Summary

Kernisolatie van vers bevroren hersentumoren voor single-nucleus RNA-seq en ATAC-seq

Published: August 25, 2020
doi:

Summary

Intratumorale heterogeniteit is een inherent kenmerk van tumoren, waaronder gliomen. We ontwikkelden een eenvoudig en efficiënt protocol dat een combinatie van buffers en gradiëntcentrifugatie gebruikt om enkele kernen te isoleren uit vers bevroren glioomweefsels voor single nucleus RNA en ATAC-sequencingstudies.

Abstract

Volwassen diffuse gliomen vertonen inter- en intratumorale heterogeniteit. Tot voor kort waren de meeste grootschalige moleculaire profileringsinspanningen gericht op bulkbenaderingen die leidden tot de moleculaire classificatie van hersentumoren. In de afgelopen vijf jaar hebben single cell sequencing-benaderingen verschillende belangrijke kenmerken van gliomen benadrukt. De meerderheid van deze studies hebben verse hersentumormonsters gebruikt om afzonderlijke cellen te isoleren met behulp van flowcytometrie of op antilichamen gebaseerde scheidingsmethoden. In de toekomst zal het gebruik van vers ingevroren weefselmonsters uit biobanken meer flexibiliteit bieden voor toepassingen met één cel. Bovendien, naarmate het eencellige veld vordert, zal de volgende uitdaging zijn om multi-omics-gegevens te genereren van een enkele cel of hetzelfde monstervoorbereiding om de tumorcomplexiteit beter te ontrafelen. Daarom zullen eenvoudige en flexibele protocollen die gegevensgeneratie mogelijk maken voor verschillende methoden zoals single-nucleus RNA sequencing (snRNA-seq) en single nucleus Assay voor Transposase-Accessible Chromatin met high-throughput sequencing (snATAC-seq) belangrijk zijn voor het veld.

Recente ontwikkelingen op het gebied van eencellige cellen in combinatie met toegankelijke microfluïdische instrumenten zoals het 10x genomics-platform hebben eencellige toepassingen in onderzoekslaboratoria vergemakkelijkt. Om heterogeniteit van hersentumoren te bestuderen, ontwikkelden we een verbeterd protocol voor de isolatie van enkele kernen van vers bevroren gliomen. Dit protocol voegt bestaande eencellige protocollen samen en combineert een homogenisatiestap gevolgd door filtratie en buffergemedieerde gradiëntcentrifugatie. De resulterende monsters zijn zuivere enkelvoudige kernsuspensies die kunnen worden gebruikt om genexpressie- en chromatinetoegankelijkheidsgegevens van één kern te genereren uit hetzelfde kernpreparaat.

Introduction

Diffuse lagere graad gliomen (LGG), de meest voorkomende primaire hersentumor bij volwassenen, zijn infiltratieve neoplasmata die vaak ontstaan in de hersenhelft. LGG’s vertonen zowel inter- als intra-tumor heterogeniteit, die niet alleen wordt aangedreven door de tumorpopulatie, maar ook door de niet-kwaadaardige cellen die ingewikkeld betrokken zijn bij de ontwikkeling en progressie vantumoren 1,2,3,4,5.

In het afgelopen decennium is er een lawine van genomische gegevens verzameld op het gebied van gliomen. Deze gegevens zijn voornamelijk afkomstig van bulk tumor sequencing studies en hebben enorm bijgedragen aan de moleculaire karakterisering, en de huidige classificatie van hersentumoren5,6,7,8,9,10,11. Hoewel deze studies het brede moleculaire landschap onthulden dat geassocieerd is met gliomen, is er nog steeds een teleurstellend gebrek aan vooruitgang met betrekking tot therapeutische interventie. Een van de obstakels voor behandelingsresistentie bij hersentumoren is intra-tumor heterogeniteit. Om dit probleem aan te pakken, hebben verschillende studies zich gericht op de genomische, transcriptomische, proteomische en epigenetische heterogeniteit die aanwezig is in een tumor op een enkelcellig niveau12,13,14,15,16,17.

