该协议的重点是通过磨损破坏斑马鱼的眼表面,以评估细胞水平上随后的伤口闭合。这种方法利用眼毛刺来部分去除角膜上皮,并使用扫描电子显微镜来跟踪伤口闭合过程中细胞形态的变化。
作为眼睛的透明表面,角膜有助于清晰的视力。由于其位置,这种组织容易受到环境侮辱。事实上,临床上最常遇到的眼部损伤是角膜损伤。虽然角膜伤口愈合已经在小型哺乳动物(即小鼠,大鼠和兔子)中进行了广泛的研究,但角膜生理学研究忽略了其他物种,包括斑马鱼,尽管斑马鱼是一种经典的研究模型。
本报告描述了一种对斑马鱼进行角膜擦伤的方法。伤口在 体内 使用眼毛刺在麻醉鱼身上进行。这种方法允许可重复的上皮伤口,使眼睛的其余部分完好无损。擦伤后,在3小时的过程中监测伤口闭合,之后伤口再上皮化。通过使用扫描电子显微镜,然后进行图像处理,可以研究上皮细胞的形状和顶端突起,以研究角膜上皮伤口闭合过程中的各个步骤。
斑马鱼模型的特征允许研究上皮组织生理学和上皮细胞在组织受到挑战时的集体行为。此外,使用剥夺泪膜影响的模型可以产生关于角膜对压力反应的新答案。最后,该模型还允许描绘受物理伤口的任何上皮组织中涉及的细胞和分子事件。该方法可应用于临床前试验中药物有效性的评价。
由于大多数上皮细胞与外部环境接触,它们容易受到身体伤害,因此非常适合研究伤口愈合过程。在经过充分研究的组织中,角膜是研究伤口愈合的细胞和分子方面的一个非常有用的模型。作为一个透明的外表面,它为眼睛提供物理保护,是将光线聚焦到视网膜上的第一个元素。虽然视网膜的结构和细胞组成在物种1之间不同,但角膜的这些元素在所有相机型眼睛中通常都是相似的,无论物种如何。
角膜由三个主要层组成2。第一层和最外层是上皮,它不断更新以确保其透明度。第二层是基质,它含有分散的细胞,称为角质细胞,在一层厚厚的严格组织的胶原纤维中。第三层也是最内层是内皮,它允许营养物质和液体从前室扩散到外层。上皮细胞和基质细胞通过生长因子和细胞因子相互作用3。这种相互作用通过上皮损伤后角质细胞的快速凋亡和随后的增殖4,5而突出。在更深的伤口的情况下,例如穿刺,角质细胞积极参与愈合过程6。
与外部环境接触,角膜身体损伤很常见。其中许多是由小异物7引起的,例如沙子或灰尘。揉眼的反射可导致广泛的上皮擦伤和角膜重塑8.根据伤口的大小和深度,这些身体伤害是痛苦的,需要几天才能愈合9。模型的最佳伤口愈合特性有助于理解伤口闭合的细胞和分子方面。此外,这些模型也被证明可用于测试具有加速角膜愈合潜力的新分子,如前所述10,11。
这里描述的方案旨在使用斑马鱼作为研究角膜物理损伤的相关模型。该模型对于药理学筛选研究非常方便,因为它允许将分子直接添加到罐水中,从而与愈合的角膜接触。这里提供的细节将帮助科学家对斑马鱼模型进行研究。体内损伤是用暗沉的眼毛刺进行的。对毗邻或远离它的上皮细胞的影响可以通过特异性去除中央角膜上皮来分析。近年来,许多关于啮齿动物角膜的方法的报道集中在12,13,14,15,16,17上;然而,到目前为止,只有一份报告将这种方法应用于斑马鱼18。
由于其简单性,物理伤口有助于描绘上皮细胞在伤口闭合中的作用。角膜损伤的另一个公认模型是化学烧伤,特别是碱烧伤19,20,21。然而,这种方法间接损害整个眼表面,包括外周角膜和角膜基质19。事实上,碱性烧伤可能诱发角膜溃疡、穿孔、上皮混浊和快速新生血管形成22,碱烧伤的不可控结果使该方法不符合一般伤口愈合研究的资格。根据所讨论研究的特定重点,还使用许多其他方法来研究角膜伤口愈合(例如,完全上皮清创23,部分厚度伤口24的化学和机械损伤的组合,延伸到基质25的伤口的准分子激光消融)。眼毛刺的使用将焦点限制在对伤口的上皮反应上,并提供高度可重复的伤口。
与每种伤口施加方法一样,使用眼毛刺有优点和缺点。主要缺点是反应大多是上皮性的,它不能完美地反映临床环境中看到的擦伤。然而,这种方法具有许多优点,包括易于设置和执行,其精度,可重复性以及它是非侵入性的事实,使其成为动物耐受性良好的方法。
角膜物理损伤是眼科患者就诊的最常见原因。因此,建立相关模型以研究角膜病理生理学的不同方面非常重要。到目前为止,小鼠是研究角膜伤口愈合的最常用模型。然而,在鼠伤的眼睛上添加眼药水以验证特定药物对角膜伤口愈合的影响可能很困难。在这方面,斑马鱼模型对于影响角膜伤口愈合的分子的药理学筛选特别有用。这里描述的方法与为鼠标13描述的方法非常相似。</…
The authors have nothing to disclose.
作者感谢Pertti Panula访问斑马鱼单元,并感谢Henri Koivula对斑马鱼实验的指导和帮助。这项研究得到了芬兰科学院,Jane and Aatos Erkko基金会,芬兰文化基金会和ATIP-Avenir计划的支持。成像在生物技术研究所的电子显微镜部门和光学显微镜部门进行,由HiLIFE和芬兰生物中心支持。
0.1M Na-PO4 (sodium phosphate buffer), pH 7.4 | in-house | Solution is prepared from 1M sodium phosphate buffer (1M Na2HPO4 adjusted to pH 7.4 with 1M NaH2PO4). | |
0.2M Na-PO4 (sodium phosphate buffer), pH 7.4 | in-house | Solution is prepared from 1M sodium phosphate buffer (1M Na2HPO4 adjusted to pH 7.4 with 1M NaH2PO4). | |
0.5mm burr tips | Alger Equipment Company | BU-5S | |
1M Tris, pH 8.8 | in-house | ||
adhesive tabs | Agar Scientific | G3347N | |
Algerbrush burr, Complete instrument | Alger Equipment Company | BR2-5 | |
Cotton swaps | Heinz Herenz Hamburg | 1030128 | |
Dissecting plate | in-house | ||
Dissecting tools | Fine Science Tools | ||
double-distilled water | in-house | ||
Eppedorf tubes, 2ml | any provider | ||
Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate salt | Sigma | A5040 | Caution: causes irritation. |
Glutaraldehyde, 50% aqueous solution, grade I | Sigma | G7651 | Caution: toxic. |
Lidocaine hydrochloride | Sigma | L5647 | Caution: toxic. |
mounts | Agar Scientific | G301P | |
Petri dish | Thermo Scientific | 101VR20 | |
pH indicator strips | Macherey-Nagel | 92110 | |
Plastic spoons | any provider | ||
Plastic tubes, 15 ml | Greiner Bio-One | 188271 | |
Plastic tubes, 50 ml | Greiner Bio-One | 227261 | |
Scanning electron microscope | FEI | Quanta 250 FEG | |
Soft sponge | any provider | ||
Sputter coater | Quorum Technologies | GQ150TS | |
Stereomicroscope | Leica |