Aquí presentamos los protocolos de la ecocardiografía para la adquisición de la imagen bidimensional y tridimensional del corazón de la Salamandra axolotl (Ambystoma mexicanum), una especie de modelo en la regeneración del corazón. Estos métodos permiten una evaluación longitudinal de la función cardiaca con una alta resolución espaciotemporal.
Mal funcionamiento cardiaco como resultado de enfermedad isquémica del corazón es un gran desafío, y terapias regenerativas del corazón están en alta demanda. Algunas especies de modelo como el pez cebra y salamandras que son capaces de regeneración intrínseca del corazón son prometedoras para futuras terapias regenerativas para pacientes humanos. Para evaluar el resultado de experimentos de cardioregenerative es imprescindible que puede controlarse la función cardíaca. La Salamandra axolotl (a. mexicanum) representa una especie de modelo bien establecido en la biología regenerativa alcanzar tamaños que permite la evaluación de la función cardiaca. El propósito del presente Protocolo es establecer métodos para reproducible medir función cardiaca en el ajolote mediante ecocardiografía. La aplicación de diferentes anestésicos (benzocaína, MS-222 y propofol) está demostrado, y se describe la adquisición de dos dimensiones (2D) datos ecocardiográficos en axolotl anestesiados y sin anestesiar. La ecocardiografía 2D del corazón tridimensional (3D) puede sufrir de imprecisión y subjetividad de las mediciones y para aliviar este fenómeno un método sólido, es decir, intra/inter-operator/observador análisis, para medir y reducir al mínimo este sesgo es demostrado. Por último, se describe un método para adquirir datos ecocardiográficos 3D del corazón de ajolote con una muy alta resolución espaciotemporal y pronunciado contraste de la sangre al tejido. En general, este protocolo debe proporcionar los métodos necesarios para evaluar la función cardiaca y la anatomía de la modelo y dinámica en el ajolote usando proyección de imagen de ultrasonido con aplicaciones en biología regenerativa y experimentos fisiológicos generales del flujo.
Cardiopatía isquémica es la principal causa de muerte en todo el mundo1,2. Aunque muchos sobreviven un infarto del miocardio debido a la intervención médica rápida y afinado, incidentes isquémicos en los seres humanos se conducen a menudo a cicatrices fibróticas asociadas con hipertrofia, avería eléctrica y una capacidad funcional disminuida del corazón . Esta falta de potencial regenerativo del tejido cardiaco es compartida entre mamíferos y aunque controvertidas afirmaciones de mamífera Regeneración cardiaca se han divulgado, estos se han limitado a cepas murinas específicas3,4 y tratar la hipoxia ratones5. Así, el campo de la biología y la medicina regenerativa cardíaca es generalmente limitado a los modelos animales no mamíferos para estudiar los fenómenos regenerativos intrínsecos del corazón. El pez cebra (Danio rerio) en la última década se estableció como el modelo más bien caracterizado para corazón intrínseca regeneración6,7,8,9,10 . Debido a mantenimiento de laboratorio fácil, un tiempo de generación corto y una amplia gama de herramientas moleculares disponibles, el pez cebra es adaptado como modelo de mecanismos genéticos y moleculares subyacentes el desarrollo cardíaco y regeneración. Sin embargo, las dimensiones minutos del corazón del pez cebra hacen menos adecuado para la evaluación funcional, y procedimientos quirúrgicos complicados y la filogenia no tetrápodo del pez cebra limita la extrapolación razonable de los resultados en esta especie, así justificar el uso de otros modelos más grandes tetrápodos. Uno de los primeros modelos de regeneración del corazón vertebrados fue un anfibio caudado, el newt del este (Notophthalmus viridescens)11, una especie que sigue siendo un modelo valioso de12.
En los últimos años otro anfibio caudado, el ajolote mexicano (a. mexicanum) ha entrado en la escena como un grande (hasta 100 g de cuerpo total) y altamente laboratorio adaptable modelo animal para una amplia gama de disciplinas regenerativas que regeneración de extremidades, lesión de la médula espinal y regeneración cardiaca13,14,15,16,17. El ajolote es altamente susceptible de mediciones funcionales en el corazón utilizando la ecocardiografía de alta frecuencia y la ausencia de estructuras calcificadas en el lado ventral del corazón permite ultrasonido proyección de imagen con un nivel mucho más bajo de los artefactos de la imagen (acústicos sombras y reverberación en particular) que la observada en otros animales modelo calcificado esternón y las costillas.
