Summary

加水分解性架橋剤を介してアデノウイルスベクターテザーを使用した金属ステント表面からの血管の遺伝子導入

Published: August 12, 2014
doi:

Summary

These studies report on reversible attachment of adenoviral gene vectors to coatless metal surfaces of stents and model mesh disks. Sustained release of transduction-competent viral particles contingent upon hydrolysis of cross-linkers used for vector immobilization results in a durable site-specific transgene expression in vascular cells and in stented arteries.

Abstract

ステント内再狭窄は、広く冠動脈および末梢動脈の批判的に狭めセグメントを通じて再確立血流に使用されるステントベースの血管再生手順の主要な合併症を提示します。抗再狭窄性の活性を有する遺伝子の調節可能な放出が可能な血管内ステントは、現在、薬剤溶出ステントを使用するための代替戦略を提示することができる。典型的には、ベクターの物理的捕捉のために使用されるポリマーコーティングに関連付けられた過剰な炎症性応答を回避しながら、臨床翻訳を達成するために、遺伝子溶出ステントは、ステント固定化遺伝子ベクターの放出及び血管系の部位特異的な形質導入の予測可能な速度論を示さなければならない。本論文では、ビスフォスフォネート(PABT)が加水分解性架橋剤(HC)を介してステンレス鋼表面 – 修飾ポリアリルアミンするアデノウイルス粒子の可逆的結合に基づくステントとアデノウイルス遺伝子ベクターのコートレステザリングするための詳細な方法論を説明しています。の家族5〜50日の範囲内の鎖エステル加水分解の平均のt 1/2と二官能性(アミンおよびチオール反応性)HCは、ステントとベクターを連結するために使用した。ベクトル固定化手順は、一般的に9時間以内に行われ、いくつかのステップで構成されています。PABTの水溶液中の金属試料の1)インキュベーション(4時間);トリス(2 – カルボキシエチル)ホスフィン(20分)でPABTに設置チオール基の2)の脱保護;ピリジルジチオ(PDT)グループ(2時間)で誘導体化ポリエチレンの試料を反応させて金属表面のチオール反応容量の3)拡張;ジチオスレイトール(10分)とのチオールへのPDT群の4)変換; HC(1時間)とアデノウイルスの5)の修正;サイズ排除カラムクロマトグラフィー(15分)、チオール化鋼表面上のチオール反応性アデノウイルス粒子(1時間)の7)の固定化によって修飾されたアデノウイルス粒子の6)精製。この技術は、ステントを越えて広い適用可能性を有している注入された異物をインターフェース細胞に対する基質媒介遺伝子送達を通じてそれらの生体適合性を強化するために、生体プロテーゼデバイスの表面工学を促進することによって。

Introduction

治療法として、遺伝子治療の有効性は、遺伝子治療ベクター1,2の乏しいターゲティング能力によって妨げられる。標的位置におけるトランスジーン発現の準治療レベルの適切なターゲティングの結果の欠如とはベクトルおよび符号化された治療用生成物4の両方に対する免疫応答をマウントするための担当者を含む非標的器官3へのベクターの広範な普及につながる5。一つの可能​​性は、形質導入の混乱を相殺し、標的化血液やリンパ液を介してそれらの自由普及を妨げる形で所望の位置に遺伝子ベクターを導入することで促進することを意味する。典型的には、このような努力は、物理的に目を捕捉することによって注射部位に一過性に維持遺伝子ベクターが可能であるフィブリン、コラーゲンまたはヒアルロン酸ハイドロゲルマトリックス6-10と混合したウイルスまたは非ウイルスベクターのいずれかを含む、局所的に注射可能な送達システムに依存しているポリマーネットワーク内のem。

ローカライズされた遺伝子治療のための別の一般的に受け入れられているパラダイムは、移植された補綴装置11,12の表面に遺伝子ベクターの固定化を利用する。常設医療用インプラント(血管、気管支、泌尿器及び胃腸ステント、ペースメーカー、人工関節、外科や婦人科のメッシュなどが 。)の患者13数千万で毎年使用されている。一般的に有効であるが、これらのデバイスは、不十分な現在の医療行為のために14〜17によって制御される合併症を起こしやすい。移植可能な人工デバイスは、ローカライズされた遺伝子治療の治療のためのプロキシ·プラットフォームとして機能するユニークな機会を提示する。薬物動態学的見地、インプラント/組織界面に遺伝子ベクターの高い局所濃度を両立し、theiの動態を遅らせる遺伝子ベクターの結果、比較的低い入力用量の医療用インプラントの表面誘導体からこの場所からのR撤廃する。長引く住宅目標とされた細胞集団による強化された取り込みの結果として、ベクトル·固定化は、遺伝子ベクターの拡散を最小限に抑えることができます。したがって非標的組織の不慮の接種が低減される。

