Summary

Primær Culture of Human Vestibulær schwannomas

Published: July 20, 2014
doi:

Summary

Vestibulær schwannomas (VSS) er ikke-maligne svulster av Schwann celle (SC) opprinnelse, assosiert med mutasjoner i NF2 tumorsuppressorgen. Vi rapporterer en reproduserbar, effektiv protokoll til primære humane VS cellekultur som gjør det mulig for molekylær-og celle eksperimentell manipulering og analyse og sammenfatter den heterogene natur sykdom hos mennesker.

Abstract

Vestibular schwannomas (VSS) representerer Schwann celle (SC) svulster i vestibular nerve, at det går 10% av alle intrakranielle svulster. VSS oppstå i enten sporadisk eller familiære (Nevrofibromatose type 2, NF2) former, både knyttet til inaktive defekter i NF2 tumor suppressor gen. Behandling for VSS er generelt kirurgisk reseksjon eller radiosurgery, men sykelighet av slike prosedyrer har drevet undersøkelser i mindre invasive behandlinger. Historisk sett har manglende tilgang til ferske vevsprøver og det faktum at schwannoma cellene ikke blir foreviget vesentlig hemmet bruk av primærkulturer for etterforskning av schwannoma tumorigenesis. For å overvinne den begrensede tilførsel av primærkulturer, ble de udødelig HEI193 VS cellelinje generert ved transduksjon med HPV E6 og E7 onkogener. Det onkogene transduksjon innført betydelige molekylære og fenotypiske endringer i cellene, noe som begrenser deres anvendelse som en modell for human schwannoma svulster. Vi derfor illustrere en forenklet, reproduserbar protokoll for kultur av primær menneskelig VS celler. Dette lett mestret teknikken gjør det mulig for molekylære og cellulære undersøkelser som mer nøyaktig rekapitulere kompleksiteten i VS sykdom.

Introduction

Vestibular schwannomas (VSS) representerer Schwann celle (SC) svulster i vestibular nerve, at det går 10% av alle intrakranielle svulster 1-3. VSS oppstå i enten sporadisk eller familiære (Nevrofibromatose type 2, NF2) former, både knyttet til inaktive defekter i NF2 tumor suppressor gen. Behandling for VSS er generelt kirurgisk reseksjon eller radiosurgery, men sykelighet av slike prosedyrer inkluderer døvhet, ansikts nevropatier, spinalvæske lekkasje, ubalanse, og svulst gjenvekst en. I tillegg er ikke alle pasienter er akseptable kirurgisk eller stråle kandidater. En slik betydelig sykelighet samt en mangel på alternative behandlingsformer har drevet etterforskning i den unike molekylærbiologi av VSS i håp om å utvikle nye behandlinger 3,4.

Cellekultur gir mulighet for raske, lettvinte, og dyptgående analyse av molekylære og cellulære atferd og screening av potensielle terapeutiske compounds. Historisk sett har manglende tilgang til ferske vevsprøver og det faktum at schwannoma cellene ikke blir foreviget vesentlig hemmet bruk av primærkulturer for etterforskning av schwannoma tumorigenesis. For å overvinne den begrensede tilførsel av primærkulturer, ble de udødelig HEI193 VS cellelinje generert ved transduksjon med HPV E6 og E7 onkogener 5. Det onkogene transduksjon innført betydelige molekylære og fenotypiske endringer i cellene, noe som begrenser deres anvendelse som en modell for human schwannoma tumorer. SC kulturer som stammer fra transgene mus linjer som mangler et funksjonelt NF2-genet representerer et annet alternativ for å undersøke NF2-avhengige SC tumorigenesis in vitro. Disse kulturene derimot ikke klarer å rekapitulere den heterogene natur menneskelig VSS eller konto for menneskelig bestemt atferd. De fleste tidligere VS kultur teknikker som kreves relativt lang saksbehandlingstid og kompliserte selektive kultur teknikker 6-8.Her presenterer vi en enkel, reproduserbar protokoll for primær VS cellekultur med full prosessering på under tre timer, med 95% tumorcelle renhet som bestemmes av farging.

