirus etter denne protokollen, inkludert de med genomer som har blitt re-konstruert for å uttrykke utenlandske proteiner (f.eks. FPs) og som inneholder sekvenst…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av NIH tilskudd R03 AI131072 og R21 AI144881, Indiana University Oppstart Funding, og Lawrence M. Blatt Begavelse. Vi takker medlemmer av IU Rotahoosier-laboratoriet, Ulrich Desselberger og Guido Papa for deres mange bidrag og forslag til å utvikle den omvendte genetikkprotokollen.

Materials

Baby Hamster Kidney – T7 RdRP (BHK-T7) Cells Contact: ubuchholz@niaid.nih.gov
Bio-Rad 8-16% Tris-Glycine Polyacrylamide Mini-Gel Bio-Rad 45608105
Cellometer AutoT4 viable cell counter Nexcelom
ChemiDoc MP Gel Imaging System Bio-Rad
Chloroform MP 194002
Clarity Western Enhanced Chemiluminescence (ECL) Substrate Bio-Rad 170-5060
Competent E.coli DH5alpha Bacteria Lucigen 60602-2
Complete Protease Inhibitor Pierce A32965
Disposable Transfer Pipettes, Ultrafine Extended Tips MTC Bio P4113-11
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) Lonza 12-604F
Eagle's Minimal Essential Medium, 2x (2xEMEM) Quality Biological 115-073-101
Ethanol, Absolute (200 proof) Fisher Bioreagents BP2818-500
Ethidium Bromide Solution (10 mg/ml) Invitrogen 15585-011
Fetal Bovine Serum (FBS) Corning 35-010-CV
Fetal Bovine Serum (FBS), Heat Inactivated Corning 35-011-CV
Flag M2 Antibody, Mouse Monoclonal Sigma-Aldrich F1804
GenEluate HP Plasmid Midiprep Kit Sigma NA0200-1KT
Geneticin (G-418) Invitrogen 10131-027
Gibco FluroBrite DMEM ThermoFisher A1896701 DMEM with low background fluorescence
Glasgow Minimal Essential Medium (GMEM) Gibco 11710-035
Goat Anti-Rabbit IgG, Horseradish Peroxidase (HRP) Conjugated Cell-Signaling Technology 7074S
Guinea Pig Anti-NSP3 Antiserum Patton lab lot 55068
Guinea Pig Anti-VP6 Antierum Patton lab lot 53963
Horse Anti-Guinea Pig IgG, Horseradish Peroxidase (HRP) Conjugated KPL 5220-0366
Horse Anti-Mouse IgG, Horseradish eroxidase (HRP) Conjugated Cell-Signaling Technology 7076S
iNtRON Biotechnology e-Myco Mycoplasma PCR Detection Kit JH Science 25235
Isopropyl alcohol Macron 3032-02
L-glutamine Solution (100x) Gibco 25030-081
Luria Agar Powder (Miller's LB Agar) RPI research products L24020-2000.0
Medium 199 (M199) Culture Medium Hyclone Sh30253.01
Minimal Essential Medium -Eagle Joklik's Forumation (SMEM) Lonza 04-719Q
Monkey Kidney (MA104) Cells ATCC ATCC CRL-2378.1
NanoDrop One Spectrophotometer ThermoScientific
Neutral Red Solution (0.33%) Sigma-Aldrich N2889-100ml
Non-Essential Amino Acid Solution (100x) Gibco 11140-050
Novex 10% Tris-Glycine Polyacrylamide Mini-Gel Invitrogen XP00102BOX
Nuclease-Free Molecular Biology Grade Water Invitrogen 10977-015
NucleoSpin Gel and PCR Clean-Up Kit Takara 740609.25
Opti-MEM Reduced Serum Medium Gibco 31985-070
Pellet pestle (RNase-free, disposable) Fisher 12-141-368
Penicillin-Streptomycin Solution, (100x penn-strep) Corning 30-002-Cl
Phosphate Buffered Saline (PBS), 10x Fisher Bioreagents BP399-20
Porcine Trypsin, Type IX-S Sigma-Aldrich T0303
PureYield Plasmid Miniprep System Promega A1223
Qiagen Plasmid Maxi Kit Qiagen 12162
Qiagen Plasmid Midi Kit Qiagen 12143
QIAprep Spin Miniprep Kit Qiagen 27104
SA11 pT7 Transcription Vectors Addgene 89162-89172
SA11 pT7/NSP3 Transcription Vectors Expressing Fluorescent Proteins Contact: jtpatton@iu.edu
SeaKem LE Agarose Lonza 50000 For gel electrophoresis
SeaPlaque agarose Lonza 50100 For plaque assay
Superscript III One-Step RT-PCR kit Invitrogen 12574-035
Trans-Blot Turbo Nitrocellulose Transfer Kit Bio-Rad 170-4270
Trans-Llot Turbo Transfer System Bio-Rad
TransIT-LTI Transfection Reagent Mirus MIR2306
Tris-Glycine-SDS Gel Running Buffer (10x) Bio-Rad 161-0772
Triton X 100 Fisher Bioreagents BP151-500
Trizol RNA Extraction Reagent Ambion 15596026
Trypan blue Corning 25-900-CI
Trypsin (0.05%)-EDTA (0.1%) Cell Dissociation Solution Quality Biological 118-087-721
Tryptose Phosphate Broth Gibco 18050-039
Tween-20 VWR 0777-1L
Vertrel VF solvent Zoro G0707178
Zoe Fluorescent Live Cell Imager Bio-Rad