(また、基板を介した遺伝子送達または固相遺伝子送達と呼ぶ)移植可能な生体材料上の遺伝子ベクターの表面テザリングは、両方の特定の(抗原-抗体18-20、アビジン-ビオチン21,22)を用いた細胞培養や動物実験で実装されました非特異的な23〜26(電荷、ファンデルワールス)相互作用。表面に過度に強い結合が標的細胞によりベクター内在化を排除するので、移植された装置の表面へのベクターの共有結合は、以前に非機能として考えられてきた。最近、この制限は、tetオペレーターとして使用自発的に加水分解性架橋剤の使用によって克服することができることが実証されたアデノウイルスベクター27,28のステントおよびキャプシドタンパク質の修飾された金属表面との間に彼女。さらに、 インビトロおよびインビボでの導入遺伝子発現のベクター放出速度および時間経過は、加水分解28の異なる動態を示す加水分解性架橋剤を用いて調節することができる。

本研究は、活性化金属表面にアデノウイルスベクターの可逆的共有結合のための詳細なプロトコルを提供し、ステント血管形成のラット頸動脈モデルにおいて培養平滑筋細胞および内皮細胞およびin vivoでのin vitroでのその後の伝達事象を研究するための有用な実験設定を導入。

Protocol

放出実験のためのCy3標識アデノウイルスの調製 (; pHは9.3 CBB)炭酸塩/重炭酸塩緩衝液の650μlの空の Adの2×10 12粒子(約2×10 11感染単位)を中断します。 0.2ミリグラム/ mlの最終濃度になるように(2のCy3(NHS))を1mlのCBB中のアミン反応性蛍光色素の1バイアル(0.2ミリグラム)の含有量を溶解する。 5秒間ウイルス懸濁液、渦に対する染料…

Representative Results

ベクター放出実験 そのような血管内ステントなどの介入装置を含む、インプラントの表面へのアデノウイルスベクターのテザリングは、部分的にベクトル '物理的なターゲティングの欠如をなくす、疾患部位へのベクトルを近似する。しかし、標的組織の形質導入を介して治療効果を達成することができるように、ベクターは、( 図2)表面?…

Discussion

提示されたプロトコルは、ステンレス鋼表面をコートレスするアデノウイルスベクターの可逆的結合によって達成基板を介した遺伝子送達のための運用方法について説明します。血管再狭窄のステントベースの遺伝子治療の特定の目的のために開発されているが、この技術は、生体材料、生物医学的インプラントおよび遺伝子治療の領域ではるかに広い用途を有する。

<p class="jove_conte…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors do not have competing financial interests to disclose.