Protocol

Etikk Uttalelse: bruk av de menneskelige vevsprøver i denne protokollen ble godkjent av University of Iowa Institutional Review Board (IRB). En. Oppsett dagen før Tumor Harvests Coat Cell Kultur Plater: I en steril kultur hette, legger nok poly-L-ornithine (0,01% løsning) til å dekke bunnen av en isopor / plast kultur godt / parabol, erstatte lokkene, og la sitte i romtemperatur i minst 2 timer. Glass lysbilder eller dekkglass kan erstatte isopor for eksperimenter som krever b…

Representative Results

Riktig tumor fragmentering er viktig for optimal såing og utvekst i vevkulturskåler (figur 1). Identifisering av schwannoma celler i løpet av de første dagene etter plating er ofte vanskelig på grunn av obscuring mengder av celle-debris, og røde blodceller. Ved 4. eller 5. dag, vil celle utvidelser nærheten heft tumor fragmenter skape gjenkjennelige 'snøring' mønstre blant vrakrestene. Påfølgende medier endringer generelt fjerne mesteparten av ikke-adherente cell…

Discussion

Historie av in vitro schwannoma kulturer

Arbeidet med å etablere in vitro schwannoma kulturer begynte bare et par tiår etter den første Vestibularisschwannom åpen kirurgisk reseksjon skjedde i 1894 12. Den første registrerte kulturer var ved Kredel på 1920-tallet, som uten hell forsøkt å vokse hakket svulsten ved "hengende slipp-metoden" 12 . Senere, Drs. Murray og Stout publisert sin in vitro kultur erfaring…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Support: NIDCD R01DC009801, P30DC010362, 5T32DC000040-17

Materials

Poly-L-Ornithine, 0.01% Solution Sigma P4957 Cell Culture Surface Treatment
Laminin Mouse Protein  Gibco 23017-015 / L2020 Cell Culture Surface Treatment
0.2% Collagenase (dissolved in HBSS -/-) Sigma C2674 Dissociation Reagent
0.25% Trypsin Gibco 25200-056 Dissociation Reagent
TPS 100mm Round Culture Dish Midwest Scientific TP93100
Permanox 4 well slide Fisher Scientific 1256521
Permanox 8 well slide Fisher Scientific 1256522
Suction Filter Flask Midwest Scientific TP99500
15ml Conical Tube Midwest Scientific TP91015
50ml Conical Tube Midwest Scientific TP91050
2mL Round Bottom Tube USA Scientific 1620-2700
Small Scissor FST 14058-11
Small Forceps FST 11251-20
Scalpel Handle FST 10004-13
#11 Scalpel Blade Roboz RS-9801-11
Non-Tissue Culture 100mm Round Petri Dish Fisher Scientific 50-820-904
P1000 Pipetteman Bioexpress P3963-1000
Serological Pipetteman Bioexpress R3073-2P
Sterile, Non-Filtered P1000 Pipette Tips Midwest Scientific TD1250R
Insulated Ice Cooler
Culture Hood  Baker
Centrifuge  Eppendorf -5810R
Hanks Balanced Salt Solution (HBSS) +/+ (w/ Ca2+, Mg2+)  Gibco 24020-117 Schwannoma Culture and Media Components
Hanks Balanced Salt Solution (HBSS) -/- (w/out Ca2+, Mg2+) Gibco 14170-112 Schwannoma Culture and Media Components
Dulbecco’s Modified Eagle Medium (DMEM), High Glucose, w/ Phenol Red Gibco 11965-092 Schwannoma Culture and Media Components
N2 Supplement Gibco 17502-048 Schwannoma Culture and Media Components
Fetal Bovine Serum Gibco 26140-079 Schwannoma Culture and Media Components
Penicillin – Streptomycin Gibco 15140-163 Schwannoma Culture and Media Components
Bovine Insulin (1mg/ml 200x) Sigma I6634 Schwannoma Culture and Media Components