Hoewel er de afgelopen jaren opmerkelijke technologische vooruitgang is geboekt op het gebied van eencellige cellen, is een van de belangrijkste beperkende factoren de beschikbaarheid van verse monsters die nodig zijn om de cellen te isoleren en deze experimenten uit te voeren. Om deze beperking te overwinnen, zijn er verschillende succesvolle pogingen geweest om assays uit te voeren, zoals snRNA-seq en snATAC-seq van bevroren weefsels, met behulp van kernen in plaats van cellen18,19. De meeste van deze methoden zijn afhankelijk van fluorescentie-geactiveerde celsortering (FACS) of filtratiestrategieën. Zowel single cell als single nuclei benaderingen hebben hun sterke en nadelen. Eencellige benaderingen onderhouden mitochondriale transcripten, die, hoewel informatief kunnen zijn, ook de transcriptoomdekking kunnen verminderen vanwege hun hoge overvloed. Enkelvoudige kernisolatiebenaderingen elimineren een hoog percentage van de mitochondriale fractie, waardoor een meer diepgaande dekking van de nucleaire transcripten mogelijk is20.

Er zijn verschillende commercieel beschikbare platforms die de afgelopen jaren zijn gebruikt om gegevens over genomica met één cel te testen, waaronder RNA-seq en ATAC-seq. Een van de meest prominente platforms is het 10x Genomics Chromium-platform voor eencellige genexpressie en atac-profilering met één cel. Omdat het platform werkt met behulp van microfluïdische kamers, kunnen puin of aggregaten het systeem verstoppen, wat leidt tot verlies van gegevens, reagentia en waardevolle klinische monsters. Daarom hangt het succes van eencellige studies grotendeels af van de nauwkeurige isolatie van enkele cellen / kernen.

Het protocol dat we hierin zullen demonstreren, is een licht gewijzigde combinatie van de DroNc-seq- en Omni-ATAC-seq-protocollen en maakt gebruik van een vergelijkbare benadering van recente studies die snRNA-seq gebruiken om neurologische aandoeningen en neuronale celtypen in het menselijk brein te begrijpen18,19,21,22,23,24. Het protocol maakt gebruik van een combinatie van enzymatische / mechanische dissociatie van bevroren monsters gevolgd door filtratie en gradiëntcentrifugatie en maakt een snelle en nauwkeurige isolatie van enkele kernen van vers bevroren glioomweefsels mogelijk. We hebben dit protocol met succes gebruikt om snRNA-seq- en snATAC-seq-gegevens te genereren van hetzelfde kernpreparaat uit hersentumormonsters.

Protocol

Vers ingevroren glioommonsters werden verkregen van het National Center for Tumor diseases (NCT)-weefselbank in Heidelberg, Duitsland. Het gebruik van patiëntenmateriaal werd goedgekeurd door de Institutional Review Board van de Medische Faculteit van Heidelberg en geïnformeerde toestemming werd verkregen van alle patiënten die in de studie waren opgenomen. 1. Experimentele voorbereiding Voer alle stappen uit op ijs of bij 4 °C. Pre-chill tubes, schalen, scheermesjes, D…

Representative Results

Single nucleus genomics is een evoluerend veld met beperkte gegevens en protocollen. Een kritische factor die de uitkomst van enkelvoudige kernen assays beïnvloedt, is de isolatie van zuivere en intacte kernen. We combineerden twee gepubliceerde protocollen (DroNc-seq en Omni-ATAC-seq protocollen) om hoogwaardige en zuivere kernen te isoleren van vers ingevroren glioomweefselblokken in een relatief korte tijd, waardoor de stabiliteit van de transcripten behouden blijft(Figuur 1). <p cla…

Discussion

Het gebied van intra-tumorale heterogeniteit bevindt zich in een spannende fase, met nieuwe assays en platforms die worden ontwikkeld om de bestaande kennis uit te dagen en uit te breiden. Intratumorale heterogeniteit is een cruciale factor die bijdraagt aan ziekteprogressie en resistentie tegen de huidige behandelingsmodaliteiten bij gliomen28. Recente studies over hersentumoren hebben zich gericht op dit belangrijke aspect door gebruik te maken van transcriptomische en epigenomische assays met ?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We danken het Single Cell Open Lab (scOpenLab) van het Duitse kankercentrum (DKFZ) voor de nuttige discussies. Dit onderzoek werd ondersteund door het Duitse Cancer Aid, Max-Eder Program subsidienummer 70111964 (S.T.).

