Summary

Yetişkin Sıçan İdrar Kesesinden Primer Nöronların ve Gliaların İzolasyonu ve Kültürü

Published: May 23, 2020
doi:

Summary

Bu protokol, birincil nöronlar için tekrarlanabilir bir protokol oluşturmaya ve daha fazla hücresel deney için sıçan mesanesinden glia izolasyonu oluşturmaya çalışır.

Abstract

Alt idrar yolu, periyodik idrar depolama ve miktürasyon olmak üzere iki ana işleve sahiptir; bu fonksiyonlar merkezi ve periferik nöroregülasyon yoluyla aracılık edilir. Alt idrar yolu sinir sistemi hakkında kapsamlı araştırmalar yapılmış olmasına rağmen, çoğu çalışma birincil kültüre odaklanmıştır. Bu protokol, Sprague-Dawley sıçanlarından mesane nöronlarının ve glialarının izolasyonu ve kültürü için bir yöntem sunar. Bu yöntemde nöronlar ve glialar 5-7 gün boyunca 37 °C,%5 CO 2 inkübatörde inkübe edildi. Sonuç olarak, ilgili sonraki immünofluoresans deneyleri için uygun olgun şekillere dönüştüler. Hücreler morfolojik olarak optik mikroskop kullanılarak gözlendi. Nöronlar, sinaptik veziküller ve glia sırasıyla β-III-tubulin ve MAP-2, Synapsin-1 ve GFAP boyama ile tanımlanmıştır. Bu arada, immünosistokimya kolin asetiltransfenaz, DYNLL2 ve SLC17A9 gibi nörotransmitter ile ilgili çeşitli proteinler üzerinde yapıldı.

Introduction

Alt idrar yollarının iki ana işlevi vardır: periyodik idrar depolama ve miktürasyon1. Alt idrar yolu sinir sistemi (LUTNS) bu fonksiyonları kontrol eder ve hassas ve birçok nöropatiye duyarlıdır, doğuştan gelen (porfiri), edinilmiş (Lyme hastalığı), hastalık durumlarına ikincil (diyabetik sistopati), ilaca bağlı (hemorajik sistit), neden olduğu ameliyat (abdominoperineal rezeksiyon) veya yaralanma (travmatik omurilik yaralanması)2, 3,4,5,6,7olabilir. Fizyolojik/patolojik çalışmalarda in vivo ve in vitro deneyler de aynı derecede önemlidir. LUTNS ile ilgili in vivo araştırmalar bir süredir organ, hücresel ve moleküler düzeylerde yapılırken, idrar kesesinden birincil nöronlar üzerinde in vitro araştırmalar yok denecek kadarazdır 8,9. Mevcut çalışma sınırlı olsa da, diğer araştırmacıların geliştirebilmesi için bu alandaki araştırmalara öncülük etmeyi umuyoruz. Bu şekilde, bu ortak kültür, mesane nöron disfonksiyonu gibi fenotiplerdeki fizyolojik disfonksiyonun hücresel olarak anlaşılmasına yol açabilir.

Kas hücrelerinin ayrık katmanlara açık bir yönüne sahip enterik kasların aksine, mesanenin kasları örgütsüz10. Bu nedenle, bu yöntem mesanenin dış tabakasını soymak yerine, çalışma zorlığını azaltmak ve yüksek hücre sağkalım oranı için ön işlem süresini kısaltmak için tüm mesaneyi sindirmeyi önerir.

Bu yöntemi izleyerek, nöronların ve diğer hücrelerin karışık bir kültürünü elde edebiliriz. Diğer hücreler vazgeçilmezdir, çünkü varlıkları bir in vivo ortamı taklit eder11. Ek olarak, bu tür hücreler ortamda bulunmayan maddeleri sağlar.

Bu yöntem sindirim için iki adım içerir. İlk olarak, kollajen tip II, kollajeni hidroliz yapmak için kullanılır, ardından tripsin, dokuyu hücrelere dağıtmak için10. Bu şekilde, mesane dokuları tek hücrelere dağılır ve daha sonra nispeten bağımsız büyür. Nöronların kültürü olgunlaştığında, nöronlar görüntüleme veya fonksiyonel tahliller için kullanılabilir.

