Summary

Primäre Kultur der Menschen vestibuläre Schwannome

Published: July 20, 2014
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Summary

Vestibuläre Schwannome (VSS) nicht-malignen Tumoren von Schwann-Zellen (SC) Ursprungs, mit Mutationen im NF2 Tumorsuppressor-Gen assoziiert ist. Wir berichten über einen reproduzierbaren, effizienten Protokoll für primäre humane VS Zellkultur, die für die molekulare und zelluläre experimentelle Manipulation und Analyse ermöglicht und rekapituliert die heterogene Natur der menschlichen Krankheit.

Abstract

Vestibuläre Schwannome (VSS) stellen Schwann-Zellen (SC) Tumoren des Nervus vestibularis, Kompromisse 10% aller intrakraniellen Neoplasmen. VSs treten entweder sporadisch oder familiär (Neurofibromatose Typ 2, NF2) Formen, die beide mit Inaktivierung von Defekten in der NF2 Tumorsuppressor verbunden Gen. Die Behandlung ist in der Regel für VSS chirurgische Resektion oder Radiochirurgie, aber die Morbidität dieser Verfahren hat Ermittlungen in weniger invasive Behandlungen angetrieben. Historisch sind der fehlende Zugang zu frischen Gewebeproben und der Tatsache, dass Schwannom Zellen nicht verewigt deutlich die Verwendung von Primärkulturen zur Untersuchung der Tumorgenese Schwannom behindert. Um das begrenzte Angebot an Primärkulturen zu überwinden, wurde die verewigt HEI193 VS Zelllinie durch Transduktion mit HPV-Onkogene E6 und E7 erzeugt. Diese onkogene Transduktion eingeführt signifikanten molekularen und phänotypischen Veränderungen der Zellen, die ihre Verwendung als Modell für menschliche s begrenzenchwannoma Tumoren. Wir stellen daher eine vereinfachte, reproduzierbare Protokoll für die Kultur von primären humanen Zellen VS. Diese leicht zu beherrschen Technik ermöglicht molekularen und zellulären Untersuchungen, genauer rekapitulieren die Komplexität der VS Krankheit.

Introduction

Vestibuläre Schwannome (VSS) stellen Schwann-Zellen (SC) Tumoren des Nervus vestibularis, Kompromisse 10% aller intrakraniellen Neoplasmen 1-3. VSs treten entweder sporadisch oder familiär (Neurofibromatose Typ 2, NF2) Formen, die beide mit Inaktivierung von Defekten in der NF2 Tumorsuppressor verbunden Gen. Die Behandlung ist in der Regel für VSS chirurgische Resektion oder Radiochirurgie, aber die Morbidität dieser Verfahren beinhaltet Taubheit, Gesichts Neuropathien, Rückenmarksflüssigkeit auslaufen, Ungleichgewicht, und ein erneutes Tumorwachstum. Außerdem werden nicht alle Patienten sind akzeptabel chirurgischen oder strahlen Kandidaten. Solche erheblichen Morbidität sowie ein Mangel an alternativen Therapien hat die Untersuchung in die einzigartige molekulare Biologie der VSs in der Hoffnung, die Entwicklung neuer Behandlungen 3,4 angetrieben.

Zellkultur ermöglicht eine schnelle, einfache und gründliche Analyse der molekularen und zellulären Verhalten und Screening von potenziellen therapeutischen comPfund. Historisch sind der fehlende Zugang zu frischen Gewebeproben und der Tatsache, dass Schwannom Zellen nicht verewigt deutlich die Verwendung von Primärkulturen zur Untersuchung der Tumorgenese Schwannom behindert. Um das begrenzte Angebot an Primärkulturen zu überwinden, wurde die verewigt HEI193 VS Zelllinie durch Transduktion mit HPV-Onkogene E6 und E7 5 erzeugt. Diese onkogene Transduktion eingeführt signifikanten molekularen und phänotypischen Veränderungen der Zellen, die ihre Verwendung als Modell für menschliche Tumoren Schwannom begrenzen. SC Kulturen aus transgenen Mauslinien, die eine funktionelle NF2-Gen fehlt abgeleitet sind eine weitere Alternative zu NF2 abhängige SC Tumorgenese in vitro zu untersuchen. Diese Kulturen allerdings nicht die heterogene Natur der menschlichen VSs oder Konto für den menschlichen bestimmtes Verhalten zu rekapitulieren. Die meisten bisherigen VS Kulturtechniken benötigt relativ lange Bearbeitungszeiten und komplizierte selektiven Kulturtechniken 8.6.Hier präsentieren wir Ihnen eine einfache, reproduzierbare Protokoll für VS primären Zellkultur mit Komplettbearbeitung in unter 3 Stunden, mit 95% Reinheit, wie Tumorzellen durch Immunfärbung bestimmt.