Materials

2-Mercaptoethanol Sigma M6250
CaCl2 Sigma 21115-100ML
Dounce Homogenizer Active motif 40401
EDTA (0.5 M) Thermo Scientific R1021
Falcon 5 mL Round Bottom Polystyrene Test Tube Corning 352235
Iodixanol (aka Optiprep) Stem cell technologies 07820
MACs Smart Strainers (30 µm) Miltenyi Biotec 130-098-458
MACS SmartStrainers (100 µm) Miltenyi Biotec 130-098-463
Mg(Ac)2 Sigma 63052-100ML
NP-40 Abcam ab142227
Nuclei Isolation Kit: Nuclei EZ Prep Sigma NUC101-1KT
Phenylmethanesulfonyl fluoride (PMSF) Sigma P7626
Pre-Separation Filters (20 µm) Miltenyi Biotec 130-101-812
Safe lock tubes 1.5 mL Eppendorf 0030120086
Safe lock tubes 2.0 mL Eppendorf 0030120094
Single Cell ATAC 10x Genomics
Single Cell Gene Expression 10x Genomics
Sucrose Sigma S0389
Wide Bore pipette tips (1000 µL) Themo Fisher Scientific 2079GPK
Wide Bore pipette tips (200 µL) Themo Fisher Scientific 2069GPK