References

  1. Arthurs, B. J., et al. A review of treatment modalities for vestibular schwannoma. Neurosurg Rev. 34 (3), 265-277 (2011).
  2. Evans, G. R., Lloyd, S. K., Ramsden, R. T. Neurofibromatosis type 2. Adv Otorhinolaryngol. 70, 91-98 (2001).
  3. Fong, B., et al. The molecular biology and novel treatments of vestibular schwannomas. J Neurosurg. 115 (5), 906-914 (2011).
  4. Jacob, A., et al. Preclinical validation of AR42, a novel histone deacetylase inhibitor, as treatment for vestibular schwannomas. Laryngoscope. 122 (1), 174-189 (2012).
  5. Evans, D. G. Neurofibromatosis 2 [Bilateral acoustic neurofibromatosis, central neurofibromatosis. NF2, neurofibromatosis type II]. Genet Med. 11 (9), 599-610 (2009).
  6. Anniko, M., Noren, G. The Human Acoustic Neurinoma in Organ-Culture .1. Methodological Aspects. Acta Oto-Laryngologica. 91 (1-2), 47-53 (1981).
  7. Manent, J., et al. Magnetic cell sorting for enriching Schwann cells from adult mouse peripheral nerves. J Neurosci Methods. 123 (2), 167-173 (2003).
  8. Nair, S., et al. Primary cultures of human vestibular schwannoma: selective growth of schwannoma cells. Otol Neurotol. 28 (2), 258-263 (2007).
  9. Baur, A. M., et al. Laminin promotes differentiation, adhesion and proliferation of cell cultures derived from human acoustic nerve schwannoma. Acta Otolaryngol. 115 (4), 517-521 (1995).
  10. Cravioto, H., et al. Experimental neurinoma in tissue culture. Acta Neuropathol. 21 (2), 154-164 (1972).
  11. Kaasinen, S., et al. Culturing of acoustic neuroma–methodological aspects. Acta Otolaryngol Suppl. 520 Pt 1, 25-26 (1995).
  12. Kredel, F. E. Tissue Culture of Intracranial Tumors with a Note on the Meningiomas. Am J Pathol. 4 (4), 337-340 (1928).
  13. Murray, M. R., Stout, A. P., Bradley, C. F. Schwann cell versus fibroblast as the origin of the specific nerve sheath tumor: Observations upon normal nerve sheaths and neurilemomas in vitro. Am J Pathol. 16 (1), 41-60 (1940).
  14. Cravioto, H., Lockwood, R. The behavior of acoustic neuroma in tissue culture. Acta Neuropathol. 12 (2), 141-157 (1969).
  15. Lee, J. D., et al. Genetic and epigenetic alterations of the NF2 gene in sporadic vestibular schwannomas. PLoS One. 7 (1), 30418 (2012).
  16. Wippold, F. J., 2nd, , et al. Neuropathology for the neuroradiologist: Antoni A and Antoni B tissue patterns. AJNR Am J Neuroradiol. 28 (9), 1633-1638 (2007).
  17. Mennel, H. D. Short-term tissue culture observations of experimental primary and transplanted nervous system tumors. J Neuropathol Exp Neurol. 39 (6), 639-660 (1980).
  18. Rosenbaum, C., et al. Isolation and characterization of Schwann cells from neurofibromatosis type 2 patients. Neurobiol Dis. 5 (1), 55-64 (1998).
check_url/51093?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Schularick, N. M., Clark, J. J., Hansen, M. R. Primary Culture of Human Vestibular Schwannomas. J. Vis. Exp. (89), e51093, doi:10.3791/51093 (2014).

View Video