Protocol

Ethikerklärung: Einsatz der menschlichen Tumorproben in diesem Protokoll wurde von der University of Iowa Institutional Review Board (IRB) genehmigt. 1. Setup-Tumor am Tag vor Ernte Coat Zellkulturplatten: In einem sterilen Kulturhaube, fügen Sie genug Poly-L-Ornithin (0,01% Lösung) auf den Boden einer Polystyrol / Kunststoff-Kultur gut / Schale bedecken, ersetzen Sie den Deckel, und lassen Sie sich bei Raumtemperatur für mindestens 2 Stunden. Glasobjektträger oder Deckgläse…

Representative Results

Korrekte Tumor Fragmentierung ist für die optimale Aussaat und Vermehrung in Gewebekulturschalen (Abbildung 1). Identifizierung von Schwannom Zellen während der ersten Tage nach der Plattierung ist oft schwierig, aufgrund verdeckt Mengen von Zelltrümmern und roten Blutkörperchen. Durch die 4. oder 5. Tag, wird in der Nähe von adhärenten Zellforttumorfragmente erkennbar erstellen "Schnürung" Muster unter den Trümmern. Nachträgliche Änderungen in der Regel entfern…

Discussion

Geschichte der In-vitro-Kulturen Schwannom

Die Bemühungen um die In-vitro-Kulturen zu etablieren begann Schwannom weniger Jahrzehnte nach der ersten Akustikusneurinom offenen chirurgischen Resektion erfolgte im Jahre 1894 12. Die erste aufgezeichnete Kulturen waren von Kredel in den 1920er Jahren, der erfolglos versuchte, Hackfleisch Tumor durch "hanging drop-Methode" 12 wachsen . Später Drs. Murray und Stout veröffentlich…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Support: NIDCD R01DC009801, P30DC010362, 5T32DC000040-17

Materials

Poly-L-Ornithine, 0.01% Solution Sigma P4957 Cell Culture Surface Treatment
Laminin Mouse Protein  Gibco 23017-015 / L2020 Cell Culture Surface Treatment
0.2% Collagenase (dissolved in HBSS -/-) Sigma C2674 Dissociation Reagent
0.25% Trypsin Gibco 25200-056 Dissociation Reagent
TPS 100mm Round Culture Dish Midwest Scientific TP93100
Permanox 4 well slide Fisher Scientific 1256521
Permanox 8 well slide Fisher Scientific 1256522
Suction Filter Flask Midwest Scientific TP99500
15ml Conical Tube Midwest Scientific TP91015
50ml Conical Tube Midwest Scientific TP91050
2mL Round Bottom Tube USA Scientific 1620-2700
Small Scissor FST 14058-11
Small Forceps FST 11251-20
Scalpel Handle FST 10004-13
#11 Scalpel Blade Roboz RS-9801-11
Non-Tissue Culture 100mm Round Petri Dish Fisher Scientific 50-820-904
P1000 Pipetteman Bioexpress P3963-1000
Serological Pipetteman Bioexpress R3073-2P
Sterile, Non-Filtered P1000 Pipette Tips Midwest Scientific TD1250R
Insulated Ice Cooler
Culture Hood  Baker
Centrifuge  Eppendorf -5810R
Hanks Balanced Salt Solution (HBSS) +/+ (w/ Ca2+, Mg2+)  Gibco 24020-117 Schwannoma Culture and Media Components
Hanks Balanced Salt Solution (HBSS) -/- (w/out Ca2+, Mg2+) Gibco 14170-112 Schwannoma Culture and Media Components
Dulbecco’s Modified Eagle Medium (DMEM), High Glucose, w/ Phenol Red Gibco 11965-092 Schwannoma Culture and Media Components
N2 Supplement Gibco 17502-048 Schwannoma Culture and Media Components
Fetal Bovine Serum Gibco 26140-079 Schwannoma Culture and Media Components
Penicillin – Streptomycin Gibco 15140-163 Schwannoma Culture and Media Components
Bovine Insulin (1mg/ml 200x) Sigma I6634 Schwannoma Culture and Media Components

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Cite This Article
Schularick, N. M., Clark, J. J., Hansen, M. R. Primary Culture of Human Vestibular Schwannomas. J. Vis. Exp. (89), e51093, doi:10.3791/51093 (2014).

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