Summary

CRISPR を介した損失関数における小脳顆粒細胞のエレクトロポレーション法による遺伝子導入の子宮内を使用して

Published: June 09, 2018
doi:

Summary

ノックアウト動物を用いた遺伝子の機能喪失従来は、高価で時間のかかる多くの場合されています。CRISPR 媒介体細胞突然変異誘発のエレクトロポレーション ベースは遺伝子の生体内の機能を理解するための強力なツールです。小脳の細胞増殖にノックアウトの表現型を解析する手法を報告する.

Abstract

脳の奇形はしばしば遺伝の突然変異によって引き起こされます。解読患者由来組織の突然変異は病気の潜在的な原因となる要因を識別しています。発病する変異遺伝子の機能不全の貢献度を検証するため、突然変異を運ぶ動物モデルの生成はわかりやすいアプローチの 1 つです。生殖細胞系遺伝子組み換えマウス モデル (GEMMs) 人気のある生物学的ツールと再現性のある結果を展示、それは時間とコストによって制限されています。一方、非生殖 GEMMs は、しばしばより現実的な方法で探索の遺伝子機能を有効にします。いくつかの脳から体に起因する病気 (例えば、脳腫瘍) が見えて、ない生殖細胞系突然変異、非生殖細胞キメラ マウス モデル、正常と異常な細胞が共存疾患関連する分析のために有用かもしれない。本研究では、小脳に CRISPR 媒介体細胞突然変異の誘導法を報告します。具体的には、利用条件付きノックアウトのマウス、 Cas9GFPの慢性的なアクティブ化するCAG (CMV エンハンサー/鶏 β-アクチン) プロモーターでCre後-ゲノムの組換えを介した。自己設計されていたシングル ガイド Rna (sgRNAs) と単一プラスミド構築でエンコードされた両方 Cre リコンビナーゼ シーケンスは、子宮内でエレクトロポレーションを使用して萌芽期の段階で小脳幹/前駆細胞に渡されました。その結果、transfected セルおよびその娘細胞は緑色蛍光タンパク質 (GFP) ため、さらに表現型解析が容易で付けられました。したがって、このメソッドは、胚性小脳細胞へのエレクトロポレーション法による遺伝子導入を示すだけでなく、また CRISPR 媒介機能喪失の表現型を評価する定量的手法を提案します。

Introduction

脳疾患は、最も恐ろしいの致命的な病気の一つです。彼らはしばしば起因遺伝的変異とその後破綻。脳疾患の分子機構を理解するには、人間の患者のゲノムを解読する永遠に続く努力は、潜在的な原因となる遺伝子の数を発見しました。これまでのところ、体内の利得の機能 (GOF) とそのような候補者の遺伝子の機能喪失 (LOF) 解析の生殖細胞系遺伝子組み換え動物モデルが利用されています。機能検証研究の加速の開発によりより実現可能で柔軟な生体内遺伝子アッセイ系遺伝子の機能を研究するためお勧めします。

マウス脳の発達する生体内でエレクトロポレーションを用いた遺伝子伝達システムのアプリケーションは、この目的に適しています。実際、子宮内エレクトロポレーションを使用していくつかの研究は、発展途上の脳1,2,3の機能解析を行うことの可能性を示しています。実際には、マウスの脳、大脳皮質4網膜5間脳67菱脳、小脳8脊髄9などのいくつかの地域は、体細胞の遺伝子導入による対象となっています。これまでアプローチ。