El siguiente protocolo describe varios diferentes métodos y preparaciones (figura 1, figura 2) para la adquisición de mediciones ecocardiográficas reproducibles en el corazón de ajolote en ambos anestesiados (aplicación de tres diferentes anestésicos: benzocaína, MS-222 y propofol) y sin anestesiar animales en dos (figura 3, figura 4, figura 5, figura 6, figura 7, Archivos complementarios 1-12) y tres (figura 8, figura 9, Archivos complementarios 13-14) dimensiones espaciales. El corazón de los anfibios es tres cámaras (dos aurículas y un ventrículo único). Las aurículas son suministradas por un gran seno venoso y el ventrículo se vacía en el tracto de salida del cono arterioso (figura 2). Puesto que la mayoría es tradicionalmente sobre regeneración ventricular y menos en la recuperación de atria6,7,8,9,10,11 , 12 , 14 , 17, este protocolo se centra principalmente en las mediciones de la función ventricular.
Ecocardiografía de anfibios no está bien descrita en la literatura, y el desarrollo de los métodos 2D se describe en este documento han sido expulsados por la necesidad de representar mejor la funcionalidad del corazón de ajolote en un momento dado y ajuste experimental. Así, los métodos aquí descritos son aplicables en los experimentos de regeneración de corazón donde función cardiaca puede ser supervisada varias veces sobre el curso de un proceso de regeneración. Además, los métodos pueden ser aplicados en experimentos de cardiophysiological con el ajolote en general o modificados levemente para abarcar otros modelos de anfibio caudados o anuros (e.g.,Xenopus). El Axolote existe en diversas variedades y variaciones del color (e.g., tipo salvaje, melanoid, blanco, albino, blanco transgénica con expresión de la proteína de fluorescencia verde), sin embargo estas características no afectan a la compatibilidad de la Axolote con el protocolo descrito. El método aquí descrito para adquirir datos ecocardiográficos 3D es una versión modificada de la técnica de correlación (STIC) imagen espacio-temporal para ultrasonido clínico y la cuadrática promedio método descrito anteriormente en el pollo en desarrollo a mejorar la señal de puntos de sangre en los tejidos blandos en las especies que contienen glóbulos rojos nucleados18,19. Este método permite el modelado avanzado de la contracción cardiaca y computada dinámica de fluidos en el corazón de ajolote.
Ecocardiografía en el ajolote y otras especies de animales no mamíferos produce fundamentalmente diferentes datos de la ecocardiografía de mamífero debido a la naturaleza nucleada de glóbulos rojos en todos los vertebrados excepto mamíferos adultos. Esto resulta en una señal de sangre pronunciado y menos sangre al tejido contraste en imágenes ecocardiográficas axolotl en comparación con e.g., ratón o humana ecocardiografía. Esto puede hacer segmentación de imágenes de ultrasonido solo más difícil…
The authors have nothing to disclose.
Nos gustaría reconocer Kasper Hansen, Instituto de biociencias, Universidad de Aarhus para proporcionar acceso y asistencia con el micromanipulador electrónico para adquisición ecocardiográfica 3D.
Axolotl (Ambystoma mexicanum) | Exoterra GmbH | N/A | All strains (wildtype, melanoid, white, albino, transgenic white with GFP) can be applied for echocardiography |
Vevo 2100 | Fujifilm, Visualsonics | Vevo 2100 | High frequency ultrasound system |
MS700 | Fujifilm, Visualsonics | MS700 | 50 MHz center frequency, transducer |
MS550s | Fujifilm, Visualsonics | MS550s | 40 MHz center frequency, transducer |
Micromanipulator | Zeiss | NA | |
Benzocain | Sigma-Aldrich | 94-09-7 | ethyl 4-aminobenzoate |
MS-222 | Sigma-Aldrich | 886-86-2 | ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonic acid |
Propofol | B. Braun Medical A/S | NA | 2,6-diisopropylphenol |
Sodium chloride | Sigma-Aldrich | 7647-14-5 | NaCl |
Calcium chloride dihydrate | Sigma-Aldrich | 10035-04-8 | CaCl2·2H2O |
Magnesium sulfate heptahydrate | Sigma-Aldrich | 10034-99-8 | MgSO4·7H2O |
Potassium chloride | Sigma-Aldrich | 7447-40-7 | KCl |
Acetone | Sigma-Aldrich | 67-64-1 | Propanone |
Soft cloth | N/A | N/A | Any piece of soft cloth measuring appromixately 70 x 55 cm^2 e.g. a dish towel |
Styrofoam block | N/A | N/A | Any piece of Styrofoam block measuring approximately 33 x 27 x 5 cm^3 e.g. a medium sized Styrofoam cooler lid |
Plastic wrap | N/A | N/A | Any piece of plastic wrap e.g. food wrap |
Tape | BSN Medical | 72359-02 | Leukoplast sleek |
Kimwipes | Sigma-Aldrich | Z188956 | Kimwipes, disposable wipers |
Excel 2010 | Microsoft | N/A | Excel 2010 or newer |
ImageJ | National Institutes of Health | ImageJ 1.5e or newer. Rasband, W.S., ImageJ, U. S. National Institutes of Health, Bethesda, Maryland, USA, https://imagej.nih.gov/ij/, 1997-2016. |