Protocol

Tüm deneysel protokoller ve hayvan prosedürleri Ulusal Araştırma Konseyi’nin etik ilke yönergelerine uygun olarak yapıldı. 1. Malzemelerin hazırlanması Deneyi yapmadan önce bir otoklav kullanarak tüm aletleri ve ddH2O’yu sterilize edin. Aletler cerrahi makas, oftalmik makas, hardallar, kaşık çekirdeği bölücü, cam tabaklar (60-100 mm çapında) ve cam kırıcılar içerir ancak bunlarla sınırlı değildir. Krebs çözeltisini aşağıdaki gibi …

Representative Results

Birincil hücre kültürü sürecinde, elde edilen hücreler ekli durumdan önce parlak ve net sınırlarla yuvarlaktı. Nöronlar büyüdükçe dendritler ve aksonlar farklı olmaya başladı. 5-7 günlük kültürden sonra, nöronlar görüntüleme veya fonksiyon çalışmaları için ideal olan uzun projeksiyonlarla olgun bir forma ulaştılar. Değişen ortam nedeniyle safsızlıkların ve hücre kalıntılarının çoğu giderilebilse de poli-D lizin ve laminin kaplamaya bağlı bazı kalıntılar görülebiliyordu<…

Discussion

Plaka Hazırlama
İmmünofluoresan veya kalsiyum görüntüleme deneyleri için 6, 12 veya 48 kuyulu kültür plakalarında cam kapakların kullanılması ekonomik ve örneklemsiz bir işlemdir. Hücreler, birincil hücre kültürlerinin hazırlanması sırasında kapaksız plakalarda iyi büyür. Bu nedenle, kapaklar Batı blot veya polimeraz zincir reaksiyonu gibi deneylerde dağıtılabilir. Ayrıca, kaplama, kapaklı veya kapaksız hücreleri kaplamadan önce gerekli bir adımdır. Laminin ve poli…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışma Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı (Grant no. 81673676) ve Dongguan Bilim ve Teknoloji Bürosu (Grant no. 2019622101002) tarafından desteklendi. Yazarlar teknik danışmanlık için Dr. Maryrose Sullivan’a (Harvard Tıp Fakültesi Cerrahi Yardımcı Doçenti) teşekkür eder.

Materials

0.25% trypsin Gibico 15050065 Enzyme digestion
48-well culture plate Corning 3548 Coating dish
antibiotic/antimycotic Gibico 15240062 Culture media/Rinse media
Anti-Glial Fibrillary Acidic Protein Antibody Santa Cruz sc-33673 ICC
B-27 Gibico 17504044 Culture media
BSA Fraction V Gibico 332 Enzyme digestion
Choline Acetyltransferase Antibody Abcam ab18736 ICC
CO2 Incubator Heraeus B16UU Cells culture
Collagenase type II Sigma 2593923 Enzyme digestion
DMEM/F-12 Gibico 11330032 Rinse media
DYNLL2 Antibody Santa Cruz sc-13969 ICC
Fetal Bovine Serum Gibico 10100147 Culture media/Rinse media
Forceps Shanghai Jin Zhong Medical Devices 1383 10 cm; Sterile operation
Glass breakers Huan Qiu Medical Devices 1101 50 ml; Sterile operation
Glass coverslips WHB Scientific WHB-48-CS Coating dish
Glass dishes Huan Qiu Medical Devices 1177 100 mm; Sterile operation
Goat Anti-Rat IgG(H+L), Mouse ads-Alexa Fluor 488 Southernbiotech 3050-30 ICC
Goat Anti-Rat IgG(H+L), Mouse ads-Alexa Fluor 555 Southernbiotech 3050-30 ICC
Hoechst 33342 BD 561908 ICC
Laminar flow bench Su Jie Medical Devices CB 1400V Sterile operation
Laminin Sigma L2020 Coating dish
L-glutamine Gibico 25030081 Culture media
MAP-2 Antibody Affinity AF5156 ICC
Murine GDNF Peprotech AF45044 Culture media
Neurobasal-A Medium Gibico 10888022 Culture media
Ophthalmic scissors Shanghai Jin Zhong Medical Devices J21010 12.5 cm; Sterile operation
Pipettes Eppendorf 3120000240 100-1000 ul; Reagent and sample pipetting
Pipettes Eppendorf 3120000267 10-100 ul; Reagent and sample pipetting
Poly-D-lysine Sigma P7280 Coating dish
Refrigerated centrifuge Ping Fan Instrument TGL-16A Enzyme digestion
Shaking incubator Haimen Kylin-Bell Lab Instruments T8-1 Enzyme digestion
SLC17A9 Antibody MBL International BMP079 ICC
Spoons nucleus divider Shanghai Jin Zhong Medical Devices YZR030 12 cm; Sterile operation
Substance P Antibody Santa Cruz sc-58591 ICC
Surgical scissors Shanghai Jin Zhong Medical Devices J21130 16 cm; Sterile operation
Surgical towel Fu Kang Medical Devices 5002 40 x 50 cm; Sterile operation
Synapsin-1 Antibody CST 5297T ICC
Tubulin beta Antibody(β-III-tubulin) Affinity AF7011 ICC