確かに、マウス萌芽期の脳に生体内でエレクトロポレーションによる一時的な遺伝子発現は GOF 分析のため長い間使用されています。さらに最近のトランスポゾンを用いたゲノム統合技術有効利息10,11, 遺伝子の長期および/または条件式中に空間的で、一時的な方法で遺伝子機能を解剖に有利であります。開発。GOF 解析と対照をなして LOF 分析は難しくされています。Sirna と shRNA 運ぶプラスミドのトランスフェクションが実行されますが、外因に導入された核酸、プラスミドなど二本の最終的な劣化による遺伝子の LOF の長期効果は保証されません。ただし、LOF 解析におけるブレークスルー CRISPR/Cas 技術を提供します。蛍光蛋白質 (例えばGFP) または (例えばホタルのルシフェラーゼ) の発光タンパク質をコードする遺伝子は、CRISPR Cas9 と sgRNAs CRISPR Cas9 媒介体細胞突然変異の細胞をラベルする co transfected されて持っています。それにもかかわらず、このアプローチ制限機能研究では増殖細胞外因性マーカー遺伝子を希釈し、長期的な増殖後低下するので。Transfected セルおよびその娘細胞は、CRISPR による突然変異、ゲノムを受ける中、彼らの足跡を時間をかけて失われて得るかもしれない。したがって、遺伝的ラベリングのアプローチはこの問題を克服するために適当でしょう。

我々 は最近、分化12長期的な増殖を受ける小脳顆粒細胞における CRISPR ベース LOF 方式を開発しました。遺伝子 transfected セルにラベルを付ける、 Creと共に sgRNA を運ぶプラスミドを構築し、Rosa26-CAG-LSL-Cas9-P2A-EGFP マウス13 子宮内エレクトロポレーションを用いた小脳にプラスミドを導入します。異なり、通常のプラスミッドのベクトルは EGFP をエンコード、このアプローチ ラベル付け transfected 顆粒ニューロン前駆体 (GNPs) とその娘細胞。このメソッドは、通常の脳の発達と腫瘍が発生しやすい背景における増殖細胞に興味の遺伝子の生体内で機能を理解する上で素晴らしいサポートを提供します。

Protocol

すべての動物実験は動物福祉規則に従って実施し、責任がある権限によって承認されている (Regierungspräsidium カールスルーエ、承認番号: G133/14、G48/14、G32/14 G176/13 G90/13)。 1. pU6-sgRNA-Cbh-Cre プラスミドを生成します。 以前に発行されたプロトコル14によると – 興味の遺伝子を対象とする sgRNA をデザインします。注: この実験では、2 つの sgRNAs マ?…

Representative Results

生体内機能解析、外因性遺伝子が導入された細胞を識別するために重要です。マーカーの表現は、非増殖細胞における GFP でくフォロー アップの時間の長い期間のような信号は細胞増殖に順番に失われます。この効果の実例は、図 1に示されています。LOF 分析 transfected セルのフット プリントを失うことを回避するために CRISPR/Cas9 技術と?…

Discussion

Exo 子宮エレクトロポレーションを使用すると、以前 siRNA ベースは生体内での機能解析 Atoh1 小脳顆粒の初期の段階で細胞分化8を報告した.SiRNA 希釈/劣化と子宮壁外胚の露出のため electroporated 顆粒細胞の表現型の分析は、胚の段階に限られていた。ただし、現在のメソッドは生後動物の表現型の分析を有効にします。

私たちの以前の研究を?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

テクニカル サポートにローラ ジーバー、アンナ Neuerburg、ヤシン ハリムとペトラ, を申し上げます。我々 もありがとう夫妻・ k ・ Reifenberg、k. デル、P. Prückl DKFZ; で動物実験の支援イメージング コアの施設、DKFZ とカール ツァイス イメージング センター、DKFZ 共焦点顕微鏡画像。この作品は、ドイツ研究振興協会、KA 4472/1-1 (に称えられ) によって支えられました。