Referências

  1. Huse, J. T., Holland, E. C. Targeting brain cancer: advances in the molecular pathology of malignant glioma and medulloblastoma. Nature Reviews Cancer. 10 (5), 319-331 (2010).
  2. Kreso, A., Dick, J. E. Evolution of the cancer stem cell model. Cell Stem Cell. 14 (3), 275-291 (2014).
  3. Filbin, M. G., Suva, M. L. Gliomas Genomics and Epigenomics: Arriving at the Start and Knowing It for the First Time. Annual Review of Pathology. 11, 497-521 (2016).
  4. Ferris, S. P., Hofmann, J. W., Solomon, D. A., Perry, A. Characterization of gliomas: from morphology to molecules. Virchows Archive. 471 (2), 257-269 (2017).
  5. Louis, D. N., et al. The 2016 World Health Organization Classification of Tumors of the Central Nervous System: a summary. Acta Neuropathologica. 131 (6), 803-820 (2016).
  6. Eckel-Passow, J. E., et al. Glioma Groups Based on 1p/19q, IDH, and TERT Promoter Mutations in Tumors. The New England Journal of Medicine. 372 (26), 2499-2508 (2015).
  7. Suzuki, H., et al. Mutational landscape and clonal architecture in grade II and III gliomas. Nature Genetics. 47 (5), 458-468 (2015).
  8. Cancer Genome Atlas Research. Comprehensive, Integrative Genomic Analysis of Diffuse Lower-Grade Gliomas. The New England Journal of Medicine. 372 (26), 2481-2498 (2015).
  9. Noushmehr, H., et al. Identification of a CpG island methylator phenotype that defines a distinct subgroup of glioma. Cancer Cell. 17 (5), 510-522 (2010).
  10. Yan, H., et al. IDH1 and IDH2 mutations in gliomas. The New England Journal of Medicine. 360 (8), 765-773 (2009).
  11. Yan, H., Bigner, D. D., Velculescu, V., Parsons, D. W. Mutant metabolic enzymes are at the origin of gliomas. Pesquisa do Câncer. 69 (24), 9157-9159 (2009).
  12. Gawad, C., Koh, W., Quake, S. R. Single-cell genome sequencing: current state of the science. Nature Reviews Genetics. 17 (3), 175-188 (2016).
  13. Tanay, A., Regev, A. Scaling single-cell genomics from phenomenology to mechanism. Nature. 541 (7637), 331-338 (2017).
  14. Wu, M., Singh, A. K. Microfluidic Flow Cytometry for Single-Cell Protein Analysis. Methods in Molecular Biology. 1346, 69-83 (2015).
  15. Schwartzman, O., Tanay, A. Single-cell epigenomics: techniques and emerging applications. Nature Reviews Genetics. 16 (12), 716-726 (2015).
  16. Macaulay, I. C., Ponting, C. P., Voet, T. Single-Cell Multiomics: Multiple Measurements from Single Cells. Trends in Genetics. 33 (2), 155-168 (2017).
  17. Buenrostro, J. D., et al. Single-cell chromatin accessibility reveals principles of regulatory variation. Nature. 523 (7561), 486-490 (2015).
  18. Habib, N., et al. Massively parallel single-nucleus RNA-seq with DroNc-seq. Nature Methods. 14 (10), 955-958 (2017).
  19. Corces, M. R., et al. An improved ATAC-seq protocol reduces background and enables interrogation of frozen tissues. Nature Methods. 14 (10), 959-962 (2017).
  20. Slyper, M., et al. A single-cell and single-nucleus RNA-Seq toolbox for fresh and frozen human tumors. Nature Medicine. 26 (5), 792-802 (2020).
  21. Mathys, H., et al. Single-cell transcriptomic analysis of Alzheimer’s disease. Nature. 570 (7761), 332-337 (2019).
  22. Krishnaswami, S. R., et al. Using single nuclei for RNA-seq to capture the transcriptome of postmortem neurons. Nature Protocols. 11 (3), 499-524 (2016).
  23. Al-Dalahmah, O., et al. Single-nucleus RNA-seq identifies Huntington disease astrocyte states. Acta Neuropathologica Communications. 8 (1), 19 (2020).
  24. Jakel, S., et al. Altered human oligodendrocyte heterogeneity in multiple sclerosis. Nature. 566 (7745), 543-547 (2019).
  25. Butler, A., Hoffman, P., Smibert, P., Papalexi, E., Satija, R. Integrating single-cell transcriptomic data across different conditions, technologies, and species. Nature Biotechnology. , (2018).
  26. Lake, B. B., et al. Integrative single-cell analysis of transcriptional and epigenetic states in the human adult brain. Nature Biotechnology. 36 (1), 70-80 (2018).
  27. Stuart, T., et al. Comprehensive Integration of Single-Cell Data. Cell. 177 (7), 1888-1902 (2019).
  28. Bready, D., Placantonakis, D. G. Molecular Pathogenesis of Low-Grade Glioma. Neurosurgery Clinics of North America. 30 (1), 17-25 (2019).
  29. Venteicher, A. S., et al. Decoupling genetics, lineages, and microenvironment in IDH-mutant gliomas by single-cell RNA-seq. Science. 355 (6332), (2017).
  30. Tirosh, I., et al. Single-cell RNA-seq supports a developmental hierarchy in human oligodendroglioma. Nature. 539 (7628), 309-313 (2016).
  31. Weng, Q., et al. Single-Cell Transcriptomics Uncovers Glial Progenitor Diversity and Cell Fate Determinants during Development and Gliomagenesis. Cell Stem Cell. 24 (5), 707-723 (2019).
  32. Neftel, C., et al. An Integrative Model of Cellular States, Plasticity, and Genetics for Glioblastoma. Cell. 178 (4), 835-849 (2019).
  33. Al-Ali, R., et al. Single-nucleus chromatin accessibility reveals intratumoral epigenetic heterogeneity in IDH1 mutant gliomas. Acta Neuropathologica Communications. 7 (1), 201 (2019).
check_url/pt/61542?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Narayanan, A., Blanco-Carmona, E., Demirdizen, E., Sun, X., Herold-Mende, C., Schlesner, M., Turcan, S. Nuclei Isolation from Fresh Frozen Brain Tumors for Single-Nucleus RNA-seq and ATAC-seq. J. Vis. Exp. (162), e61542, doi:10.3791/61542 (2020).

View Video