References

  1. Fowler, C. J., Griffiths, D., de Groat, W. C. The neural control of micturition. Nature Reviews Neuroscience. 9 (6), 453-466 (2008).
  2. Golbidi, S., Laher, I. Bladder dysfunction in diabetes mellitus. Frontiers in Pharmacology. 1, 136 (2010).
  3. Iwasawa, E., et al. Long-term Effects of Intravenous Cyclophosphamide in Combination with Mesna Provided Intravenously and via Bladder Perfusion in a Patient with Severe Multifocal Motor Neuropathy. Internal Medicine. 56 (14), 1893-1896 (2017).
  4. Lange, M. M., van de Velde, C. J. Urinary and sexual dysfunction after rectal cancer treatment. Nature Reviews. Urology. 8 (1), 51-57 (2011).
  5. Lin, C. S., et al. Nerve function and dysfunction in acute intermittent porphyria. Brain. 131, 2510-2519 (2008).
  6. Rantell, A., et al. What is the utility of urodynamics, including ambulatory, and 24 h monitoring, in predicting upper urinary tract damage in neuro-urological patients and other lower urinary tract dysfunction? ICI-RS 2017. Neurourology and Urodynamics. 37, 25-31 (2018).
  7. Halperin, J. J. Diagnosis and management of Lyme neuroborreliosis. Expert Review of Anti-Infective Therapy. 16 (1), 5-11 (2018).
  8. Walter, M., et al. Reliability of supraspinal correlates to lower urinary tract stimulation in healthy participants – A fMRI study. Neuroimage. 191, 481-492 (2019).
  9. Leitner, L., et al. A novel infusion-drainage device to assess lower urinary tract function in neuro-imaging. BJU International. 119 (2), 305-316 (2017).
  10. Smith, T. H., Ngwainmbi, J., Grider, J. R., Dewey, W. L., Akbarali, H. I. An in-vitro preparation of isolated enteric neurons and glia from the myenteric plexus of the adult mouse. Journal of Visualized Experiments. (78), e50688 (2013).
  11. Gordon, J., Amini, S., White, M. K. General overview of neuronal cell culture. Methods in Molecular Biology. 1078, 1-8 (2013).
  12. Roppongi, R. T., Champagne-Jorgensen, K. P., Siddiqui, T. J. Low-Density Primary Hippocampal Neuron Culture. Journal of Visualized Experiments. (122), e55000 (2017).
  13. Arms, L., Vizzard, M. A. Neuropeptides in lower urinary tract function. Handbook of Experimental Pharmacology. (202), 395-423 (2011).
  14. Moriyama, Y., Hiasa, M., Sakamoto, S., Omote, H., Nomura, M. Vesicular nucleotide transporter (VNUT): appearance of an actress on the stage of purinergic signaling. Purinergic Signal. 13 (3), 387-404 (2017).
  15. Chaudhury, A., He, X. D., Goyal, R. K. Myosin Va plays a key role in nitrergic neurotransmission by transporting nNOSα to enteric varicosity membrane. American journal of physiology. Gastrointestinal and Liver Physiology. 301 (3), 498-507 (2011).
  16. Le Berre-Scoul, C., et al. A novel enteric neuron-glia coculture system reveals the role of glia in neuronal development. The Journal of Physiology. 595 (2), 583-598 (2017).
  17. Hayashi, H., Yamada, M., Kumai, J., Takagi, N., Nomizu, M. Biological activities of laminin-111-derived peptide-chitosan matrices in a primary culture of rat cortical neurons. Archives of Biochemistry and Biophysics. 648, 53-59 (2018).
  18. Bottenstein, J. E., Sato, G. H. Growth of a rat neuroblastoma cell line in serum-free supplemented medium. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 76 (1), 514-517 (1979).
  19. Brewer, G. J., Torricelli, J. R., Evege, E. K., Price, P. J. Optimized Survival of Hippocampal Neurons in B27-Supplemented Neurobasalm, a New Serum-free Medium Combination. Journal of Neuroscience Research. 35 (5), 567-576 (1993).
  20. Kaech, S., Banker, G. Culturing hippocampal neurons. Nature Protocols. 1 (5), 2406-2415 (2006).
  21. Georgas, K. M., et al. An illustrated anatomical ontology of the developing mouse lower urogenital tract. Development. 142 (10), 1893-1908 (2015).
  22. Adam, M., Potter, A. S., Potter, S. S. Psychrophilic proteases dramatically reduce single-cell RNA-seq artifacts: a molecular atlas of kidney development. Development. 144 (19), 3625-3632 (2017).
check_url/61177?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Wang, R., Huang, Z., Ren, W., Zhang, J., Zhang, Y., Tan, B., Huang, P., Cao, H. Isolation and Culture of Primary Neurons and Glia from Adult Rat Urinary Bladder. J. Vis. Exp. (159), e61177, doi:10.3791/61177 (2020).

View Video