Materials

Alexa 488 Goat anti-Chicken ThermoFisher A11039 1:400 dilution
Alexa 568 Donkey anti-Mouse Life Technologies A-10037 1:400 dilution
Alexa 594 Donkey anti-Rabbit ThermoFisher A21207 1:400 dilution
Alexa 647 Donkey anti-Rabbit Life Technologies A31573 1:400 dilution
Alkaline Phosphatase (FastAP) ThermoFisher EF0654
Autoclave band Kisker Biotech 150262
BamHI (HF) NEB R3136S
BbsI (FastDigest) ThermoFisher FD1014
Cellulose Filter Paper (Whatman) Sigma-Aldrich WHA10347525
Cloth Tork 530378
Confocal laser scanning microscope Zeiss LSM800
D-Luciferin biovision 7903-1
DAPI Sigma-Aldrich D9542 1:1000 dilution
Disposable plastic molds (Tissue-Tek Cyromold) VWR 4566
DMEM Glutamax ThermoFisher 31966047
Donkey serum Sigma-Aldrich D9663
EcoRI (HF) NEB R3101S
Electro Square Porator BTX ECM830
Endofree Maxi Kit Qiagen 12362
Ethanol Merck 107017
Eye ointment (Bepanthen) Bayer 81552983
Fast Green Merck 104022
FBS ThermoFisher 10270-016
Filter (0.22 µm) Merck F8148
Fluorescent cell imager (ZOE) Biorad 1450031
Forceps straight Fine Science Tools 91150-20
Gauze (X100 ES-pads 8f 10 x 10 cm) Fisher Scientific 15387311
GFP antibody Abcam ab13970 1:1000 dilution
Gibson Assembly Master Mix NEB E2611S
Glass Capillary with Filament Narishige GD1-2
Heating Pad ThermoLux 463265 / -67
Image Processing software (ImageJ and Fiji) NIH
Insulin syringe (B. Braun OMNICAN U-100) Carl Roth AKP0.1
Isoflurane Zoetis TU061219
IVIS Lumina LT Series III Caliper Perkin Elmer CLS136331
Kalt Suture Needles Fine Science Tools 12050-02
KAPA HIFI HOTSTART READY mix Kapa Biosystems KK2601
Ki67 antibody Abcam ab15580 1:500 dilution
Light Pointer Photonic PL3000
Liquid blocker pen Kisker Biotech MKP-1
Metamizol WDT
Microgrinder Narishige EG-45
Microinjector Narishige IM300
Micropipette Puller Sutter Instrument Co. P-97
Microscope software ZEN Zeiss
Non-sterile Silk Suture Thread (0.12 mm) Fine Science Tools 18020-50
O.C.T. Compound (Tissue-Tek) VWR 4583
p27 antibody BD bioscience 610241 1:200 dilution
Paraformaldehyde Roth 335.3
PBS (1x) Life Technologies 14190169
pCAG-EGxxFP Addgene 50716
Polyethylenimine Sigma-Aldrich 408727
pX330 plasmid Addgene 42230
QIAprep Spin Miniprep Kit Qiagen 27104
QIAquick Gel Extraction Kit Qiagen 28704
Quick Ligation Kit NEB M2200S
Ring Forceps Fine Science Tools 11103-09
Slides (SuperFrost) ThermoFisher 10417002
Software for biostatistics (Prism 7) GraphPad Software, Inc
Spitacid EcoLab 3003840
Stereomicroscope Nikon C-PS
Sucrose Sigma-Aldrich S5016
Surgical scissors Fine Science Tools 91460-11
Surgical scissors with blunt tip Fine Science Tools 14072-10
Suture (Supramid schwarz DS 16, 1.5 (4/0)) SMI 220340
T4 DNA Ligation Buffer NEB B0202S
T4 PNK NEB M0201S
Tissue scissors Blunt (11.5 cm) Fine Science Tools 14072-10
TOP2B antibody Santa Cruz sc13059 1:200 dilution
Trypsin (2.5 %) ThermoFisher 15090046
Tweezers w/5mm Ø disk electrodes Platinum Xceltis GmbH CUY650P5
Vaporizer Drägerwerk AG GS186

References

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Citer Cet Article
Feng, W., Herbst, L., Lichter, P., Pfister, S. M., Liu, H., Kawauchi, D. CRISPR-mediated Loss of Function Analysis in Cerebellar Granule Cells Using In Utero Electroporation-based Gene Transfer. J. Vis. Exp. (136), e57311, doi:10.3791/57311 (2018).

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