Materials

316 stainless steel mesh disks Electon Microscopy Sciences E200-SS
Generic 304-grade stainless steel stents Laserage custom order
AdeGFP University of Pennsylvania Vector Core AD-5-PV0504
AdLuc University of Pennsylvania Vector Core AD-5-PV1028
AdEMPTY University of Pennsylvania Vector Core A858
Cy3(NHS)2 GE Healthcare PA23000
Sepharose 6B Sigma-Aldrich 6B100-500ML
UV 96-well plates Costar 3635
Fluorometry 96-well plates Costar 3915
Cell culture 96-well plates Falcon 353072
Tris(2-carboxyethyl)phosphine hydrochloride (TCEP ) Pierce Thermo Scientific 20490
dithiothreitol (DTT) Pierce Thermo Scientific 20290
sulfo-LC-SPDP Pierce Thermo Scientific 21650
Spectrophotometer Molecular Devices  SpectraMax 190
Spectrofluorometer Molecular Devices SpectraMax Gemini EM
Orbital shaker incubator VWR 1575R
Horizontal airflow oven Shel Lab 1350 FM
Centra-CL2 centrifuge  International Equipment Company 426
Digital vortex mixerer Fisher Thermo Scientific 02-215-370
Eclipse TE300 fluorescence microscope Nikon  TE300
DC 500 CCD camera Leica DC-500
7500 Real-Time PCR system Applied Biosystems not available
IVIS Spectrum bioluminescence station Perkins-Elmer not available
EDTA dipotassium salt Sigma-Aldrich ED2P
Bovine serum albumin fraction V (BSA) Fisher Thermo Scientific BP1600-100
Tween-20 Sigma-Aldrich P1379
Dumont forceps Fine Science Tools 11255-20
A10 cell line  ATCC CRL-1476
Bovine aortic endothelial cells Lonza BW-6002
Luciferin, potassium salt Gold Biotechnology LUCK-1Ge
Pluronic F-127 Sigma-Aldrich P2443-250G
PBS  without calcium and magnesium Gibco 14190-136
Fetal bovine serum Gemini Bio-Products 100-106
Penicillin/Streptomycin solution Gibco 11540-122
DMEM, high glucose Corning cellgro 10-013-CV
0.25% Trypsin/EDTA Gibco 25200-056
QIAamp DNA micro kit Qiagen 56304
Power Sybr Green PCR Master Mix Applied Biosystems 4367659
MicroAmp Optical 96-well Reaction Plate Applied Biosystems N8010560
MicroAmp Optical Adhesive Film Applied Biosystems 4360954
Cephazolin  Apotex not available
Loxicom (Meloxicam) Norbrook not available
Heparin sodium APP Pharmaceuticals not available
Ketavet (Ketamine) VEDCO not available
Anased (Xylazine)  Lloid not available
Forane (Isoflurane)  Baxter not available
Curved Moria iris forceps Fine Science tools 11370-31
 Curved extra-fine Graefe forceps Fine Science Tools 11152-10
Dumont #5 forceps Fine Science Tools 11252-20
Vannas spring scissors Fine Science Tools 15018-10
Fine scissors – ToughCut Fine Science Tools 14058-09
Surgical scissors Fine Science Tools 14101-14
Vicryl suture (5-0) Ethicon J385
Suture thread (4/0 silk)  Fine Science Tools 18020-40
Michel suture clips Fine Science Tools 12040-02
Wound dilator (Lancaster eye specula) KLS Martin 34-149-07
Hot bead sterilizer Fine Science Tools 18000-45
Michel suture clip applicator Fine Science Tools 112028-12
Insyte Autoguard 24G IV catheter Beckton-Dickinson 381412
2F Fogarty catheter Edwards Lifesciences 120602F
Teflon tubing Vention 041100BST
PTA catheter NuMed custom order
Gauze pads Kendall Healthcare 9024
Cotton applicators Solon Manufacturing WOD1003
Saline Baxter 281321
10 ml syringe (Luer-Lok) Beckton-Dickinson 309604
1 ml syringe (Luer-Lok) Beckton-Dickinson 309628
Clippers with #40 blade Oster  78005-314
Transpore surgical tape 3M MM 15271
Puralube vet ointment Pharmaderm not available