References

  1. Crawford, S. E., et al. Rotavirus infection. Nature Reviews Disease Primers. 3 (17083), 1-16 (2017).
  2. Settembre, E. C., Chen, J. Z., Dormitzer, P. R., Grigorieff, N., Harrison, S. C. Atomic model of an infectious rotavirus particle. The EMBO Journal. 30 (2), 408-416 (2011).
  3. . Taxonomic information. Virus taxonomy: 2018b release Available from: https://talk.ictvonline.org/taxonomy (2019)
  4. Tate, J. E., Burton, A. H., Boschi-Pinto, C., Parashar, U. D. World Health Organization-Coordinated Global Rotavirus Surveillance Network. Global, regional, and national estimates of rotavirus mortality in children <5 years of age. Clinical Infectious Diseases. 62, 96-105 (2016).
  5. Troeger, C., et al. Rotavirus vaccination and the global burden of rotavirus diarrhea among children younger than 5 years. JAMA Pediatrics. 172 (10), 958-965 (2018).
  6. Matthijnssens, J., Van Ranst, M. Genotype constellation and evolution of group A rotaviruses infecting humans. Current Opinion in Virology. 2 (4), 426-433 (2012).
  7. McDonald, S. M., Nelson, M. I., Turner, P. E., Patton, J. T. Reassortment in segmented RNA viruses: mechanisms and outcomes. Nature Reviews Microbiology. 14 (7), 448-460 (2016).
  8. Patton, J. T. Rotavirus diversity and evolution in the post-vaccine world. Discovery Medicine. 13 (68), 85-97 (2012).
  9. Kanai, Y., et al. Entirely plasmid-based reverse genetics system for rotaviruses. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (9), 2349-2354 (2017).
  10. Trask, S. D., McDonald, S. M., Patton, J. T. Structural insights into the coupling of virion assembly and rotavirus replication. Nature Reviews Microbiology. 10 (3), 165-177 (2012).
  11. Guglielmi, K. M., McDonald, S. M., Patton, J. T. Mechanism of intraparticle synthesis of the rotavirus double-stranded RNA genome. Journal of Biological Chemistry. 285 (24), 18123-18128 (2010).
  12. Komoto, S., et al. Generation of recombinant rotaviruses expressing fluorescent proteins by using an optimized reverse genetics system. Journal of Virology. 92 (13), 00588-00618 (2018).
  13. Trask, S. D., Taraporewala, Z. F., Boehme, K. W., Dermody, T. S., Patton, J. T. Dual selection mechanisms drive efficient single-gene reverse genetics for rotavirus. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107, 18652-18657 (2010).
  14. Fabbretti, E., Afrikanova, I., Vascotto, F., Burrone, O. R. Two non-structural rotavirus proteins, NSP2 and NSP5, form viroplasm-like structures in vivo. Journal of General Virology. 80, 333-339 (1999).
  15. Eichwald, C., Rodriguez, J. F., Burrone, O. R. Characterization of rotavirus NSP2/NSP5 interactions and the dynamics of viroplasm formation. Journal of General Virology. 85, 625-634 (2004).
  16. Kawagishi, T., et al. Reverse genetics system for a human group A rotavirus. Journal of Virology. , (2019).
  17. Komoto, S., et al. Generation of infectious recombinant human rotaviruses from just 11 cloned cDNAs encoding the rotavirus genome. Journal of Virology. 93 (8), 02207-02218 (2019).