References

  1. Boeckle, S., Wagner, E. Optimizing targeted gene delivery: chemical modification of viral vectors and synthesis of artificial virus vector systems. AAPS J. 8, E731-E742 (2006).
  2. Waehler, R., Russell, S. J., Curiel, D. T. Engineering targeted viral vectors for gene therapy. Nat Rev Genet. 8, 573-587 (2007).
  3. Campos, S. K., Barry, M. A. Current advances and future challenges in Adenoviral vector biology and targeting. Curr Gene Ther. 7, 189-204 (2007).
  4. Bangari, D. S., Mittal, S. K. Current strategies and future directions for eluding adenoviral vector immunity. Curr Gene Ther. 6, 215-226 (2006).
  5. Barry, M. A., et al. Systemic delivery of therapeutic viruses. Curr Opin Mol Ther. 11, 411-420 (2009).
  6. De Laporte, L., Shea, L. D. Matrices and scaffolds for DNA delivery in tissue engineering. Adv Drug Deliv Rev. 59, 292-307 (2007).
  7. Gustafson, J. A., Price, R. A., Greish, K., Cappello, J., Ghandehari, H. Silk-elastin-like hydrogel improves the safety of adenovirus-mediated gene-directed enzyme-prodrug therapy. Mol Pharm. 7, 1050-1056 (2010).
  8. Kidd, M. E., Shin, S., Shea, L. D. Fibrin hydrogels for lentiviral gene delivery in vitro and in vivo. J Control Release. 157, 80-85 (2012).
  9. Lei, Y., et al. Incorporation of active DNA/cationic polymer polyplexes into hydrogel scaffolds. Biomaterials. 31, 9106-9116 (2010).
  10. Lei, Y., Rahim, M., Ng, Q., Segura, T. Hyaluronic acid and fibrin hydrogels with concentrated DNA/PEI polyplexes for local gene delivery. J Control Release. 153, 255-261 (2011).
  11. Jang, J. H., Schaffer, D. V., Shea, L. D. Engineering biomaterial systems to enhance viral vector gene delivery. Mol Ther. 19, 1407-1415 (2011).
  12. Salvay, D. M., Zelivyanskaya, M., Shea, L. D. Gene delivery by surface immobilization of plasmid to tissue-engineering scaffolds. Gene Ther. 17, 1134-1141 (2010).
  13. Moss, A. J., Hamburger, S., Moore, R. M., Jeng, L. L., Vol Howie, L. J. . Advance Data. 191, (1991).
  14. Gristina, A. G., Naylor, P., Myrvik, Q. Infections from biomaterials and implants: a race for the surface). Med Prog Technol. 14, 205-224 (1988).
  15. Santerre, J. P., Woodhouse, K., Laroche, G., Labow, R. S. Understanding the biodegradation of polyurethanes: from classical implants to tissue engineering materials. Biomaterials. 26, 7457-7470 (2005).
  16. Tang, L., Eaton, J. W. Inflammatory responses to biomaterials. Am J Clin Pathol. 103, 466-471 (1995).
  17. Zimmerli, W., Sendi, P. Pathogenesis of implant-associated infection: the role of the host. Semin Immunopathol. 33, 295-306 (2011).
  18. Fishbein, I., et al. Bisphosphonate-mediated gene vector delivery from the metal surfaces of stents. Proc Natl Acad Sci U S A. 103, 159-164 (2006).
  19. Levy, R. J., et al. Localized adenovirus gene delivery using antiviral IgG complexation. Gene Ther. 8, 659-667 (2001).
  20. Ma, G., et al. Anchoring of self-assembled plasmid DNA/anti-DNA antibody/cationic lipid micelles on bisphosphonate-modified stent for cardiovascular gene delivery. Int J Nanomedicine. 8, 1029-1035 (2013).
  21. Hu, W. W., Lang, M. W., Krebsbach, P. H. Development of adenovirus immobilization strategies for in situ gene therapy. J Gene Med. 10, 1102-1112 (2008).
  22. Jang, J. H., et al. Surface immobilization of hexa-histidine-tagged adeno-associated viral vectors for localized gene delivery. Gene Ther. 17, 1384-1389 (2010).
  23. Bengali, Z., Shea, L. D. Gene Delivery by Immobilization to Cell-Adhesive Substrates. MRS Bull. 30, 659-662 (2005).
  24. Holmes, C. A., Tabrizian, M. Substrate-mediated gene delivery from glycol-chitosan/hyaluronic acid polyelectrolyte multilayer films. ACS Appl Mater Interfaces. 5, 524-531 (2013).
  25. Pannier, A. K., Wieland, J. A., Shea, L. D. Surface polyethylene glycol enhances substrate-mediated gene delivery by nonspecifically immobilized complexes. Acta Biomater. 4, 26-39 (2008).
  26. Wang, C. H., Pun, S. H. Substrate-mediated nucleic acid delivery from self-assembled monolayers. Trends Biotechnol. 29, 119-126 (2011).
  27. Fishbein, I., et al. Local delivery of gene vectors from bare-metal stents by use of a biodegradable synthetic complex inhibits in-stent restenosis in rat carotid arteries. Circulation. 117, 2096-2103 (2008).
  28. Fishbein, I., et al. Adenoviral vector tethering to metal surfaces via hydrolyzable cross-linkers for the modulation of vector release and transduction. Biomaterials. 34, 6938-6948 (2013).
  29. Mittereder, N., March, K. L., Trapnell, B. C. Evaluation of the concentration and bioactivity of adenovirus vectors for gene therapy. J. Virol. 70, 7498-7509 (1996).
  30. Forbes, S. P., et al. Modulation of NO and ROS production by AdiNOS transduced vascular cells through supplementation with L-Arg and BH4: Implications for gene therapy of restenosis. Atherosclerosis. 230, 23-32 (2013).
  31. Niinomi, M., Nakai, M., Hieda, J. Development of new metallic alloys for biomedical applications. Acta Biomater. 8, 3888-3903 (2012).
  32. Brito, L. A., Chandrasekhar, S., Little, S. R., Amiji, M. M. Non-viral eNOS gene delivery and transfection with stents for the treatment of restenosis. Biomed Eng Online. 9, 56 (2010).
  33. Egashira, K., et al. Local delivery of anti-monocyte chemoattractant protein-1 by gene-eluting stents attenuates in-stent stenosis in rabbits and monkeys. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 27, 2563-2568 (2007).
  34. Ohtani, K., et al. Stent-based local delivery of nuclear factor-kappaB decoy attenuates in-stent restenosis in hypercholesterolemic rabbits. Circulation. 114, 2773-2779 (2006).
check_url/51653?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Fishbein, I., Forbes, S. P., Adamo, R. F., Chorny, M., Levy, R. J., Alferiev, I. S. Vascular Gene Transfer from Metallic Stent Surfaces Using Adenoviral Vectors Tethered through Hydrolysable Cross-linkers. J. Vis. Exp. (90), e51653, doi:10.3791/51653 (2014).

View Video