  18. Mohanty, S. K., et al. A point mutation in the rhesus rotavirus VP4 protein generated through a rotavirus reverse genetics system attenuates biliary atresia in the murine model. Journal of Virology. 91 (15), 00510-00517 (2017).
  19. Navarro, A., Trask, S. D., Patton, J. T. Generation of genetically stable recombinant rotaviruses containing novel genome rearrangements and heterologous sequences by reverse genetics. Journal of Virology. 87, 6211-6220 (2013).
  20. Duarte, M., et al. Rotavirus infection alters splicing of the stress-related transcription factor XBP1. Journal of Virology. 93 (5), 01739-01818 (2019).
  21. Philip, A. A., et al. Generation of recombinant rotavirus expressing NSP3-UnaG fusion protein by a simplified reverse genetics system. Journal of Virology. , 1616-1619 (2019).
  22. Papa, G., et al. Recombinant rotaviruses rescued by reverse genetics reveal the role of NSP5 hyperphosphorylation in the assembly of viral factories. Journal of Virology. , (2019).
  23. Komoto, S., et al. Reverse genetics system demonstrates that rotavirus nonstructural protein NSP6 is not essential for viral replication in cell culture. Journal of Virology. 91 (21), 00695-00717 (2017).
  24. Philip, A. A., et al. Collection of recombinant rotaviruses expressing fluorescent reporter proteins. Microbiology Resource Announcements. 8 (27), 00523-00619 (2019).
  25. Kanai, Y., et al. Development of stable rotavirus reporter expression systems. Journal of Virology. , 01774-01818 (2019).
  26. Donnelly, M. L., et al. The ‘cleavage’ activities of foot-and-mouth disease virus 2A site-directed mutants and naturally occurring ‘2A-like’ sequences. Journal of General Virology. 82, 1027-1041 (2001).
  27. Kumagai, A., et al. A bilirubin-inducible fluorescent protein from eel muscle. Cell. 153, 1602-1611 (2013).
  28. Rodriguez, E. A., et al. The growing and glowing toolbox of fluorescent and photoactive proteins. Trends in Biochemical Sciences. 42, 111-129 (2017).
  29. Buchholz, U. J., Finke, S., Conzelmann, K. K. Generation of bovine respiratory syncytial virus (BRSV) from cDNA: BRSV NS2 is not essential for virus replication in tissue culture, and the human RSV leader region acts as a functional BRSV genome promoter. Journal of Virology. 73, 251-259 (1999).
  30. Centers for Disease Control and Prevention (CDC). . Biosafety in microbiological and biomedical laboratories (BMBL), 5th edition. , (2009).
  31. Arnold, M., Patton, J. T., McDonald, S. M. Culturing, storage, and quantification of rotaviruses. Current Protocols in Microbiology. 15 (1), (2009).
  32. Benureau, Y., Huet, J. C., Charpilienne, A., Poncet, D., Cohen, J. Trypsin is associated with the rotavirus capsid and is activated by solubilization of outer capsid proteins. Journal of General Virology. 86 (11), 3143-3151 (2005).
check_url/61039?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Philip, A. A., Dai, J., Katen, S. P., Patton, J. T. Simplified Reverse Genetics Method to Recover Recombinant Rotaviruses Expressing Reporter Proteins. J. Vis. Exp. (158), e61039, doi:10.3791/61039 (2020).

View Video